Диссертация (Использование жировых аутотрансплантатов с добавлением аутоплазмы, обогащенной тромбоцитами, в пластической хирургии молочных желез), страница 6

(Niechajev I., Sevcuk O.1994) выполнили биопсию пересаженной жировой ткани на 7-м, 14-м, 25-м и36-м месяце после трансплантации. Проведенный гистологический анализвыявил адипоциты небольшого размера (10-70 мкм), зрелые, с лобулярнойорганизациейиволокнистымиперегородками.Такимобразом,выживаемость адипоцитов подтверждалась уже не только теоретически, но ина практическом уровне – при морфологическом анализе.1.4.3 Факторы, влияющие жизнеспособность адипоцитовОбщеизвестно, чтожировая ткань является достаточно хрупкой итребует деликатного обращения.

Каждый этап этого вмешательства был, всвою очередь, предметом непосредственного и кропотливого исследованиядля определения факторов, влияющих на жизнеспособность и выживаемостьадипоцитов. Ниже они представлены в последовательном хронологическомпорядке проводимой хирургической процедуры.30Инфильтрационная/местная анестезия.В имеющейся научной литературе можно встретить различныеисследования относительно оптимального вида применяемой анестезии. Ихвыводы о влиянии местных анестетиков на выживаемость жировыхаутотрансплантатов довольно противоречивы. В 1995 году Moore J.H.

ссоавторами (Moore J.H. et al. 1995), опубликовали результаты глубокогоанализа овоздействии адреналина и лидокаина на жизнеспособностьжировых клеток. Они сравнили две группы жировой ткани: в первой группеинфильтрация была выполнена физиологическим раствором с лидокаином, аво-второй -физиологическим раствором с лидокаином и эпинефрином. Приэтом, никакой существенной разницы в метаболической активностиадипоцитов между этими двумя образцами не было обнаружено. Однако,когда адипоциты вступали в контакт с лидокаином, наблюдалось подавлениетранспорта глюкозы, а также липолиз и их рост в культуре. Эти эффектыисчезли сразу после прекращения воздействия лидокаина на адипоциты,например после отмывания.

Таким образом, существует эффект, вызванныйне лидокаином, а именно адреналином. Позднее, в 2003 году MacRae J.W.(MacRae J.W. et al. 2003) в своем исследовании о влиянии местныханестетиков на выживаемость адипоцитов, не обнаружил существенныхразличий между применением большинства известных анестетиков нажизнеспособность трансплантата. А вот Shoshani O. с соавторами (ShoshaniO., Berger J. et al., 2005) провели следующий эксперимент. Сначала, онисформировали две группы: первая группа – контрольная (жир забирали послеего инфильтрации физиологическим раствором); во второй же группе жирбыл забран после инфильтрации физиологическим раствором с добавлением0,06% лидокаина и адреналина 1:1000000.

Авторы, после гистологическогоисследования, не обнаружили никаких существенных различий между двумя31группами. В тоже самое время, в своем исследовании Keck M. с соавторами(Keck M., Janke J. et al. 2009) рассмотрели преадипоциты. Они обнаружили,что жизнеспособность клеток действительно снижалась после применениялидокаина,ропивакаинаиприлокаина.Результатыпроведенныхэкспериментов дают основание с определенной долей вероятности полагать,что местные анестетики и адреналин не влияют на жизнеспособностьжировых аутотрансплантатов, однако могут нарушать дифференцировкупреадипоцитов в зрелые адипоциты.Выбор донорских зон.Всовременнойнаучнойлитературепостояннообсуждаютсяпреимущества различных донорских мест для забора жировой ткани, нообщего мнения по этому поводу все же не существует. Проводились иглубокиеисследованияопродолжительностижизниадипоцитоввсоответствии с различными донорскими участками.

Общеизвестно, чтоадипоциты различаются по размеру и липогенной активности - всоответствии с их расположением в теле человека. Одни хирурги (Rohrich etall. 2004) считают, что забор жировой ткани можно проводить со следующихучастков тела: живот, фланки, бедра и медиальная поверхность колен.Жировая ткань с данных участков была ими тщательно проанализирована и,в последствии, была доказана жизнеспособность адипоцитов из всехобследуемых областей. В 1990 году Hudson D. (Hudson D. et al., 1990)доказали, что адипоциты наружной поверхности бедер крупнее и содержатболее высокую концентрацию антилиполитического рецепторов α2, аследовательно они меньше подвержены липолизу.

