Диссертация (1151613), страница 3
Текст из файла (страница 3)
В гнезде курицы она в среднем составляет 34-32°С (Третьяков Н. П.и др., 1978). Также температура отличается в зависимости от расположенияяйца (в центре или периферии гнезда). Поэтому для равномерного прогревавсех яиц с 1-го дня насиживания птиц перекатывает яйца - более нагретыеперемещает из центра на край гнезда, где они остывают, а при следующемперекатывании делает наоборот. С 1-го по 11-й день насиживания курицаперемещает яйца около 35-и раз в сутки, а с 12-го по 21-й день до 48 раз.Непосредственно перед выводом птица активно перекатывает яйца в гнезде(Фердинандов В.В.,1931).
Необходимо отметить, что при естественномнасиживаниипроисходиткондуктивныйобогревяиц(засчетнепосредственного соприкосновения поверхности яйца с поверхностью теланаседки), а при искусственной инкубации - конвективный (за счет теплоговоздуха) (Третьяков Н. П. и др., 1978).Вовремяотлучекнаседки,которыефизиологическидлянеенеобходимы, температура яиц снижается в среднем на 4-6 °С (Baldwin S.
P.,1932). Суточные колебания температуры яиц колеблются в пределах 3-4°С(утром с 4 до 8 ч и днем с 14 до 16 ч) (Рольник В. В., 1968). При насиживаниив 1-е сутки они имеют температуру до 38,5 °С, в то время как в инкубаторетемпература постоянна и равна 37,4 °С, а перед выводом эти температурысоставляют соответственно 40,4 и 41,5 °С. Следовательно, в начале15насиживания яйца получают больше тепла нежели в инкубаторе (Хаскин В.В., 1960). Это связано с тем, что 1-ые 3 дня инкубации в яйце протекаютпреимущественно реакции, связанные с поглощением тепла, поэтомуэмбрионы кур особенно чувствительны к недостаточному обогреву яиц вэтот период. При этом масса зародыша увеличивается более чем в 10 раз(Пчелкин Ю. и др., 1985).Учеными отмечено, что при естественной инкубации имеет наличие такназываемого ионного облака, которое образуется за счет трения пера о яйцо(Третьяков Н.
П. и др., 1978), а также биоакустики, при которой наседкаиздает звуки, стимулирующие развитие в яйце (Тихонов А.В. и др., 1988).Исследованиямиученыхустановлено,чтоприестественномнасиживании яиц индейкой, белок под наседкой полностью использовался кконцу 18-го дня инкубации, а в инкубаторе на 19-й день оставалсянеизрасходованным в количестве от 0,5 до 2,0 г. При этом степеньвтянутости желтка на 25-й день у зародышей при насиживании также былавыше (Беличенко Т. И., 1961). Также установлено, что при искусственнойинкубации яиц можно выделить эмбрионы с хорошим и слабым развитием, атакжеэмбрионов-задохликов,замерших,кровяныекольца,априестественной инкубации - все эмбрионы имеют хорошее развитие(Реснянская Е.
В., 1970). При этом высокая смертность зародышейнаблюдается во 2-ом периоде инкубации.Учеными установлено, что высокая эффективность насиживания всравнениисискусственнойинкубациейобусловленаежедневнымимногократными цикличными колебаниями внутрияйцевой температуры черезкаждые 30-60 мин днем и через 1-2 ч ночью во время пересаживаний курицыв гнезде. Это эволюционно необходимый физиологический механизм дляотведения излишков тепла во избежание перегрева (Kuiper J.
W., 1951;Хасанова С., 1988; Рудь А., 2004). Подтверждением этого факта являютсяисследования Третьякова Н.П. (1990), который установил, что приестественном выводе гибель зародышей в последний период инкубации от16гипертермиипрактическиотсутствует.Точнодозированныестрессыоказывают благоприятное действие на организм (Забудский Ю. И., 1990;Zulkifli I., 1995; Tazawa H, 1987; Wang Guangying, 1990; Фандеев Е. И. идр.,1996). Однако, стрессы, сопровождающие искусственную инкубацию, неявляются дозированными и физиологичными, что отрицательно сказываетсяна развитии эмбрионов кур.Еще одной отличительной особенностью насиживания является большаяциркуляция воздуха, активное испарение, повороты и перекатывания яиц отпериферии к центру наседками, в среднем осуществляющими 50-200поворотов в сутки.
Во время каждого поворота происходит укладка яйцатупым концом вверх или экваториально, что обеспечивает не толькоравномерное прогревание и аэрацию яиц, но и предотвращает возможностьприлипания зародышей к подскорлупным оболочкам. При этом положениеэмбриона ориентируется головой к тупому концу яйца, что оптимально ковремени вывода. По мнению C. Romijn (1938) большей скоростью ростаобладают зародыши, у которых более интенсивный газообмен, как уэмбрионов кур при естественном насиживании, нежели при искусственнойинкубации.Гибель зародышей кур при насиживании связана, прежде всего, свнутренними факторами (наследственность, низкое качество яиц), апричинами гибели эмбрионов при искусственной инкубации являются каквнутренние, так и внешние факторы (Uzieblo, A.
et al., 1984).Согласно классификации Маршалла (Marschall W., 1947), к внешнимпричинам, влияющим на 1-ый пик гибели (чаще первые 24 ч), относятся:– не физиологичная температура инкубации, обуславливающая асинхронноеразвитие различных тканей и органов;– малое количество поворотов яиц;– гипоксия.К внутренним факторам относят:– неправильная ориентация эмбриона в яйце;17– наличие летального гена.2-ой пик смертности, связан с внешними факторами (чаще на 13-есутки), в частности:– нарушение температурного и влажностного режима инкубации;– неправильное положение эмбриона в яйце в связи с недостаточным угломнаклона барабана и количеством поворотов.На основании вышеизложенного можно заключить, что эффективностьестественной инкубации намного выше, чем искусственной, однако вусловиях производства для инкубирования большого количества яицнеобходима искусственная инкубация.Важность стимуляции эмбрионального развития уже в первые суткиинкубации состоит в том, что первоначально зародыши, имеющие болеевысокийтемпразвития,кмоментувыводаоказываютсяболееподготовленными к наклеву и последующему вылуплению (Сипин В.
