Диссертация (1151328), страница 7
Текст из файла (страница 7)
После этоговыдерживают, помешивая, 6 часов. По истечении этого времени водуменяют. В течение суток данную процедуру повторяют четыре раза.Отмечено, что обработанная таким образом зерновая культура, пораженнаятоксиногенным штаммом Fusarium sporotrichiella, потеряла способностьвызывать некроз кожи у кроликов (И.А. Курманов 1962, Placinta C.M. 1999,Sakhatsky, I.M. 1999, Smith T.K. 2000, 2003).Деконтаминацияаммиакомилимонометиламиномоказываетположительное влияние в отношении афлатоксинов, охратоксинов изеараленона. Лактонные и эфирные группы, входящие в состав зеараленона иродственных ему соединений, а также афлатоксинов и охратоксинов,взаимодействуют с аминами. Вследствие этого взаимодействия образуютсяамиды, что приводит к глобальным изменениям в свойствах молекулмикотоксинов.
Но при этом стоит отметить, что разрыв лактонного кольцапри взаимодействии веществ деконтаминантов происходит при экспозицииот получаса до нескольких часов в щелочной среде, при температуре 100 оС и38давлении от 3 до 10 бар. Отмечено, что углеаммонийные соли способныразрушать афлатоксины B1 и G1, а также Т-2 токсин с образованием Т-2тетраола и Т-2 триола (В.А.
Труфанова, А.Н. Котик 2005).При концентрации углеаммонийных солей в зерне 8 % и экспозиции 4недели концентрация афлатоксина B1 снизилась на 75 %, афлатоксина – G1 на94 % от начальных концентраций, которые были равны 40 и 12 мг/кгсоответственно. Углеаммонийные соли являются сильными фунгицидами,бактерицидами и инсектицидами. В зависимости от качества и влажностизернаконцентрацияуглеаммонийныхсолейдляобработкидолжнанаходиться в диапазоне от 2,5 до 4,5 %.
В литературе имеются сведение, чтоконцентрации углеаммонийных солей до 4,5% не оказывают негативноговоздействия на цыплят-бройлеров (Викулова Л. С. И др. 2014).Привзаимодействиипроисходитразрушениемикотоксиновактивныхсгрупп,этимидеконтаминтамикоторыеобуславливаюттоксические свойства этих веществ. После взаимодействия образуютсяхимические соединения, обладающие высоким содержанием гидрофильныхгрупп, вследствие чего эти соединения легко удаляются при помощи водныхрастворов из обработанного материала.Деконтаминациягипохлоритомнатрия.Основныедействующиевещества гипохлорита натрия – восстановленный хлор и кислород.
Наличие всоставемолекулыположительныхгипохлоритасвойств,которыенатрияпридаетпроявляютсявемуцелыйширокомрядспектревоздействия на системы организма. Среди этих свойств можно выделитьпротивовоспалительное,антитоксическоеиантимикробное,противоопухолевое.иммуномодулирующее,Значительновыраженныеокислительные свойства гипохлорита натрия делают его эффективнымдезинфицирующим и детоксицирующим веществом. Разработана методика,которая улучшает качество зерновых культур (Martinelli J.A. и др., 2005)используя для обработки зерна растворы гипохлорита натрия. В зависимости39от поставленной задачи деконтаминацию проводят путем погружения зернав приготовленный раствор, распыления раствора в виде аэрозоля поповерхности зерна или продолжительного вымачивания. Гипохлорит натрияможет быть использован в виде чистого раствора или в смеси с перекисьюводорода и щелочами, органическими растворителями (этилацетатом,этанолом).
Также в качестве добавок можно вводить органические кислоты(уксусная, надуксусная). При экспозиции в растворе около 7 часов вщелочном 0,8%-ном растворе гипохлорита натрия происходит значительноеснижение концентрации ДОН, зеараленона, ниваленола, фумонизинов,монилиформина, охратоксина А, патулина и цитринина. После обработкиповышается интенсивность естественной пигментации зерна и отмечаетсяснижениекраснотызерна,котораяявляетсяиндикатором,свидетельствующим о наличии пигментов плесневых грибов, большинствокоторых являются высокотоксичными, например аурофузарин.
Еще однимположительным аспектом воздействия растворов гипохлорита натрияявляетсязначительноефитопатогеннымиснижениебактериями,втомпроцентачислесемян,родовзараженныхPseudomonasиXanthomonas и пр.Ключевым моментов целесообразности применения гипохлоританатрия служит то, что он не является чужеродным соединением дляорганизма животных. Гипохлорит-ион вырабатывается клетками иммуннойсистемы организма при развитии первичного иммунного ответа.
