Диссертация (1151577), страница 15
Текст из файла (страница 15)
Поддержаниетиреоидного статуса осуществлялось за счет активизации периферическойконверсии Т4→ Т3.Во второй опытной группе отмечали активизацию секретирующейфункции тироцитов и депонирования продуктов секреции в фолликулах(кровь → тироцит → фолликул). Выявлена тенденция к росту концентрацийТТГ, оТ4 и оТ3, которая видимо будет реализована более полно в периодлактации.Динамика показателей артериального и венозного звена кровеносногорусла в опытных группах схожа с таковой в контроле.84Неорганическая форма селена в этот период индуцирует процессыдифференцировки базально смещенных тироцитов, стромально-сосудистыйкомпонент на данном этапе высоко активен.
Подобное состояние клеточнотканевойсоставляющейжелезыпредшествуетобразованиюновыхфолликулярных структур.Органическая форма селена по-прежнему оказывала значительноевлияние на структуры ядер тироцитов, наравне с этим отмечалиськачественные перестройки стромального компонента, что закладываетпотенциалдляинициациимоделирующеговоздействиянагистоархитектонику и функциональные аспекты тканей железы.3.4 Функциональные аспекты морфодинамики щитовидной железылактирующих крольчих при парентеральном введенииразличных форм селенаОтличительнойособенностьюклассамлекопитающие(Mammalia)является способ вскармливания потомства секретом молочных желез, которыефилогенетически представляют собой видоизмененные потовые железы.Синтез составных компонентов молока или лактопоэз – физиологическийпроцесс, регулируемый половыми стероидами и пептидными гормонамипередней доли гипофиза.
Неоспорим факт высокой роли тиреоидных гормоновдля регуляции пластических процессов, протекающих в молочной железе напротяжении всей лактации.Таблица 9. Сывороточные концентрации гормонов (ТТГ, оТ4, оТ3) и селена у крольчих впериод лактации.Исследуемые группыКонтрольнаяI - опытнаяII - опытнаяТТГ, мкМЕ/мл0,41±0,0050,20±0,005***0,22±0,033***оТ4, нмоль/л22,43±0,17637,85±0,250***45,5±0,50***оТ3, нмоль/л3,13±0,0883,55±0,085***3,38±0,115**Se, мкг/мл0,011±0,00050,025±0,0008***0,032±0,0014***Примечание: статистически достоверные отличия по сравнению с контрольной группойживотных ** (р≤0,01); *** (р≤0,001)Гормоны85Сывороточные концентрации ТТГ, оТ4 и оТ3 в контрольной группедостоверно возросли – на 51,2%, 8,6% и 4,3% (р≤0,001) соответственно, асодержание селена снизилось – на 9,1% относительно контрольных цифрпериода родов (табл. 9).У крольчих первой опытной группы на 55 сутки с моментавведения препарата «Е-селен» отмечали рост концентраций: ТТГ – на 5%,оТ4 – на 39,2%, а оТ3 – на 12,6% относительно аналогичных показателей этойже группы предыдущего периода.
Однако, в сравнении с контрольнымицифрами данного периода концентрация ТТГ понизилась более чем – в два раза(р≤0,001), оТ3 – на 13,4% (р≤0,001), а оТ4 – на 68,7% (р≤0,001).Во второй опытной группе в сравнении с ранее исследованнымпериодом (роды) концентрации ТТГ увеличилась – на 83,3% (р≤0,001), оТ4 –более чем в два раза (р≤0,001), оТ3 – на 78,8% (р≤0,001), количество селенадостоверно снизилось – на 21,8% (р≤0,001). Для данного периода былахарактерна тенденция к росту сывороточных концентраций йодтиронинов,так оТ4 увеличился более чем – в два раза (р≤0,001), а оТ3 – на 8% (р≤0,01),однако ТТГ снизился – в два раза (р≤0,001), относительно контроля.Таблица 10.
