1625913344-8903f4a71ad640872a209e228a3a0bd4 (531148), страница 59
Текст из файла (страница 59)
cerevisiae. Для этого дрожжевой ген LEU2, кодирующийу3-изопропилмалатдегидрогеназу, был вставлен в бактериальнуюплазмиду ColEl и проклонирован в Е. coli. Этот ген S. cerevisiae экспрессируется в Е. coli, компенсируя аналогичный метаболическийдефект бактерии. Сферопласты дрожжей (клетки, лишенные оболочки) трансформировали плазмидной ДНК. Реципиентом служилштамм, несущий стабильную мутацию 1еи2. Частота трансформацииLeir —>Leu+составляла 1 х 10-6 на регенерирующий сферопласт, т. е.на число клеток, которые вновь восстановили свою оболочку.Повысить эффективность трансформации на два порядка удалосьс использованием так называемой челночной, или гибридной, плазмиды, имеющей два репликатора: один — от ColEl (бактериальный),а другой— от дрожжевой плазмиды размером 2 мкм (см.
гл. 11).В дальнейшем в таких челночных векторах использовали репликаторы ДНК с контурной длиной 3 мкм (см. гл. 11) и участки ARS,обеспечивающие репликацию хромосом (см. гл. 5). Такие векторымогут реплицироваться как в Е. со И, так и в S. cerevisiae. Повышениеэффективности трансформации такими эписомными векторами сопровождалось высоким уровнем нестабильности трансформантов.При клонировании трансформантов в неселективных условиях 70-80 %клеток теряли плазмиду и, соответственно, вновь становились ауксотрофными по лейцину. Находясь в клетке, такие эписомные векторы могут интегрировать с хромосомной ДНК.Генно-инженерное конструирование у дрожжей пошло по путисоздания кольцевых плазмид с центромерами, а затем искусственных мини-хромосом, имеющих центромеру, теломеры и репликаторы (см.
гл. 5). Таким образом, трансформацию эукариот облегчаетсоздание векторов с репликаторами, специфичными для трансформируемого объекта. Так, высокая эффективность трансформацииD. melanogaster по гену r y — rosy (у мутантов дефектна ксантиндегидрогеназа и глаза приобретают коричневатый цвет) была до11—Инге-Вечтомов322 «?Часть 2. Разнообразие и единство генетических механизмовстигнута путем введения доминантной аллели гу+в один из мигрирующих элементов — Р, который представляет собой часть системыгибридного дисгенеза (см.
гл. 11). От 20 до 50% потомства мух, которым инъецировали такую ДНК в гениальные клетки, оказалисьтрансформантами гу+.Для клонирования генов и трансформации клеток животных перспективными векторами служат вирус SV40 и вирус папилломы. Этивирусы вызывают злокачественные опухоли у грызунов.
Кроме того,SV40 может заражать клетки обезьян и человека. Некоторые участкиДНК этих вирусов могут быть делегированы без потери инфекционности и замещены фрагментами чужеродной ДНК. Эти участки достаточно большие, их масса может достигать 3,3-3,5 МД (мегадальтон). Такиевекторы применяют для клонирования генов в клетках животных.В настоящее время интенсивно работают над созданием искусственных хромосом млекопитающих, однако эта работа встречаетзатруднения, связанные со сложным строением центромеры и кинетохора, а также репликаторов высших эукариот.12.8. Генная инженерия в природе и векторы дляклонирования генов растенийОпухолевое заболевание растений, известное как корончатыйгалл (рис.
12.10, см. цветную вклейку), описал еще Аристотель. В начале XX в Е. Смит и К. Таундсен (1907) показали, что это заболевание вызывает почвенная бактерия. Выделенная в виде чистой культуры Agrobacterium tumefaciens способна приводить к образованиюопухолей у некоторых представителей голосеменных и большинства двудольных покрытосеменных растений. Клетки растительныхопухолей интенсивно растут на искусственных средах и при этомне нуждаются в добавлении фитогормонов в отличие от клеток нормальных тканей.В 70-х годах XX в.
выяснилось, что причиной опухолеобразования являются так называемые 77-плазмиды, обнаруженные в клеткахнекоторых штаммов A. tumefaciens. П-плазмиды — это кольцевыемолекулы ДНК размером 50-80 мкм с молекулярной массой около1,3 х 108 Д длиной до 200 тыс. п.
о. Эти плазмиды проникают избактерий в клетки растения, и часть ДНК 77-плазмиды, так называемая Т-ДНК, ковалентно встраивается в хромосомы инфицируемогорастения. Будучи интегрирована с хромосомой, Т-ДНК вызывает образование опухоли, гиперпродукцию фитогормонов: цитокининови индолилуксусной кислоты (ауксина), а также синтез ряда произ-Глава 12. Клеточная и генная инженерияАБTi-плазмидаВФ323ГТ-ДНКХромосомаХромосомная'ДНК /Т-ДНКA. tumefaciensТрансформированнаяAgrobacteriumрастительная клеткаКорончатыйгаллtumefaciensРис. 12.11.
«Генетическая колонизация» высшего растения бактерией A. tumefaciens(по М.-Д. Хилтон, 1983)A — A. tumefaciens существует в ризосфере растения; Б — в клетках бактерии нарядус хромосомой содержится 77-плазмида; В — Г/'-плазмида проникает в клетку растенияи Т-ДНК встраивается в геном растения; Г — это приводит к образованию опухоли исинтезу опиновводных аминокислот, объединяемых под общим термином опины.Опухоль возникает вследствие нарушения баланса фитогормонов, откоторого зависит нормальный морфогенез растения. Опины, выделяемые клетками опухоли, бактерия использует в качестве источниковуглерода и азота, причем только в том случае, когда A. tumefaciensсодержит 77-плазмиду, заразившую клетки растения (рис.
