Диссертация (1151526), страница 4
Текст из файла (страница 4)
Из этого следует, что антибиотики не основнойвыбор для контроля сальмонеллы у поголовья бройлеров (Van Immerseel, 2009).В этих странах запрещены в животноводстве следующие антибиотики:авопарцин,бацитрацин,спирамицин,тилозинфосфат,вирджиниамицин,карбадос. Остаются разрешенными флавомицин, монензин, салиномицин(Пономаренко, 2009).На бройлерной птицефабрике ОАО АПК «Орловщина» на цыплятахкросса «Смена-2» был проведен эксперимент по применению антибиотикаАмоксиклав.
При введении препарата в рацион с водой в дозе 20 г на 200 лувеличилась сохранность поголовья на 3,2%, однородность – на 15%, живаямасса в 21-дневном возрасте – на 55,6 г (Роговнин и др., 2003). Имеютсяэкспериментальные данные об эффективности применения антибиотикаЭнрадин в бройлерном птицеводстве.Отмечено, что введение препарата врацион в дозе 200 г/т корма способствовало увеличению живой массы в 35дневном возрастена 2,1 %, снижению затрат корма на 5,2%, увеличениюсохранности поголовья на 1,1% (Пономаренко, 2009).В опытах, проведенных в условиях вивария ОПО «Загорское ЭПХВНИТИП», также было изучено влияние антибиотика Бацилихина назоотехнические показатели цыплят-бройлеров.
Применение препарата вдозировке 125г/т корма способствовало увеличению среднесуточных привесовбройлеров до 5%, улучшению сохранности молодняка на 5-10% (Франк и др.,172006). В этих же условиях, на бройлерах кросса «Кобб 500» было проведеноиспытание антибиотика Кормостим. Добавление в рацион препарата вдозировке 1,5-2г/т корма способствовало увеличению сохранности поголовьяна 2,9 %, увеличению живой массы к концу периода откорма – до 6,4%, а такжеубойного выхода – на 1,1% (Ленкова и др., 2007).Из недавних разработок перспективным представляется антибиотикФлавомицин. В мире было проведено большое количество экспериментов нацыплятах-бройлерах, которые получали с кормом препарат в дозировке 3-5мг/кг корма.
В опытных группах убойная масса в 35-дневном возрастеповышалась на 100-150 г, сохранность поголовья – на 3-5%. У кур-несушекприменение Флавомицина улучшило конверсию корма на 3% (Пономаренко,2012).В условиях птицефабрики на цыплятах кросса «Хаббард» былопроведено исследование антибиотика Вирджиниамицина под торговой маркойStafac-110.
Введение препарата в рацион дозировке 140г/т корма увеличиложивую массу цыплят на 3,1 %, а среднесуточный привес – на 3,2 % (Хойцман идр., 2012).2.1.2.2. Эффективность пробиотиков в птицеводствеОсновоположникомконцепциипробиотическихмикроорганизмовявляется И.И. Мечников, который еще в 1903 году предложил использованиемикробных культур – антагонистов для борьбы с болезнетворными бактериями.Происхождение термина принадлежит W. Kollath, который предложил в 1953термин «пробиотик» для определения активных веществ, которые особенноважны для здорового развития жизни (Vila et al., 2010). Затем Kolb (1955)предложил пробиотическую терапию, основанную на применении культурысимбионтов для предотвращения вредных воздействий антибиотиков.
Parker(1974) сделал определение ближе по смыслу к ныне существующему, и широкорассмотрел организмы и вещества, которые способствуют балансу микрофлорыкишечника (Guillot et al., 2000). Затем Fuller (1989) модифицировалопределение пробиотиков как «живая микробная кормовая добавка, которая18полезно влияет наживотное-хозяина, улучшая микробный баланс егокишечной флоры», исключая мертвые организмы и другие вещества изопределения.
Этими «живыми организмами могут быть бактерии, дрожжи игрибы (Havenaar, Huisin’tVeld, 2002).Желудочно-кишечный тракт у бройлеров стерилен при инкубации, имикрофлора корма и окружающей среды заселяет его. После первойколонизации новые бактериальные разновидности испытывают определенныетрудности, поскольку широкий диапазон внешних факторов влияет на составмикрофлоры (Snel et al., 2002). Множество микробных разновидностей былоиспользовано для коррекции дисбактериоза желудочно-кишечного тракта(Simon et al., 2001). При этом разновидности Lactobacillus и Bifidobacteriumприменялись наиболее часто в медицине, а Bacillus, Enterococcus и дрожжиSaccharomyces – в ветеринарии (Jin et al., 2000; Kalavathy et al., 2003).Согласно Jernigan (1985) существуют два основных типа бактерий,которые можно выделить из пищеварительного тракта.