Напротив же, жироваяткань: лица, рук и торса имеет более высокое содержание липолитических β1рецепторов, что является недостаточно надежным источником для заборажира. Авторы статьи Ullman Y. и Shoshani O. (Ullman Y., Shoshani O. et al.2005) сравнили забранную жировую ткань из трех донорских мест: бедер,живота и груди и, в дальнейшем, пришли к такому выводу, что нет значимостатистических различий между этими тремя донорскими зонами. Однако,32Padoin A.V.

(Padoin A.V., Braga-Silva J. et al. 2008) с соавторами уверенносообщают, что высокий уровень стволовых клеток наблюдается в жире,забранном именно из нижних отделов живота по сравнению с другимианатомическими зонами.Забор жировой ткани.Возникает несколько закономерных вопросов: есть ли разница междухирургическим методом забора жировой ткани (блоком), механическимспособом и ручной аспирацией? Влияет ли давление при аспирации жировойткани и тип канюли на выживаемость адипоцитов? В научной литературеэтим вопросам уделяется достаточно серьезное внимание.

Так, Har-Shai Y.(Har-Shai Y. et al. 1999) в своем исследовании показал, что прииспользовании механической аспирации (1 атм. и более отрицательногодавления) жировой ткани, происходит разрушение адипоцитов, в связи с чем,выделяется большее количество триглицеридов, чем при методе ручнойаспирации (0,2 атм. отрицательного давления). К аналогичным же выводам онегативномвлияниинажизнеспособностьадипоцитоввследствиечрезмерного отрицательного давления пришел и Katz A.J.

(Katz A.J., Llull R.,et al. 1999). Аналогичного мнения придерживаются Nichajev I. и Sevcuk O.(1994). Они сообщают, что воздействие давления при заборе жировой тканипагубно влияет на жизнеспособность адипоцитов. При отрицательномдавлении 0,95 атм. 66% адипоцитов повреждается. Moore J.H. (Moore J.H. etal. 1995) сравнили гистологическим путем жировые клетки, полученныепосредством атравматичного забора с помощью аппарата для липосакции иклетки, полученные при помощи шприцевой аспирации, и при низкомдавлении(техникой Coleman’s). Авторы не обнаружили существенныхразличий между двумя группами.

Campbell G.L. (Campbell G.L. et al. 1987) всвою очередь, изучал адипоциты под микроскопом и пришел к следующемувыводу: чем меньше диаметр канюли, тем больше повреждается ядро истенка адипоцита. В своем исследовании Ozsoy Z. (Ozsoy Z. et al. 2006) cсоавторамипродемонстрировалибольшее33числожизнеспособныхадипоцитов с использованием 4-мм канюли в сравнении с 2-мм или 3-ммканюли. Pu L.L. (Pu L.L. et al.

2008) провели проспективное сравнительноеисследование между двумя способами забора жировой ткани: техникойColeman’s и обычной липосакцией. В результате было установлено, чтожировые трансплантаты, полученные обоими методами, имеют достаточноудовлетворительную и нормальную гистологическую структуру, однакоуровень жизнеспособности адипоцитов был выше при использованиитехники Coleman’s.Обработка жировой ткани.Затрагивая вопросы обработки жировой ткани, необходимо отметитьследующее. Как полученная вручную, так и механическим способом, онапредставляет собой гетерогенный материал, содержащий разрушенные и неразрушенныеадипоциты,волокнасоединительнойткани,кровьиинфильтрационную жидкость (Малаховская В.И., и др., 2009).

Основнойцелью обработки жировой ткани является отделение неповрежденныхадипоцитов от других компонентов липоаспирата, что уменьшает воспалениеи, как сообщает Goodpasture J.S. (Goodpasture J.S. et al. 1986), увеличиваетвыживаемость адипоцитов. Более того, повторная инъекция всех этихпродуктов сформировала бы и ложное впечатление о вводимом объеме.Продукты распада адипоцитов, кровь и инфильтрационная жидкостиреабсорбируются от нескольких часов до нескольких суток (Mojallal A.,Foyatier J.L., 2004).