Диссертация (1151577), страница 14
Текст из файла (страница 14)
Коллоид однородной консистенции,бледно-розового цвета, местами выявлялись зоны резорбции и фрагментыдесквамированного эпителия (ПЭИ – 2,8±0,07).На субмикроскопическом уровне структуры тиреоидного эпителия былигомологичны с таковыми в контрольной группе, периода первой половиныбеременности. В отдельно взятых клетках со специфической морфологиейвыявлены признаки деструкции, что свидетельствовало в пользу данных,полученных методом световой микроскопии, о десквамации эпителия в полость77фолликула (Рис.
№ 20, А). В тироцитах непосредственно перед десквамациейпрослеживалась стадийность морфологических перестроек. На ранней стадии,ядра тироцитов приобретали извилистый контур, структуры кариолеммысглаживались, отмечались участки ее инвагинации, количество перихроматинаувеличивалось.543123А871976БРис. № 20. Электронограмма ультратонкого среза щитовидной железы крольчихконтрольной группы в период родов. Ув. х 5000 (А, Б). 1 – ядро тироцита; 2 –вакуолизация цитоплазмы тироцита; 3 – микроворсинки; 4 – палочковиднаямитохондрия; 5 – структуры митохондриальных крипт; 6 – локальное утолщениепучков коллагеновых волокон; 7 – зона отслоения пучков коллагена; 8 –инвагинации кариолеммы и сглаживание ее структур; 9 – открытые участкикариолеммы.В цитоплазме клеток отмечали масштабную эктазию цистерн ЭПР спреобразованиемпоследнихввакуоли,содержимоекоторыхимелопониженную электронную плотность.
Митохондрии палочковидной формы,увеличенные, структуры крипт сохранены. В апикальной части плазмолеммы78сохранялись структуры микроворсинок (Рис. № 20, А). Контакт эпителиоцитовс базальной мембраной был сохранен.На более поздней стадии в ядрах тироцитов конденсировались крупныеконгломератыцелостностьгетерохроматина,кариолеммынерисунокнарушена,эухроматинаотмеченыбылоткрытыесглажен,участкикариолеммы.
Цитоплазма с малочисленными органеллами представлена узкимободком вокруг ядра, ее контур приобретал фрагментарный вид. Контактклетки с базальной мембраной сохраняется, однако, пучки коллагенаприлежащие к базальной части плазмолеммы, отделяются от ниже лежащихслоев.Локальнотолщинапучковколлагенапополняетсязасчетактивизированных клеток фиброцитарного ряда.13254АБРис. № 21. Гистоструктура щитовидной железы крольчих первой опытной группы в периодродов. Гематоксилин и эозин. Об.40.
Ок.15 (А); Об.100. Ок.15 (Б). 1 – фолликул; 2 – тироцит; 3 –сосуды ГМЦР; 4 – кальцитониноциты; 5 – зоны резорбции коллоида.Укрольчихпервойопытнойгруппыотмечалсяструктурныйизоморфизм ткани железы (Рис. № 21, А). Кровенаполнение сосудистого руслаГМЦР умеренное. Тканевые кластеры с признаками гипофункции выявлены небыли. Фолликулы округло-овальной формы (102,7±2,62 мкм), коллоидгомогенный, местами зернистый, единичные резорбтивные вакуоли (ПЭИ–5,5±0,07). Тироциты (18,5±0,94 мкм) вариабельной формы от кубических донизкопризматических, цитоплазма слабооксифильная (Рис.
№ 21, Б). Ядраокругло-овальные (8,7±0,88 мкм), хроматин локализуется преимущественнопо периферии, ядрышки отчетливо видны (ЯПО – 0,21±0,004; ИДЯ –791,06±0,013). Базально смещенные тироциты, характерные для беременныхкрольчих первой опытной группы, в этот период носили единичный характер иимели сравнительно высокую степень дифференцировки.Приультрамикроскопическомисследованиибыливыявленыдваморфотипа ядер тироцитов: в первом случае в клетках около зоныпролиферации базально смещенных тироцитов кариолемма приобреталаизвилистый контур, гетерохроматин превалировал, структуры ядрышек невизуализировались, количество ядерных пор несколько понижалось (Рис.