Первый существует втесной связи с эпителием слизистой оболочки, и второй – свободно в просветепищеварительного тракта. Поэтому, способность микроорганизмов к адгезиине является обязательным критерием.Большинство пробиотических препаратов производится на основеданных штаммов: Lactobacillus spp. (L. acidophilus, L. helveticus, L. lactis, L.casei); Bifidobacterium spp., Enterococcus faecium, Enterococcus faecalis; Bacillusspp.; и дрожжей Saccharomyces cerevisiae (Huang et al., 2004).
РазновидностиLactobacillus и Е. faecium обычно присутствуют в ЖКТ, в то время какразновидности Bacillus и дрожжи только спорадически присутствуют вмикрофлоре пищеварительного тракта (Lew, Brigs, 1956; Fuller, 1989). Дляэффективности, пробиотические микроорганизмы должны быть устойчивыми втечение длительного периода при нормальных производственных условияххранения корма и выживать в ЖКТ целым видом для благоприятноговоздействия на организм (Chichlowski et al., 2007).
СогласноVanden Abbeele etal.(1990),идеальныйпробиотический19микроорганизмдолженбытьустойчивыми к пищеварительным ферментам; не иметь патогенных свойств;иметь адгезивную способность; синтезировать антимикробные вещества; бытьустойчивым к кормовым антибактериальным препаратам; иметь высокуюспособность к размножению в условиях ЖКТ; стимулировать иммунитеторганизма (Patterson, Burkholder, 2003;РазновидностипробиотическихVila et al., 2010; Khan, Naz, 2013).молочнокислыхмикроорганизмов,относительно неустойчивы, в то время как споры разновидностей Bacillus –болеетермостабильныилегкопереживаютпроизводства кормов (Revolledo et al.,технологический2006).
Кроме того,процессразновидностиBacillus оказывают влияние на скорость роста без балансирования илистабилизации эффектов молочнокислых бактерий (Patterson, Burkholder, 2003;Flint, Garner, 2009).Существуют два основных механизма, способствующих поддержаниюпробиотикамиполезногомикробногозаселения:конкурентоспособноеисключение и иммунная модуляция. Конкурентоспособное исключениевключает конкуренцию за субстрат, синтез антибактериальных метаболитов, иконкуренцию за места адгезии. Отмечалось, что продукт конкурентоспособногоисключения, синтезированный в пищеварительном тракте на уровне слизистойоболочки, оказался эффективным в борьбе с патогенами, снижая количествозараженных птиц с 50 до 10% (Stem et al., 2001).ПробиотическаяоказываладобавкаблагоприятноесразновидностямивоздействиенаLactobacillus,резистентностьктакжедругимвозбудителям инфекций, таких как популяция Clostridium spp.
(Decroos et al.,2004) и Campylobacter spp. (Stem et al., 2001). Снижение колонизацииколиформами слепой кишки было выявлено у цыплят, получавших рацион сдобавлением штаммов лактобацилл, выделенных из кишечника цыплят (Jin etal., 1998). Напротив, Murry et al. (2006) сообщил, что у птиц, с добавлениемпробиотика на основе Lactobacillus, наблюдались более высокие уровниLactobacillus, но низкие C. perfringens по сравнению с птицами контрольнойгруппы. (Priyankarage et al., 2003; Mountzouris et al., 2007).20Отмечалось, что штаммы Lactobacillus и Bacilluscereus синтезировалиразличные типы антибиотиков.
L. acidophilus синтезировал ацидофилин,лактоцидин, и ацидолин, и L. plantarum – лактолин.синтезировалиподобныебактериоцинамвещества,Bacillus cereusугнетающиеростStaphylococcus aureus и Micrococcus luteus (Koenen et al., 2004; Risoen et al.,2004).Ацидофилин,ацидолин,лактобациллин,илактоцидинпродемонстрировали in vitro выраженную активность против Klebsiella spp.,Pseudomonas spp., Proteus spp., Salmonella spp., Shigella spp., Staphylococcus spp.,разновидностей Vibrio и энтеропатогенной E. сoli (Maiorka et al., 2001; Vila etal., 2010).