12.11).77-плазмида относится к классу конъюгативных плазмид, т. е. может передаваться в клетки A. tumefaciens, лишенные ее. Этот процесс эффективно происходит в зараженном растении и стимулируется опинами.Описанные здесь взаимоотношения A. tumefaciens и высшего растения Дж. Шелл назвал генетической колонизацией, котораяпредставляет собой эксперимент по генной инженерии, поставленный самой природой. Таким образом, 77-плазмида— это природный вектор для трансформации клеток высших растений.
Как показал Дж. Шелл, если из клеток корешков табака с интегрированнойТ-ДНК получить культуру (каллус) растительной ткани, а затемцелые растения-регенеранты, то при последующем генетическоманализе признак «присутствие Т-ДНК» обнаруживает менделевскоенаследование.В качестве векторов для клонирования генов и последующейтрансформации растений используют две разновидности 77-плазмид.и*324 &Часть 2. Разнообразие и единство генетических механизмовОктопинНопалинРис. 12.12. 77-плазмиды (по Дж. Шеллу, 1983)А — октопиновая; Б — нопалиновая.Гомологичные участки (a-d) заштрихованы. Показаны гены синтетаз: Ocs — октопина,Nos — нопалина; катаболизма: Arg — аргинина, Осс — октинина, Agr — агропина,Аде — агроцинопина; Тга — функции переноса при конъюгации, Inc — несовместимость с другими плазмидами, Ori — начало репликацииОни различаются по типу опинов (<октопины или нопалины), которые синтезируют зараженные ими растения (рис.
12.12). Клонируемый ген встраивают вместо кодирующей части генов октопинсинтетазы или нопалинсинтетазы, входящих в состав Т-ДНК. Дляклонирования гена в бактерии, обычно Е. coli, конструируют гибридные плазмиды. После заражения растения плазмидой ее Т-ДНКсо встроенным геном интегрирует с хромосомной ДНК. В качествепотенциальных векторов для переноса генов рассматривают такжемногочисленные вирусы и транспозоны растений.В настоящее время не только выделены и проклонированы интересные с практической точки зрения гены высших растений, контролирующие запасные белки сои, ячменя, гороха, кукурузы, а такженекоторые гены, контролирующие активность ферментов: алкогольдегидрогеназы и каталазы кукурузы, а-амилазы ячменя и т.
д., но иГлава 12. Клеточная и генная инженерияФ 325полностью клонированы и секвенированы геномы Arabidopsis, риса,ячменя.Первыми чужеродными генами, введенными в начале 80-х годовXX века в высшие растения, были гены устойчивости к антибиотикам из Е. coli. Затем, в клетки табака был передан ген устойчивостик метотрексату — ингибитору дигидрофолатредуктазы. В табакбыл введен также ген дрожжей, кодирующий алкогольдегидрогеназу.Этот ген устойчиво наследовался в мейозе у растений-регенерантов,полученных из каллусной ткани, но не экспрессировался в клеткахрастений. Ген, кодирующий Р-глобин кролика, удалось интегрировать в геном табака.
Он устойчиво наследовался в культуре каллусной ткани, но опять же не экспрессировался.В клетки подсолнечника с помощью 77-плазмиды был передан генфазеолина бобов. Фазеолин — это гликопротеин, составляющий до50% запасного белка бобов. Будущее растение, полученное первоначально в виде каллусной массы, получило наименование санбин (отобъединения англ.
названия подсолнечника — sunflower и бобов —bean). Тот же ген фазеолина введен в табак и получены растениярегенеранты, синтезирующие менее 1 % фазеолина от общего белкарастения. Были получены растения табака, которые светятся в темноте благодаря экспрессии в них гена люциферазы светлячка.В опытах по генной инженерии растений экспериментаторывстречают некоторые специфические проблемы.
Среди них — такназываемая сомаклоналъная изменчивость, множественная интеграция переносимых генов и замолкание (отсутствие экспрессии)самих переносимых генов или генов реципиента, имеющих гомологичные последовательности нуклеотидов.Сомаклональная изменчивость представляет собой результат накопления изменений при культивировании каллусной ткани. Эти изменения представляют собой как мутации (см. гл. 13-15), так и эпигенетические изменения (см. гл.
18), проявляющиеся у регенерантов.Множественная интеграция переносимых векторных молекулсвязана с тем, что в клетку проникает несколько молекул вектора иони встраиваются в геном реципиента не на основании гомологичной рекомбинации, т. е. классического кроссинговера или конверсии, а на основании незаконной или негомологичной рекомбинации(см. гл. 7) в разные участки генома.Часть встроенных копий трансгена или все они могут не экспрессироваться. Это явление замолкания, или так называемого сайленсинга (от англ.
silence — молчание, тишина), механизм которого недо конца расшифрован.326 *Часть 2. Разнообразие и единство генетических механизмовНесмотря на некоторые нерешенные проблемы, уже сейчас методами генной инженерии успешно получают растения, устойчивые к гербицидам и вирусам, растения с индуцированной мужскойстерильностью, устойчивые к насекомым-вредителям сельского хозяйства и др. Особого внимания заслуживает создание трансгенныхсортов — живых вакцин для целей ветеринарии и медицины.