№ 22,В).5316АБ17124124ВРис. № 22. Электронограмма ультратонкого среза щитовидной железы крольчихпервой опытной группы в период родов. Ув. х 5000 (А); Ув. х 5800 (Б, В). 1 –ядро тироцита; 2 – ядро дифференцирующегося базально смещенного тироцита;3 – насыщенная органеллами цитоплазма; 4 – десмосомные межклеточныеконтакты; 5 – коллагеновые пучки; 6 – фибробласты, продуцирующие коллаген;7 – коллоид.Второй морфотип тироцитов отличался тем, что ядра имели сферическуюформу, кариолемма была истончена, число ядерных пор сравнительно выше,80перихроматин электронно плотный в бóльших количествах, контрастныйрисунок эухроматина (Рис. № 22, А).Подавляющее большинство тироцитов прибывало на стадии поглощенияколлоидных масс, их цитоплазма была насыщенна органеллами. Митохондриинебольшого размера, в цитоплазме локализовались диффузно, структуры криптсохранены.Наапикальномполюсеплазмолеммырегистрировалисьмикроворсинки.Базально смещенные тироциты более дифференцированы (в сравнении стаковыми в периодпреобразованиямибеременности) и характеризовались количественнымихроматинаядра,качественнымиперестройкамивцитоплазме, о чем свидетельствует увеличение численности органелл.Морфологических признаков секреторной активности не выявлено.
Междуплазмолеммой фолликулярного и базально смещенного тироцитов имели местодесмосомные контакты (Рис. № 22, В).Трабекулярныйдифференцировкиколлагеновыеиволокнааппаратхарактеризовалсясекреторнойвпучкахактивностивысокимуровнемклеточныхупорядочены,тогдаэлементов,какпучкиразнонаправленны (Рис. № 22, Б).35421АБ1Рис. № 23. Гистоструктура щитовидной железы крольчих второй опытной группы в периодродов. Гематоксилин и эозин. Об.40. Ок.15 (А); Об.100. Ок.15 (Б). 1 – фолликул; 2 – тироцит; 3 –сосуды ГМЦР; 4 – зоны резорбции коллоида.81Рисунок ткани щитовидной железы у крольчих второй опытной группыгетероморфный (Рис.
№ 23, А). Кровенаполнение сосудистого русла ГМЦРумеренное.Тканевые кластеры с признаками гипофункции не выявлены. Фолликулыполиморфны (130,6±2,56 мкм), заполнены гомогенным коллоидом бледнорозового цвета, резорбтивные вакуоли единичны (ПЭИ–5,16±0,014). Форматироцитов (25,2±0,67 мкм) вариабельна: от кубической до уплощенной(Рис. № 23, Б), цитоплазма хорошо развита, оксифильно окрашена. Для формыядер (15,1±0,45 мкм) так же был характерен полиморфизм (округлоовальныеиэллипсоидные),атинкториальныесвойствакариоплазмыопределялись степенью конденсации хроматина (ЯПО – 0,33±0,015; ИДЯ –1,05±0,017).1746253А6БРис.
№ 24. Электронограмма ультратонкого среза щитовидной железы крольчих первойопытной группы в период родов. Ув. х10000 (А,Б). 1 – ядро тироцита; 2 – структуры ядрышек;3 – коллагеновые волокна базальной мембраны; 4 – секретирующий фибробласт; 5 – ядроэндотелиоцита; 6 – фрагменты цитоплазмы эндотелиоцитов, насыщенные микропузырьками; 7– эритроцит.Ультраструктурытироцитовкрольчихвторойопытнойгруппыгетероморфны, но в целом сопоставимы с данными по этой же группе в периодбеременности. Структуры ядрышек визуализировались значительно реже (Рис.№ 24, А), морфологических аберраций в белоксинтезирующем аппарате невыявлено.