Основные гематологические и биохимические показатели в период родов укрольчих всех исследуемых групп.Исследуемые группыКонтрольI - опытнаяII - опытнаяHb, г/л100,0-150,0103,7±1,20109,7±1,80*116,0±1,15***Er, 1012/л4,0-8,05,0±0,095,15±0,035,31±0,20Leu, 109л5,0-12,58,47±0,048,61±0,04*9,34±0,01***Общий белок, г/л54,0-83,071,45±0,3874,50±0,50***74,83±0,50***Альбумин, г/л27,0-46,038,33±0,0639,50±0,38*39,41±0,61АсАТ, ед./л14,0-113,048,13±0,01225,73±0,025*** 26,94±0,025***АлАТ, ед./л48,0-80,050,56±0,01134,35±0,012*** 38,68±0,014***Примечание: статистически достоверные отличия по сравнению с контрольной группойживотных *(р≤0,05); ** (р≤0,01); *** (р≤0,001)Показатель:НормаУровень селена в сыворотке крови крольчих первой и второй опытнойгруппыпонизилсяотносительноаналогичныхпоказателейранееисследованного периода (роды) – на 21,8% и 30,4% соответственно.Относительно контрольных цифр данного периода этот показатель был выше:86первая группа – более чем в два раза (р≤0,001), вторая – более чем в три раза(р≤0,001).Гематологические и биохимические показатели крольчих опытных группбыли идентичны контрольной и прибывали в диапазоне референсных значенийнормы (табл.
10). В опытных группах отмечалась достоверная позитивнаядинамика роста количества гемоглобина, лейкоцитов, общего белка иальбумина, а так же понижение уровней содержания аминотрансфераз (АсАТ,АлАТ), относительно контроля.613542АБРис. № 25.
Гистоструктура щитовидной железы крольчих контрольной группы в лактацию.Гематоксилин и эозин. Об.40. Ок.15 (А, Б, Б'); Об.100. Ок.15 (В). 1 – фолликул; 2 – тироцит; 3 –зоны резорбции коллоида; 4 – сосуды ГМЦР; 5 – перешнуровка фолликулов; 6 –парафолликулярный эпителий.Гистоархитектоникажелезыкрольчихконтрольнойгруппыгетероморфна (Рис. № 25, А).
Сосудистое русло ГМЦР сильно инъецировано.Фолликулы вариабельны по форме, размеру (110,5±8,04 мкм.) и степенинаполненности коллоидом (ПЭИ – 4,25±0,022).По краям долек отмечается фолликулогенез, происходящий путем«перешнуровки»относительнокрупныхфолликуловиобразования«дочерних» (Рис. № 25, Б). Тироциты полиморфны: в крупных центральнорасположенных фолликулах имеют преимущественно уплощенную форму(25,9±1,01 мкм.), в их цитоплазме отмечается мелкозернистая дисперснаяфаза, ядра (14,7±0,39 мкм.) гипохромные, округло-овальной формы,визуализируются одно – два ядрышка (ЯПО – 0,31±0,011; ИДЯ – 1,01±0,004).87Мозаичность строения щитовидной железы крольчих свидетельствует огетерохронности процессов, совершающихся как на клеточном (в отдельновзятых тироцитах), так и на фолликулярном уровнях.Субмикроскопическаяморфологиятироцитоввэтотпериодхарактеризовалась высокой степенью вариативности. Клетки пребывали наразных стадиях секреторного цикла, уровень развития ЭПР разнился, эктазияегоцистернединична.Морфологиягистогематическогобарьерахарактеризовала высокую степень транскапиллярного переноса веществпредшественников и инкрета.
Признаков дегенеративных изменений присущихначальной стадии десквамации выявлено не было.145234А144212321БРис. № 26. Электронограмма ультратонкого среза щитовидной железы лактирующих крольчихконтрольной группы. Ув. х 7200 (А, Б). 1 – ядро тироцита; 2 – митохондрии; 3 – структурыбелоксинтезирующего аппарата; 4 – коллагеновые пучки; 5 – фрагмент ядра клеткифибробластического ряда.В зонах «перешнуровки» фолликулов отмечали ряд морфологическихособенностей тироцитов, так базальная часть плазмалеммы двух близлежащихклеток фиксировалась к базальной мембране фибриллами коллагена, радиальноотходящими от центра пучка под углом 90º (Рис.
№ 26, Б).88Структурысвидетельствовалиядеривбелоксинтезирующегопользувысокойаппаратасекретирующейтироцитовактивности.Митохондрии крупные, палочковидной формы, структуры четко выражены.Окончательная демаркация «дочерних» фолликулов происходила за счетместной активизации клеток фибробластического ряда, обеспечивающейувеличение численности и толщины пучков коллагена (Рис. № 26, А).У крольчих первой опытной группы, центральная часть долек железызанята наиболее крупными фолликулами (83,3±3,29 мкм; ПЭИ–3,28±0,053), которые без выраженных размерных градаций переходят впериферическую зону.
Ядра сферические (13,4±0,34 мкм; ИДЯ –1,01±0,008), гипохромные, в центральной их части выявлялись одно, реже дваядрышка (ЯПО – 0,51±0,005). Фолликулогенез, в сравнении с контролем,выражен слабо.4211133АБРис. № 27. Гистоструктура щитовидной железы лактирующих крольчих первой опытнойгруппы.
