Диссертация (1145638), страница 25
Текст из файла (страница 25)
Характеристика экспрессии гена small bristles (Dm nxf1) в норме и умутантов Drosophila melanogaster. Магистерская диссертация. Санкт-Петербург: СПбГУ,2009.2.Ацапкина А.А., Голубкова Е.В., Касаткина В.В., Аванесян Э.О., Иванкова Н.А., МамонЛ.А.Особенностисперматогенезау Drosophilamelanogaster:рольосновноготранспортного рецептора мРНК (Dm NXF1).
Цитология. 2010. 7:574-579.3.Гинанова В.Р. Разнообразие и тканеспецифичность продуктов гена Nxf1 (nuclear exportfactor 1) Drosophila melanogaster, главного фактора ядерного экспорта мРНК.Диссертация на соискание ученой степени кандидата биологических наук. СанктПетербург: СПбГУ, 2017.4.Голубкова Е.В., Пугачева О.М., Демина Е.П., Шершабова А.Н., Мусорина А.С., МамонЛ.А. Стерилизующий эффект мутантного аллеля sbr10 (l(1)ts403) в компаунде с нулевымаллелем у самок Drosophila melanogaster. Генетика. 2004. 40(4):469-477.5.Голубкова Е.В., Ацапкина А.А., Мамон Л.А. Роль гена sbr/Dm nxf1 в синцитиальныепериоды развития у Drosophila melanogaster.
Цитология. 2015. 57(4):294-304.6.Дементьева Е.В. Дозовая компенсация: регуляция экспрессии генов половых хромосом.Вавиловский журнал генетики и селекции. 2012. 16(4/2):902-913.7.Касаткина В.В. Изучение роли мутантного аллеля sbr12 в определении стерильностисамцов Drosophila melanogaster. Магистерская диссертация. Санкт-Петербург: СПбГУ,2007.8.Катанаев В.Л. и Крючков М.В. Глаз дрозофилы как модельная система для изучениявнутриклеточной передачи сигнала при онтогенезе и патогенезе. Успехи биологическойхимии. 2011.
51:401–458.9.Кисели Д. Практическая микротехника и гистохимия. Будапешт: Изд-во Акад. наукВенгрии, 1962. 399 с.10. Мамон Л.А., Кливер С.Ф., Просовская А.О., Гинанова В.Р., Голубкова Е.В. Интронсодержащий транскрипт – эволюционно-консервативная особенность генов-ортологовnxf1 (nuclear export factor). Экологическая генетика. 2013.
11(3):3-13.11. Маркова Е.Г. Генетическая и молекулярная характеристика ряда летальных аллелей генаsmall bristles у Drosophila melanogaster. Магистерская диссертация. Санкт-Петербург:СПбГУ, 2002.12. Никитина Е.А., Комарова А.В., Голубкова Е.В., Третьякова И.В., Мамон Л.А.Полудоминантное влияние мутации l(1)ts403 (sbr10) на нерасхождение половых132хромосом в мейозе у самок Drosophila melanogaster при тепловом воздействии.Генетика. 2003а.
39:269-275.13. Никитина Е.А., Токмачева Е.В., Савватеева-Попова Е.В. Тепловой шок в период развитияцентральных структур мозга дрозофилы: формирование памяти у мутанта l(1)ts403Drosophila melanogaster. Генетика. 2003б. 39:33-40.14. Никулина А.О. Роль гена Dm nxf1 в формировании и функционировании нервной системыу Drosophila melanogaster. Магистерская диссертация. Санкт-Петербург: СПбГУ, 2011.15. Панова А.А., Брагина Ю.В., Камышев Н.Г. Роль зрительных стимулов в половомповедении дрозофилы. Вестник Тверского государственного университета.
Серия:Биология и экология. 2009. 15:17-30.16. Черезов Р.О. и Симонова О.Б. Перекрывающиеся гены и антисмысловая транскрипция уэукариот. Генетика. 2014. 50(7):749–764.17. Aibara S., Katahira J., Valkov E., Stewart M. The principal mRNA nuclear export factorNXF1:NXT1 forms a symmetric binding platform that facilitates export of retroviral CTERNA. Nucleic Acids Res.
