Диссертация (1150384), страница 17
Текст из файла (страница 17)
Методы on-line концентрирования вкапиллярном электрофорезе // Журнал аналитической химии. 2009. том 64. № 4.C. 340–351.77.Shihabi Z.K., Friedberg M. Insulin stacking for capillary electrophoresis //J. Chromatogr. A. 1998. V. 807. P. 129.78.Quirino J.P., Terabe S. Sample stacking of fast-moving anions in capillaryzone electrophoresis with pH-suppressed electroosmotic flow // J. Chromatogr.
A. 1999.V. 850. P. 339.79.Chien R.L., Burgi D.S. Sample stacking of an extremely large injectionvolume in high-performance capillary electrophoresis // Anal. Chem. 1992. V. 64. P1046.80.Wey A.B., Zhang C.-X., Thormann W. Head-column Field-amplifiedSample Stacking in Binary System Capillary Electrophoresis: Preparation of Extractsfor Determination of Opioids in Microliter Amounts of Body Fluids // J. Chromatogr.A. 1999. V. 853. P.
9581.Effect of on-capillary large volume sample stacking on limits of detectionin the capillary zone electrophoretic determination of selected drugs, dyes and metalchelates / W.F. Smyth [et al.] // J. Chromatogr. A. 1997. V. 772. P. 161.82.Palmarsdottir S., Edholm L.-E. Enhancement of selectivity andconcentration sensitivity in capillary zone electrophoresis by on-line coupling withcolumn liquid chromatography and utilizing a double stacking procedure allowing formicroliter injections // J. Chromatogr.
A. 1995. V. 693. P. 131.83.Quirino J.P., Terabe S. On-line concentration of neutral analytes formicellar electrokinetic chromatography. 5. Field-enhanced sample injection with reversemigrating micelles // Anal. Chem. 1998. V. 70. P. 1893.14484.Quirino J.P., Terabe S. On-line concentration of neutral analytes formicellar electrokinetic chromatography I. Normal stacking mode // J. Chromatogr. A.1997. V. 781. P. 119.85.Baidoo E.E.K., Clench M.R., Smith R.F., Tetler L.W.
Determination ofnicotine and its metabolites in urine by solid-phase extraction and sample stackingcapillary electrophoresis-mass spectrometry //J. Chromatogr. B. 2003. V. 796. P. 303.86.КарцоваЛ.А.,БессоноваЕ.А.,ПоликарповН.А.Синтезметакрилатного монолитного сорбента для капиллярной электрохроматографии //Ж. Сорбционные и хроматографические процессы. 2008. Т.8.
Вып.5. С.724 — 731.87.Peptide functionalized poly(l-lysine)-g-poly(ethylene glycol) on titanium:resistance to protein adsorption in full heparinized human blood plasma / S. Tosatti [etal.] // J. Biomaterials. 2003. V. 24. P. 4949-4958.88.S. Karenga, Z. El Rassi. Trends in nonpolar polymer-based monolithiccolumns for reversed-phase capillary electrochromatography // Electrophoresis. 2011.V.32. P. 90–104.89.Klajnert B., Appelhans D. et al.
The influence of densely organized maltoseshells on the biological properties of poly(propylene imine) dendrimers: new effectsdependent on hydrogen bonding // J. Chem. Eur. J. 2008. Vol. 14. P. 7036-7041.90.Boye S., Polikarpov N., Appelhans D., Lederer A. An alternative route fordye-polymer complexation study via asymmetrical flow field-flow fractionation // J.Chrom. A. 2010. Vol. 1217. P. 4841.145ПРИЛОЖЕНИЕ 1.Фотографии срезов монолитных колонок, полученные на лазерноммикроскопе Leica TCS SL.123414656147ПРИЛОЖЕНИЕ 2Электрокинетическая хроматография.
Фосфатный буферный раствор(pH=2,2)PEI-Mal A 25148PEI-Mal В 25149PEI-Mal С 25150Электрокинетическая хроматография. Боратный буферный раствор (pH=8,5)PEI-Mal А 5151PEI-Mal А 25152PEI-Mal В 25153Электрокинетическая хроматография. Боратный буферный раствор(pH=10,2)PEI-Mal А 25154PEI-Mal В 25155ПРИЛОЖЕНИЕ 3.Лучшие результаты с использованием метода концентрирования FESI-LVSS.Рис.
П3-1. Электрофореграмма смеси белков (40 мкг/мл) на PLOT-колонке спокрытием сверхразветвленным полимером PEI-Mal A25.Ввод пробы: 90 с × 15кВ. Остальные условия см. рисунок 74.Рис. П3-2. Электрофореграмма смеси белков (2,5 мкг/мл) на PLOT-колонке спокрытием сверхразветвленным полимером PEI-Mal A25.
электростэкинг Вводпробы: 60 с × 15. Остальные условия см. рисунок 74.156ПРИЛОЖЕНИЕ 4.Электрофореграммы разделения смеси белков в условиях КЗЭ и КЭХ.КЗЭ: электрофореграмма смеси белков (1 мг/мл) на немодифицированномкапилляре. Условия КЭ: -20кВ, -84-97мкА. Рабочий буфер: 0,1 М фосфатныйбуфер (рН 2,2). Ввод пробы: 2 с×30 мбар. УФ: 214 нм.КЭХ: электрофореграмма смеси белков (1 мг/мл) на PLOT-колонке с покрытиемсверхразветвленным полимером PEI-Mal A25.Условия анализа: -20кВ, -82-95мкА. Рабочий буфер: 0,1 М фосфатный буфер(рН 2,2). Ввод пробы: 2 с×30 мбар. УФ: 214 нм..
![](https://s.studizba.com/z.php?f=/templates/si/i/noavatar.png&w=100&h=100&t=1"){kind=avatar}