Гематоксилин и эозин. Об.40. Ок.15 (А); Об.100. Ок.15 (Б). 1 – фолликул; 2 – тироцит;3 – сосуды ГМЦР; 4 – парафолликулярный эпителий.Гистоархитектоника щитовидной железы крольчих второй опытнойгруппы носила относительно изоморфный характер (Рис. № 28, А).Кровенаполнение сосудов ГМЦР умеренное.Фолликулы однородны по размеру (164,0±8,76 мкм.) и форме,заполнены зернистым коллоидом бледно-розового цвета, местами отмечаютсярезорбтивные вакуоли (ПЭИ – 6,32±0,032).893414521АБРис.
№ 28. Гистоструктура щитовидной железы крольчих второй опытной группы в лактацию.Гематоксилин и эозин. Об.40. Ок.15 (А); Об.100. Ок.15 (Б). 1 – фолликул; 2 – тироцит; 3 –сосуды ГМЦР; 4 – парафолликулярный эпителий; 5 – зернистые включения в коллоиде.Форма тироцитов (23,7±0,71 мкм.) от низкопризматической доуплощенной, цитоплазма слабооксифильная с мелкозернистыми включениями(Рис.
№ 28, Б). Ядра (14,4±0,41 мкм.) эллипсоидной, реже сферическойформы, гипохромные, содержали одно-два ядрышка (ЯПО – 0,36±0,008;ИДЯ – 1,04±0,008). Признаков фолликулогенеза не выявлено.26783152142АБВРис. № 29. Электронограмма ультратонкого среза щитовидной железы лактирующих крольчихпервой и второй опытной группы. Ув. х 6000 (А, Б); Ув. х 4000 (В). 1 – ядро тироцита; 2 –цистерны ЭПР; 3 – аппарат Гольджи; 4 – фибробласт; 5 – безмиелиновое нервное волокно; 6 –цитоплазма леммоцита; 7 – осевые цилиндры; 8 – коллагеновые волокна базальной мембраныСубмикроскопические структуры тироцитов в опытных группахприбывали в аналогичных состояниях.
Соотношения фракций хроматина (эу-90и гетеро-) в ядрах определялись как равнозначное, кариолемма былапредставленадвухслойноймембраной,ядерныепорыхорошовизуализировались (Рис. № 29, Б).Митохондрии мелкие, округло-овальные, крипты выражены, матриксимел пониженную электронную плотность.
Белоксинтезирующий аппараттироцитов хорошо развит, эктазия цистерн ЭПР не обнаруживалась.ОтчетливовизуализировалисьструктурыаппаратаГольджи:стопкадискообразных расширяющихся цистерн и микропузырьки (Рис. № 29, А), чтокосвенно свидетельствовало об активизации выведения продуктов секреции изцитоплазмы тироцитов. На апикальном полюсе плазмолеммы клетокрегистрировались микроворсинки.Стромальныйкомпонентжелезыбылдинамичен,очемсвидетельствовало несколько сниженная толщина пучков коллагена и обилиефибробластов. В строме визуализировались тонкие безмиелиновые нервныеволокна, цитоплазма леммоцитов плотно прилегала к осевым цилиндрам,образуя мезаксоны (Рис. № 29, В).Результаты парного корреляционного анализа между структурамищитовидной железы, гормональным фоном и содержанием селена всывороткекровикрольчихконтрольнойгруппы,показали:максимальное количество достоверных взаимосвязей концентрации оТ4 с:диаметрами фолликула (r=+0,84); прекапилляра (r=+0,76); капилляра(r=+0,80); мышечной венулы (r=-0,83); вены (r=-0,88), а так же сконцентрациями ТТГ (r=-1) и Se (r=-0,80) (прилож., табл.
10).Средикоррелятовпервойопытнойгруппымаксимальноеколичество значимых связей характерно для концентрации оТ4 с:диаметрами тироцита (r=-0,99); артериолы (r=+0,90); собирательной (r=0,99), мышечной (r=+0,91) венул, вены (r=-0,95) и концентрациями оТ3(r=+0,99); Se (r=-0,78) (прилож., табл. 11).Во второй опытной группе крольчих значимы взаимосвязиконцентрации оТ3 с: диаметрами фолликула (r=+0,88); тироцита (r=-0,99);91ядра тироцита (r=+0,89); артериолы (r=+0,93); капилляра (r=-0,78); вены(r=+0,99).
![](https://s.studizba.com/z.php?f=/templates/si/i/noavatar.png&w=100&h=100&t=1"){kind=avatar}
