Диссертация (1151613), страница 18
Текст из файла (страница 18)
В частности, интересными являются впервые полученныеданные по соотношению транспортных белков крови цыплят суточноговозраста.Известно, что объективная оценка физиологического состояния и уровняобменных процессов в организме во многом может быть дана приисследовании системы крови.
Система крови, сформировавшаяся в эволюциикак специальный механизм объединения различных функциональныхструктур, принимает самое непосредственное участие в специфических инеспецифических реакциях организма, влияя на его резистентность иреактивность. Кровь реагирует на различные воздействия, которымподвергается организм, и служит критерием его состояния (Горизонтов П.Д.,1983) Способность эмбриона к поддержанию гомеостаза данной средыявляется важной характеристикойего возможностейпо реализацииадаптивного потенциала в ответ на нарушения устойчивости соотношенияпроокисдантного и антиоксидантного баланса под влиянием стрессовыхфакторов.Предложенная нами композиция БАВ соответствует запросамразвивающегося эмбриона, поскольку содержит стартовые вещества (Кол иСер) для синтеза основного компонента мембран - фосфолипидов (БерезовТ., 1998), наиболеечасто повреждающихсяпристрессе, а такжеэнергетический субстрат (Як) (Кондрашова М.Н., 1979), который вкритических ситуациях препятствует неоправданной потере энергии вмитохондриальной дыхательной цепи, что особенно важно для качественногостановления и активного роста зародыша.Доказано, что возникшему в результате инкубации окислительномустрессу противостоит антиоксидантная система крови, компонентамикоторой являются, в частности,ЦП и ТФ.
ЦП функционально связан скроветворной системой. Он является одним из важнейших антиоксидантовсреды, катализируя окислениеFe2+ в Fe(Соколов А.В., 2015).1183+молекулярным кислородомКроме того, по данным Саниной О.Л. (1986) следует, что окислениежелеза не единственная и, возможно, не самая главная способность ЦП. Онвыполняет различные функции: участвует в острофазных реакциях;регулирует уровень биогенных аминов в организме, в частности коламина исерина. ЦП осуществляет транспорт и регулирование оборота меди в крови иорганах, которая в свою очередь способствует включению железа вструктуру гема, являясь важным фактором эритропоэза. Биосинтез ЦПпроисходит в гепатоцитах печени.
Установлено, что ЦП включается в обменжелеза путем мобилизации его из железозапасающих органов, таких какпечень и селезенка. Ионы железа встраиваются в апотрансферрин втрехвалентном состоянии. Этому процессу способствует ЦП, которыйфункционирует как феррооксидаза, окисляя двухвалентное железо дотрехвалентного: Fe(II) ↔ Fe(III) → трансферрин → синтез гема →гемоглобин.Такимобразом,ЦПспособствуеткроветворениюблагодаряферрооксидазной активности, а также участвует в окислении ионов Fe2+ и ихпоследующем встраивании в апо-форму трансферрина. Доказано, что ЦПтакжеобладаетсравнительнонебольшойсупероксиддисмутазнойактивностью, он связывает почти 95 % всей меди плазмы крови ихарактеризуется другим широким спектром оксидазной активности (СанинаО.Л., 1986).ТФ непосредственно принимает участие в процессах эритропоэза игемопоэза.
Он относится к бета-глобулинам, его синтез осуществляется впечени и зависит от ее функционального состояния, от потребности в железеи резервов его в организме. При снижении концентрации железа синтез ТФвозрастает. Функция этого белка состоит в транспортировке и препятствиинакоплению в плазме свободных токсических ионов железа, которыеспособны инициировать свободнорадикальные патологии. Поэтому приослаблении или отсутствии защитных механизмов избыток свободногожелеза может играть негативную роль, образуя токсические перекисные119радикалы, которые повреждают молекулы и мембраны клеток различныхтканей.
При разрушении эритроцитов в селезёнке, печени и костном мозгежелезо, высвобождаемое из гема, ТФ транспортирует в костный мозг; частьжелеза включается в состав ферритина и гемосидерина (Данилов И.П., 2011).ТФ обладает антиоксидантными свойствами, по мере насыщения его ионамижелеза (Fe3+) антиокислительная активность (АОА) белка снижается.Суммарная АОА системы ЦП-ТФ пропорциональна величине их отношения.АОА сыворотки крови - это интегральный показатель, отражающий ееспособность противодействовать развитию свободнорадикальных реакций(Чепкий Л.П., 2001). Следовательно, оценка состояния антиоксидантнойсистемы по данным показателям может являться объективным критерием дляопределениярезервныхадаптационныхвозможностейорганизмаиобеспечивать своевременную коррекцию прогностически неблагоприятныхсостояний у развивающегося эмбриона.Полученные в ходе исследований данные свидетельствуют о снижениипроцессов липопероксидации и оптимальном обмене железа в крови,поскольку содержание трансферрина у опытных групп цыплят снизилось в1,9 раза (р<0,01) по сравнению с контролем (Рисунок 24).1,81,71,61,41,20,910,8КонтрольнаяОпытная0,60,40,20КонтрольнаяОпытнаяРисунок 24 - Содержание трансферрина в крови опытной и контрольнойгрупп цыплят, г/л120Отношение связанного в ТФ железа (сывороточное железо) к уровнюТФ представляет собой коэффициент (процент) насыщения ТФ железом.СнижениепроцентанасыщенияТФжелезом(следствиесниженияконцентрации железа и роста концентрации ТФ) указывает на анемию,обусловленнуюнедостаткомпоступленияэтогомикроэлемента.Призначительном увеличении % насыщения ТФ железом в плазме появляетсянизкомолекулярное железо, которое может откладываться в печени иподжелудочной железе, вызывая повреждение их структуры (Данилов И.П.,2011).В опытной группе коэффициент насыщения трансферрина железом былв 2 раза выше, чем в контроле, что свидетельствует о лучшем переносежелеза к клеткам организма.