Базально смещенные тироциты не регистрировались.Стоит отметить, что были выявлены признаки секреторной активностифибробластов: превалирование гетерохроматиновой фракции, множество82отростков цитоплазмы, увеличение количества мембранных структур ЭПР (Рис.№ 24, А). Гистогематический барьер так же пребывал в функциональноактивномсостоянии,очемсвидетельствовалообилиетранспортныхмикропузырьков в цитоплазме эндотелиоцитов (Рис. № 24, Б).Результаты парного корреляционного анализа между структурамищитовидной железы, гормональным фоном и содержанием селена всыворотке крови крольчих контрольной группы показали максимальноеколичествоотрицательныхвзаимосвязейдляконцентрацииSeс:диаметрами фолликула (r=-0,77), ядра тироцита (r=-0,95), артерии (r=-0,95),прекапилляра (r=-0,88), капилляра (r=-0,87) и концентрациями оТ 4 (r=0,98), ТТГ (r=-0,98).
Максимальное количество значимых положительныхсвязей отмечали между концентрацией ТТГ и: диаметрами ядра тироцита(r=+0,88), артерии (r=+0,99), прекапилляра (r=+0,77), капилляра (r=+0,95), атак же концентрацией оТ 4 (r=+1) (прилож., табл. 7).В первой опытной группе зарегистрировано максимальное числовзаимосвязей между концентрацией ТТГ и: диаметрами фолликула (r=0,86),тироцита(r=+0,86),артерии(r=-0,85),артериолы(r=+0,77),прекапилляра (r=-0,87), собирательной венулы (r=-0,83), мышечной венулы(r=-0,98); концентрациями оТ4 (r=-0,94), оТ3 (r=+0,91), Se(r=+0,94)(прилож., табл. 8).Во второй опытной группе отмечена максимальное количествоположительных взаимосвязей между концентрацией оТ 4 и: диаметрамифолликула (r=+0,99), артериолы (r=+0,82), посткапиллярной венулы(r=+0,97), собирательной венулы (r=+0,94), мышечной венулы (r=+0,92),концентрациями оТ3 (r=+0,86), Se (r=+0,99) (прилож., табл.
9).Таким образом, у животных контрольной группы в период родов нафоне базовой концентрации Se в крови отмечалась тенденция к росту ТТГи оТ3, в то время как оТ 4 характеризовался относительной стабильностью.В сложившихся условиях была отмечена активизация ядерного ицитоплазматического синтеза в тироцитах, однако уровни взаимосвязей83свидетельствовали в пользу «умеренности» секреторных процессов.Совокупностьвсехамбивалентнойполученныхфункциональнойданныхпозволялаговоритьнаправленности:осекрециитиреоглобулина коллоида и экскреция гормонов в ГМЦР (коллоид ↔тироцит ↔ кровь).Рельефность сосудистого русла характеризует степень вазомоторнойактивности в этот период, что, по-видимому, является следствиемповышения уровня нейропептидных гормонов гипоталамуса (вазопрессин,окситоцин), оказывающих воздействие на миоциты стенки сосудов.Принимая во внимание данные электронной и световой микроскопии,стоит отметить, что десквамация эпителиальной выстилки фолликула этофизиологическийпроцесс,объясняющийсяадаптационно-приспособительными реакциями ткани к дефициту микронутриентов.Вероятно, что отслоившийся в полость фолликула эпителий так же играетважную роль в процессе созревания и ферментации коллоидных масс.Впервойопытнойгруппекрольчихсравнительновысокаяконцентрация селена оказывала ингибирующее воздействие на ядерный ицитоплазматический синтез тироцита, что характеризовало потенцию кснижению диаметров фолликулов и свидетельствовало об активизациипроцессов экскреции (фолликул → тироцит → кровь).
![](https://s.studizba.com/z.php?f=/templates/si/i/noavatar.png&w=100&h=100&t=1"){kind=avatar}