Г.,1991, 1985). Именно поэтому применение изучаемых в данной работе БАВперед инкубацией может способствовать более высоким темпам ростазародышей за счет оптимизации обменных процессов и повышенияестественной резистентности, а значит, и адаптационных возможностейорганизма.1.2. Трансовариальное применение различных препаратов и БАВ длястимуляции эмбрионального развития птицИзвестны способы оптимизации эмбриогенеза при введении различныхвеществипрепаратоввпериодинкубациияиц.Учитывая,чтоэмбриональный период является фундаментом для становления здоровьябудущей особи, использование новых наукоемких технологий на стадииинкубации яиц для получения большего количества здорового молодняка приснижении затрат труда и средств является актуальным (Лемешева М.М.,2011; Потаев В.С., 2009).По результатам исследований Аганичевой А.А. (2014) использованиеполиоксидония и раствора яичного белка для обработки инкубационных яиц18способствует повышению вывода цыплят на 2,1-2,9%, а выводимости- на2,1-4,6%.
Шутенков А.Г. (2011) использовал препараты «Ксидифон» и«Иммунал» для обработки инкубационных яиц. Масса эмбрионов курвозросла по сравнению с контролем на 9,4% и 9,8%, соответственно.По данным A. H. Zakarial and M. A. Al-Аnezi (1996) аскорбиноваякислота в дозе 3 мг/ яйцо при инкубации яиц может улучшить выводимость имассу цыплят, снизить количество выбраковки зародышей, в то время как вдозе 12 мг/яйцо отмечено снижение массы эмбриона и выводимости, приэтом увеличилось эмбриональная смертность и количество отбракованныхцыплят.Проницаемость скорлупы яйца для растворов препаратов была доказанаисследованиями О.С.
Ручия (2007), по данным которого в куриное яйцо приобработке может проникнуть до 0,5 мкмоль раствора марганца сукцинататетрагидрата,приэтомуразвивающегосяэмбрионапроисходитинтенсификация обменных процессов и естественной резистентности, вчастности, уровень лизоцима возрос на 28%, а БАСК - на 6,75% посравнению с контролем.Как известно, эффект селекциипо повышению вывода цыплят непревышает 0,5 % за поколение (Кочиш О.И., 2005).
За последние годы былпроведен ряд исследований по стимуляции эмбрионального развития птицыпутемтрансовариальнойбиологическиактивнымиобработкиинкубационныхвеществами,прикоторыхяицразличнымивыводцыплятпревосходил контроль на 4-7 %. (Агеева К.М., 2006; Азарнова Т.О., 2006;Кочиш И.И, 2007; Краснобаев Ю.В., 2009; Лукичева В.А., 2003; НайденскийМ.С. 2007; Ершов П.А., 2013 и др.). По результатам работ ряда ученых(Агеева К.М., 2006; Азарнова Т.О., 2013; Ермолова Ю.С., 2010; МишинаД.М., 2012; Тотоева М.Э., 2004) можно предположить, что при применениипрепаратов комплексного действия вывод цыплят будет значительно вышеконтроля, что окажет положительное влияние на резистентность, рост иразвитие цыплят.
Также в ряде случаев установлено преимущество19двукратной обработки инкубационных яиц перед однократной (ЯкубовскаяМ.Ю., 2011).Известно применение янтарной кислоты и коламина (Азарнова Т.О.,2013; Брюшинин Н.В., 2003; Лукичева В.А, 2003; Найденский М.С., 2007), атакжекомбинированнаякислотами, такими, какобработкаяицнекоторымиорганическимиЯк+ глицин, Як+ лимонная кислота, Як+ Кол(Брюшинин Н.В., 2003; Агеева К.М., 2006; Азарнова Т.О., 2013). Однако досих пор не изучено комплексное использование коламина, янтарной кислотыисерина дляпредынкубационной обработкис целью стимуляцииэмбриогенеза яичных кур.Влияние вышеуказанных веществ при трансовариальной обработкеинкубационных яиц на естественную резистентность эмбрионов и цыплят,некоторыебиохимическиепоказателисывороткикрови,атакжеантиоксидантной защиты изучено в данной работе.1.3 Характеристика янтарной кислоты, ее применение в медицине,ветеринарии и животноводствеЯнтарная кислота (бутандиовая кислота, сукцинат) - дикарбоноваякислота, общей формулы: НООС(СН2)2СООН, продукт и субстрат ЦТК,универсальный промежуточный метаболит, образующийся в процессеокисления и взаимопревращения углеводов, белков и жиров в живой клетке.Анионянтарнойкислотыназываетсясукцинатом.Посколькувфизиологических условиях янтарная кислота имеет вид аниона, то термин«сукцинат» часто употребляют как синоним термина «янтарная кислота».Молекулярная масса янтарной кислоты составляет 118,1.
![](https://s.studizba.com/z.php?f=/templates/si/i/noavatar.png&w=100&h=100&t=1"){kind=avatar}