При этом отмечена тенденция к повышениюЦП на 5,6 % в опытных группах цыплят, что является предпосылкой кподавлению чрезмерной интенсивности ПОЛ и оптимизации АОЗС (ЧепкийЛ.П., 2011). На фоне указанного АОА достоверно увеличилась на 28 %(р<0,01), а продукты ПОЛ в виде МДА снизился на 11,8 % и конечного ввиде ОШ- на 25 % (р<0,01). Необходимо отметить, что во всехэкспериментах, где изучалась интенсивность ПОЛ отмечена тенденция к ееуменьшению, а также закономерный рост АОЗС.Изучаемая нами композиция БАВ положительно влияет на количествоклеток крови, некоторые из которых являются продуцентами факторовнеспецифической защиты организма, например, лизоцима (Манько В.М. идр., 2011).
Как известно, мембраны эритроцитов наиболее чувствительны кагрессивному воздействию АФК, что приводит кразрушению красныхклеток (Луговская С.А. и др., 2006). Антиоксидантные свойства применяемойкомпозиции обусловили сохранение эритроцитарных мембран, что повлиялона их количество. В частности в лучшей опытной группе отмеченодостоверное увеличение содержания эритроцитов в крови на 27 %.Также в обсуждаемом эксперименте отмечено снижение активности ГГТу опытных цыплят на 28,04% (р<0,001). Известно, что наиболее частая121причина повышения активности ГГТ в плазме (сыворотке) крови –патологические состояния печени, сопровождающиеся интоксикацией,обусловленныеинтенсификациейсвободнорадикальныхреакцийвгепатоцитах.
В связи с этим, определение ГГТ является одним из наиболеечувствительныхтестовдляопределениягепатотоксичностивеществ(Торшков, 2011). Таким образом, выявленные межгрупповые различия поданномупоказателюметаболитысвидетельствуютоказываютвыраженноеотом,чтоиспользованныедетоксикационноедействие,обусловленное, коррекцией реакций митохондриальной дыхательной цепи, азначит, свободнорадикальных реакций.Проведенная впервые гистологическая и морфометрическая оценканекоторых внутренних органов цыплят при использовании композиции БАВдала положительные результаты. Так, представляются интересными дляобсуждения, данные об изменениях гистоструктуры фабрициевой сумки уцыплятлучшейопытнойгруппывовзаимосвязисуровнемиммуноглобулинов.Как известно, органы иммунитета представлены периферическими(селезенка, лимфоидный дивертикул) и центральными (тимус и фабрициевасумка).
При этом несформированными органами иммунной системыявляются селезенка и лимфоидный дивертикул, которые развиваютсяморфофункционально в течение всего периода выращивания, и к 42дневному возрасту этот процесс не завершается. Сформированы к моментувылупления морфологически и функционально только центральные органыиммунитета - тимус и фабрициева сумка (Овсищер Л.Л., 2005).Поскольку фабрициева сумка по данным Вахрушевой Т.И.
(2005) играетключевуюрольвформированиииммунитетаптицы,изучениеееморфофункциональных характеристик на фоне поиска эффективных методовпрофилактики для современного птицеводства актуально (Wang Fu-chuan etal., 2006). Указанное позволит найти наиболее перспективный вариант средипрочих, способствующий становлению и организации полноценного,122своевременного иммунного ответа против различных патогенов. Известно,что морфологические изменения в фабрициевой сумке связаны не только свыходом В-лимфоцитов для заселения периферических органов иммунитета,но и с ответом иммунной системы на проведенные вакцинации, чтосогласуется с изменением количества глобулинов в сыворотке крови цыплят(Васильев С.С.
и др., 2010).Cчитается, что именно фабрициева сумка является центральныморганом иммунной системы птиц, в котором из стволовых клеток костногомозга формируется популяция разнообразных клонов В-лимфоцитов,которыепокидаютбурсуизаселяюттимуснезависимыезоныпериферических органов и структур иммунной системы, где под влияниемантигеновпроисходитихдифференцировкаипревращениевантителосинтезирующие плазматические клетки (Якименко Л.Л. и др., 2011).По данным Турицыной Е.Г. (2010) морфологические изменения вфабрициевой сумке при экстремальных стрессовых состояниях различнойэтиологии характеризуются развитием преждевременной инволюции иатрофииоргана,приобретенногочтоявляетсяиммунодефицитаморфологическим(Турицына,эквивалентомЕ.Г.,2010).Иммуноморфологические исследования являются наиболее информативнымметодом исследований по оценке работы иммунной системы (Сандул П.А.
идр., 2011).Рядом ученых (Травникова Н.А., 2004; Муллакаев А.О. и др., 2012;Маликова А.Р., 2007; Tykalowski B., 2009) установлено, что технологическиефакторывыращиванияптицыоказываютзначительноевлияниенагистоструктуру фабрициевой сумки. По данным Травниковой Н.А. (2004) уцыплят при клеточном способе содержания в условиях высокой плотностипосадки наблюдается комплекс патологических процессов, при этом впросветах бурсы располагаются лейкоциты, псевдоэозинофилы, макрофаги игнойные тельца. В субэпителиальном слое бурсы имеется тот же клеточныйинфильтрат, что и в просвете (Травникова Н.А., 2004).123В то же время известно, что дача в корм различных добавок частоспособствует активации системы иммунитета, что положительно отражаетсяна гистокартине иммунокомпетентных органов (Муллакаев А.О.
![](https://s.studizba.com/z.php?f=/templates/si/i/noavatar.png&w=100&h=100&t=1"){kind=avatar}