2015. 43(3):1883-1893.18. Ali Y.O., Escala W., Ruan K., Zhai R.G. Assaying locomotor, learning, and memory deficits inDrosophila models of neurodegeneration. J. Vis. Exp. 2011. 49:e2504.19. Almeida M.S. and Bray S.J. Regulation of post-embryonic neuroblasts by DrosophilaGrainyhead. Mechanisms of Development. 2005. 122:1282–1293.20. Anderson P.
and Kedersha N. RNA granules. J Cell Biol. 2006. 172(6):803-808.21. Andreassi C. and Riccio A. To localize or not to localize: mRNA fate is in 3'UTR ends. TrendsCell Biol. 2009. 19:465-474.22. Apitz H. and Salecker I. A Challenge of Numbers and Diversity: Neurogenesis in the DrosophilaOptic Lobe. Journal of Neurogenetics. 2014.
28:(3-4) 233-249.23. Araújo S.J. The Hedgehog Signalling Pathway in Cell Migration and Guidance: What We HaveLearned from Drosophila melanogaster. Cancers (Basel) 2015. 7(4):2012–2022.24. Araújo, S.J. and Tear, G. Axon guidance mechanisms and molecules: Lessons frominvertebrates. Nat. Rev. Neurosci. 2003. 4:910–922.25. Armstrong, J.D., De Belle, J.S., Wang, Z. and Kaiser, K. Metamorphosis of the mushroombodies; large-scale rearrangements of the neural substrates for associative learning and memoryin Drosophila.
Learning Mem. 1998. 5:102–114.26. Bachi A., Braun I.C., Rodrigues J.P., Panté N., Ribbeck K., von Kobbe C., Kutay U., Wilm M.,Görlich D., Carmo-Fonseca M., Izaurralde E. The C-terminal domain of TAP interacts with thenuclear pore complex and promotes export of specific CTE-bearing RNA substrates. RNA.2000. 6:136–158.13327. Baek, M., Enriquez, J. and Mann, R.S. Dual role for Hox genes and Hox co-factors in conferringleg motoneuron survival and identity in Drosophila.
Development. 2013. 140:2027–2038.28. Barbee S.A., Estes P.S., Cziko A.M. … Ramaswami M. Staufen- and FMRP-containing neuronalRNPs are structurally and functionally related to somatic P bodies. Neuron. 2006. 52(6):9971009.29. Barone M.C. and Bohmann D. Assessing neurodegenerative phenotypes in Drosophiladopaminergic neurons by climbing assays and whole brain immunostaining. J. Vis. Exp. 2013.74:e50339.30. Barzik M., Kotova T.I., Higgs H.N., Hazelwood L., Hanein D., Gertler F.B., Schafer D.A.Ena/VASP proteins enhance actin polymerization in the presence of barbed end cappingproteins. J Biol Chem. 2005.
280:28653–28662.31. Bassell G.J. and Warren S.T. Fragile X Syndrome: Loss of Local mRNA Regulation AltersSynaptic Development and Function. Neuron. 2008. 60(2):201–214.32. Baumgardt M., Karlsson D., Terriente J., Diaz-Benjumea F.J., Thor S. Neuronal subtypespecification within a lineage by opposing temporal feed-forward loops. Cell. 2009.
139:969–982.33. Bausenwein B. and Fischbach K.F. Activity labelling patterns in the medulla of Drosophilamelanogaster caused by motion stimuli. Cell Tissue Res. 1992. 270:25–35.34. Bayraktar O.A., Boone J.Q., Drummond M.L., Doe C.Q. Drosophila type II neuroblast lineageskeep Prospero levels low to generate large clones that contribute to the adult brain centralcomplex. Neural Dev.
2010. 5:26.35. Bear J., Tan W., Zolotukhin A.S., Tabernero C., Hudson E.A., Felber B.K. Identification ofnovel import and export signals of human TAP, the protein that binds to the CTE element ofthe type D retrovirus mRNAs. Mol Cell Biol. 1999.