Данныйпроцесс сопровождается воспалительными реакциями. Гипохлорит натрияобеспечивает обезвреживание токсинов патогенных бактерий и естественноеокислениетоксичныхостатковразрушенныхклетокбактерийиповрежденных клеток организма. Помимо этого, гипохлорит натрияобогащает ткани кислородом. Еще одно из положительных свойств – этоспецифическое влияние на активность генов, которые ответственны заразвитие воспалительного процесса.
В качестве примера применения этогопрепарата можно рассмотреть опыт по выпаиванию курам раствора40гипохлорита натрия. В качестве источника микотоксинов применяли корм,содержащий 40-70 мкг/кг Т-2 токсина (Труфанова В.А. и др., 2005).Численность голов в группах была равна: опыт – 1672; контроль – 1795. Вопытной группе в течение 25 суток выпаивали раствор гипохлорита натрия вконцентрации 30 мг/л. По окончании эксперимента был сделан вывод о том,что выпаивание раствора гипохлорита натрия оказало положительноевлияние на сохранность птицепоголовья, количество яиц на начальнуюнесушку и инкубационные качества яиц.Озон является еще одним эффективным окислителем микотоксинов. Сцелью деконтаминации зерна применяют насыщенную озоном воду.
Приприменениивоздействияозонаназернопроисходитразрушениеафлатоксинов, фумонизина B1, циклопиазоновой кислоты, охратоксина А,патулина и зеараленона (Mayura К. 1998).Вследствие воздействия озоном, зеараленон не проявляет эстрогеннуюактивность. При обработке озоном естественно зараженной афлатоксиномкукурузы не отмечено проявления клинических признаков афлатоксикоза уиндеек (Mayura К. 1998).Доказано, что трихотеценовые микотоксины также деградируют привоздействии озоновых препаратов.
Самое активное воздействие молекулаозона оказывает на молекулу трихотецена по двойной связи между атомамиС9иС10.Следствиемпромежуточныхэтогосоединений,являетсяозонидиобразованиемолозониднестабильныхтрихотеценов,сгидролизом связи углеродной цепи С9-С10 (J.C. Young at al., 2006).Ферментативные препараты и ряд микроорганизмов также могутнейтрализоватьмикотоксины.Микотоксинымогутформироватьразнородный по химическому строению класс соединений.
Поэтомуферментативныепрепараты,обладающиеспособностьюизменятьхимическую структуру микотоксинов, являются представителями несколькихклассов и обладают специфичным воздействием в отношении различных41групп токсинов. Нейтрализация микотоксинов обусловлена воздействиемферментов,обладающих(лактоногидролазы,трансферазной,эпоксидгидролазы,гидролитическойкарбоксилэстеразы)иоксидоредуктазной активностью.Карбоксилэстеразы стимулируют гидролиз сложноэфирных связей вмолекулах трихотеценовых микотоксинов.
Рядом исследований установлено,что именно эти процессы осуществляются бактериями, которые населяюткишечник кур (J.C. Young at al., 2006). Смеси микроорганизмов, выделенныхизсодержимогокишечника,могутизменятьбольше12разныхтрихотеценовых микотоксинов. Также было установлено (В.А. Труфанова,2004), что введение в корм для кур-несушек культуры штамма Escherichiacoli, полученного из толстого отдела кишечника, приводило к увеличениюяйценоскости и приросту живой массы и на фоне Т-2 токсикоза. В качествеконтроля была взята группа, получавшая только Т-2 токсин; доза ввода Т-2токсина в корме как опытной, так и контрольной групп составляла 8 мг/кг.Гликозилтрансферазы осуществляют деконтаминацию микотоксинов сактивными формами глюкозы.
В геноме Arabidopsis thaliana содержитсяболее 100 генов, кодирующих различные изоформы этого фермента. Этигены наиболее активны в отношении ДОН. Гликозилтрансферазы получены вклетках дрожжей (B. Poppenberger et al., 2006).Ферменты, полученные от трансформированных дрожжей, эффективноразрушают ДОН, однако они показали более слабую степень воздействия поотношению к остальным трихотеценовым микотоксинам. Такие дрожжирекомендуютиспользоватьвпивовареннойпромышленностидлядеконтаминации зерна. В растениеводстве и животноводстве можноиспользоватькакиммобилизованнуюгликозилтрансферазу,такипродуцирующие ее дрожжи.Лактоногидролазы разрушают зеараленон, после чего этот микотоксин42не проявляет эстрогенной активности.