Также сообщалось, что Lactobacillus plantarum обладала маннозочувствительными рецепторами, необычным явлением у грамположительныхбактерий, что способствует конкуренции за те же самые места адгезии вкишечнике, что и у грамотрицательных патогенов (Gusils et al., 1999; VanImmerseel et al., 2009). Также испытания in vivo показали влияниемолочнокислых бактерий на колонизацию сальмонеллой, хотя в большинствесообщений упоминались лишь незначительные эффекты.
Когда 108 КОЕ/гкультуры L. salivarius вместе с 106 КОЕ/г S. enteritidis вводили в зоб суточныхцыплят, сальмонеллы были полностью ликвидированы у птиц после 21 дня(Pascual et al., 1999).Хотя молочнокислые бактерии не синтезируют масляную кислоту сами,они косвенно увеличивают ее концентрацию в пищеварительном тракте,поскольку они сами стимулируют пролиферацию маслянокислых бактерий.Этот механизм носит название перекрестного питания. Оказалось, чтомолочная кислота, синтезированная in vitro Bifidobacterium adolescentis вместе скрахмалом как единственным источником углерода, используется штаммамибактерий Anaerostipes caccae и Eubacterium hallii (в смешанной культуре) длясинтеза высоких концентраций масляной кислоты (Bengmark еt al., 2001;Duncan et al., 2004; Khan, Naz, 2013).Dunham (1993) сообщил, что птицы, получавшиеL.
reuteri с кормом,имели более длинные ворсинки подвздошной кишки и более глубокие крипты,21чем птицы контрольной группы, что является физиологическим ответом,связанным с расширением функции T-клетки и повышенным синтезомантисальмонеллезных антител IgM. Также сообщалось, что систематическоеприменениепробиотическихнеспецифическойиммуннойпрепаратовсистемыприводиложивотныхзакукреплениюсчетулучшениягуморального и клеточного иммунного ответа, которые связаны с синтезом Тлимфоцитов, экспрессией цитокинов, интерлейкинов, Т-киллеров, синтезомантител, функцией тканевых макрофагов (Chichlowski et al., 2007; Khan, Naz,2013).Еще один механизм действия пробиотиков проявляется в сниженииактивности бета-глюкозидаз и бета-глюкуронидаз, синтезируемых бактериямикишечника и участвующих в формировании токсинов (Jin et al., 2000).Исследования, проведенные in vitro на пробиотической культуре Bacillusamyloliquefaciensпоказали,что36-часоваякультурабактерийоказалавыраженный бактерицидный эффект на патогенные штаммы E.coli, S.
enterica,S. typhimurium (Ortiz et al., 2014). Zulkifli et al. (2000)сообщили, чтоэффективность пробиотической культуры также может зависеть от стрессовыхфакторов и генетики бройлеров. Так, у цыплят кросса «Хаббард», получавшихпробиотические микроорганизмы после теплового стресса был обнаруженболее выраженный синтез антител, чем у цыплят кросса «Шейвер»,получавших аналогичный рацион.Сообщалось, чтовведение в рацион L. acidophilus и Bacillus cereusспособствовало увеличению титра IgA и IgM в сыворотке крови цыплятбройлеров, персистенции Т-лимфоцитов и массы иммунных органов (Huang etal., 2004), а введение в рацион пробиотической добавки на основе штаммов L.acidophillus и S. faecium в дозе 1 кг/т корма способствовало значительномуувеличению скорости роста и снижению затрат корма (Сhoudhary et al., 2008).Имеются данные о том, что введение в рацион цыплят-бройлеровпробиотической культуры Bacillus subtilisв различных концентрацияхспособствовало увеличению темпа роста, улучшению конверсии корма,22химического состава и качества мяса (Li et al., 2008; Zhou et al., 2010).Отмечалось, что у цыплят, получавших добавку, была выше диффузнаялимфоидная инфильтрация солитарных фолликулов на слизистой оболочкекишечника, а также иммунный ответ на вакцинацию против болезни Ньюкасла,что говорит о более сильном иммунологическом статусе цыплят опытныхгрупп (Khaksefidi, Ghoorchi, 2006; Molnar et al., 2011).Имеются экспериментальные данные о том, что пробиотик Астра-М наоснове молочнокислых, пропионовокислых и азотобактерий в дозировке 1 кг/ткорма повышал уровень поствакцинального иммунитета к вирусу болезниНьюкасла у цыплят на 12,5%, инфекционного бронхита кур – на 14,3 %,инфекционной бурсальной болезни – на 8,3-12,4%.
![](https://s.studizba.com/z.php?f=/templates/si/i/noavatar.png&w=100&h=100&t=1"){kind=avatar}