19:6306–6317.36. Beira J.V. and Paro R. The legacy of Drosophila imaginal discs. Chromosoma. 2016. 125:573–592.37. Bello B.C., Hirth F., Gould A.P. A pulse of the Drosophila Hox protein Abdominal-A schedulesthe end of neural proliferation via neuroblast apoptosis. Neuron. 2003. 37:209–219.38. Bello B.C., Izergina N., Caussinus E., Reichert H. Amplification of neural stem cell proliferationby intermediate progenitor cells in Drosophila brain development. Neural Development.
2008.3(5):2639–2648.39. Berni J., Beckwith E.J., Fernandez M.P. and Ceriani M.F. The axon-guidance roundabout genealters the pace of the Drosophila circadian clock. European Journal of Neuroscience. 2008.27:396–407.13440. Besse F., and Ephrussi A. Translational control of localized mRNAs: restricting protein synthesisin space and time. Nature Rev. 2008.
9:971–980.41. Bhakar A.L., Dölen G., Bear M.F. The pathophysiology of fragile X (and what it teaches usabout synapses). Annu Rev Neurosci. 2012. 35:417-443.42. Björk P. and Wieslander L. Integration of mRNP formation and export. Cell Mol Life Sci. 201774(16):2875-2897.43. Björk P. and Wieslander L. Nucleocytoplasmic mRNP export is an integral part of mRNPbiogenesis. Chromosoma. 2011. 120:23–38.44.
Bolognani F., Contente-Cuomo T., Perrone-Bizzozero N.I. Novel recognition motifs andbiological functions of the RNA-binding protein HuD revealed by genome-wide identificationof its targets. Nucleic Acids Res. 2010. 38(1):117-30.45. Bolognani F. and Perrone-Bizzozero N.I. RNA-protein interactions and control of mRNAstability in neurons. J Neurosci Res. 2008. 86:481-489.46. Boquet I., Boujemaa R., Carlier M.F., Préat T. Ciboulot regulates actin assembly duringDrosophila brain metamorphosis.
Cell. 2000a. 102(6):797-808.47. Boquet I., Hitier R., Dumas M., Chaminade M., Préat T. Central brain postembryonicdevelopment in Drosophila: implication of genes expressed at the interhemispheric junction. JNeurobiol. 2000b. 42(1):33-48.48. Borst A., Haag J., Reiff D.F. Fly motion vision. Annu. Rev. Neurosci. 2010. 33: 49–70.49. Bossing, T., Udolph, G., Doe, C. Q. and Technau, G. M. The embryonic central nervous systemlineages of Drosophila melanogaster. I. Neuroblast lineages derived from the ventral half ofthe neuroectoderm.
Dev. Biol. 1996. 179:41-64.50. Boyan G.S., Reichert H. Mechanisms for complexity in the brain: generating the insect centralcomplex. Trends Neurosci. 2011. .34(5):247-257.51. Bramham C. R., Alme M. N., Bittins M., Kuipers S. D., Nair R. R., Pai B., et al. The Arc ofsynaptic memory. Exp. Brain Res. 2010. 200:125–140.52. Braun I.C., Herold A., Rode M., Conti E., Izaurralde E. Overexpression of TAP/p15Heterodimers Bypasses Nuclear Retention and Stimulates Nuclear mRNA Export.
J BiolChem. 2001. 276:20536-20543.53. Braun I.C., Herold A., Rode M., Izaurralde E. Nuclear export of mRNA by TAP/NXF1 requirestwo nucleoporin-binding sites but not p15. Mol Cell Biol. 2002. 22(15):5405-54018.54. Britton, J.S. and Edgar, B.A. Environmental control of the cell cycle in Drosophila: nutritionactivates mitotic and endoreplicative cells by distinct mechanisms. Development. 1998.125(11):2149–2158.13555. Broadus, J., Fuerstenberg, S.
![](https://s.studizba.com/z.php?f=/templates/si/i/noavatar.png&w=100&h=100&t=1"){kind=avatar}
