Диссертация (1150276), страница 16
Текст из файла (страница 16)
Разработаны методики с применением мезофлюидных устройств дляциклического инжекционного фотометрического определения эпинефрина винъекционных лекарственных формах по реакции с 18-молибдодифосфатомаммония с пределом обнаружения 0,5 µМ и производительностью – 10 пробв час; цистеина в биологически активных добавках по реакции с 18молибдодифосфатомаммонияспределомобнаружения3µМипроизводительностью – 12 проб в час; куркумина в биологически активныхдобавкахпореакциис4-(2,3,3-триметил-3H-индолий-1-ил)бутан-1-сульфонатом с пределом обнаружения 0,3 µМ и производительностью – 24пробы в час. Разработанные методики проверены на реальных объектах,правильность полученных результатов подтверждена методом ВЭЖХ.110Список сокращений и условных обозначенийА – оптическая плотностьF – коэффициент ФишераF-test – тест ФишераFBA (flow batch analysis) – проточно-порционный анализFIA (flow injection analysis) – проточно-инжекционный анализHMBC (heteronuclear multiple bond correlation) – гетероядерная множественнаякорреляция связейHSQC (heteronuclear single quantum correlation) – гетероядерная одноквантоваякорреляцияl– длина оптического путиLOV – «lab-on-valve» - «лаборатория на кране»µ-TAS – micrototal analytical systems (англ.), микрофлюидные аналитическиесистемы (русск.)n – количество измеренийP – доверительная вероятностьPEEK – рolyetheretherketone (англ.), полиэфирэфиркетон (русск.)s – дисперсияSIA (sequential injection analysis) – последовательный инжекционный анализSWIA (stepwise injection analysis) – циклический инжекционный анализt – коэффициент Стьюдентаt-test – модифицированный тест СтьюдентаTrp – триптофанx – среднее значениеλ – длина волныλex – длина волны возбужденияλem – длина волны эмисии111ΦF – квантовый выходAФЭ – алкилфенолполиэтоксилатыБАД – биологически активная добавкаВЭЖХ – высокоэффективная жидкостная хроматографииВЭЖХ-МС – высокоэффективная жидкостная хроматография с массспектрометрическим детектированиемГПК – гетерополикомплексИК – инфракрасныйКЭ – капиллярный электрофорез18-МФА –18-молибдодифосфа аммонияМУ – мезофлюидное устройствоПДМС – полидиметилсилоксанПИА – проточный инжекционный анализПММА – полиметилметакрилатПО – предел обнаруженияТИБС - 4-(2,3,3-триметил-3H-индолий-1-ил)бутан-1-сульфонатТСХ – тонкослойная хроматографияСКО – среднеквадратичное отклонениеУФ – ультрафиолетовыйХМЭ – химически модифицированный электродЦИА – циклический инжекционный анализЯМР – ядерно-магнитный резонанс112Список литературы1.Золотов Ю.
А., Курочкин В. Е. Микрофлюидные системы для химическогоанализа. М.: Физматлит, 2011, 528 с.2.Сляднев М. Н., Лаврова М. В., Еркин М. А., Наволоцкий Д. В., Крисько А. В.,Ганеев А. А. Модифицирование поверхности микрореакторов микрофлюидного чипа для проведения полимеразо-цепной реакции в режимереального времени // Научное приборостроение. 2007. Т. 17. № 3.
С. 16–24.3.Рудницкая Г. Е., Евстрапов А. А. Микрочиповые устройства для полимеразнойцепной реакции. Ч. 1. Основные принципы ПЦР, конструкция и материалымикрочипов (Обзор) // Научное приборостроение. 2008. Т. 18. № 3. С. 3–20.4.Беленький Б. Г. Мультиплексная микродиагностика на основе биоузнавания:четыре поколения биосовместимых микрофлюидных систем // Научноеприборостроение. 2004. Т. 14.
№ 1. С. 3–9.5.Сляднев М. Н., Казаков В. А., Лаврова М. В., Ганеев А. А., Москвин Л. Н.Микрочиповая мультиреакторная система для биохимического анализа //Научное приборостроение. 2005. Т. 15. № 2. С. 41–50.6.Евстрапов А. А., Рудницкая Г. Е., Петухова Н. А.
Микрочиповые технологиив биологических исследованиях. Сепарационные матрицы для разделенияДНК // Научное приборостроение. 2005. T. 15. № 2. C. 27–40.7.Никитин Е. А., Судариков А. Б. Микрочипы: новый этап в развитиионкогематологии // Онкогематология. 2008. Т. 1. С. 6–12.8.Осипова Т. В., Рябых Т. П., Барышников А. Ю. Диагностические микрочипы:применение в онкологии // Российский биотерапевтический журнал. 2006.T. 5. №3.
C. 72–81.9.Замай Т. Н., Замай С. С., Борисов А. Г., Савченко А. А., Замай Г. С., КоловскаяО. С., Замай А. С., Мезько В. С. Микрофлюидные устройства в диагностикеонкологических заболеваний // Сибирское медицинское обозрение. 2013. T. 5.C. 10-14.11310. Кухтевич И. В., Евстрапов А. А., Букатин А. С. Микрофлюидные устройствадля исследования клеток (Обзор) // Научное приборостроение. 2013. Т.
23.№ 4. С. 66–75.11. Дудко В. С., Проскурнин М. А. Российские исследования микрофлюидныхсистем для химического анализа // Журнал аналитической химии. 2011. Т. 66.№ 11. С. 1150–1156.12. БеленькийБ.Г.Высокоэффективныйкапиллярныйэлектрофорезимикрофлюидные чип-анализаторы. II Микрофлюидные чип-анализаторы //Научное приборостроение. 2003. Т. 13.
№ 1. С. 3–13.13. Сляднев М. Н., Казаков В. А., Макаров Е. Д., Ганеев А. А., Москвин Л. Н.Микрофлюиднаяжидкостнаяиндуцированнымобразованиемсистематрехэкстракциифазвпотокесхимически//Научноеприборостроение. 2005. Т. 15. № 2. С. 11–20.14. Смирнова А. П., Проскурнин М. А., Маватари К., Хибара А., Китамори Т.Исследованияпроточнойэкстракцииприпомощитермолинзовоймикроскопии в микрофлюидных чипах на примере трис-(2-нитрозо-1нафтолата) кобальта (III) // Научное приборостроение.
2007. Т. 17. № 3. С. 5–15.15. Monte-Filho S. S., Lima M. B., Andrade S. I. E., Harding D. P., Fagundes Y. N. M.,Santos S. R. B., Lemos Sh. G., Araujo M. C. U. Flow–batch miniaturization //Talanta. 2001. V. 86. Р. 208–213.16. Мозжухин А. В., Москвин А. Л., Москвин Л. Н. Циклический инжекционныйанализ новый метод проточного анализа // Журнал аналитической химии.2007. Т. 62. № 5.
С. 527–531.17. Vakh Ch., Falkova M., Timofeeva I., Moskvin A., Moskvin L., Bulatov A. Flowanalysis: A novel approach for classification // Critical Reviews in AnalyticalChemistry , DOI: 10.1080/10408347.2015.108730111418. Патент 143826. Устройство циклического инжекционного анализа на чипе / Л.Н. Москвин, А. В.
Булатов, А. В. Петрова, Т. Имато, К. Накано, Р. Ишимацу //Бюллетень. – 2014. – № 21.19. Manz А., Graber N., Widmer H. M. Miniaturized total chemical analysis systems: anovel concept for chemical sensing // Sensors and Actuators, B. 1990. № 1. Р. 244–248.20. Rios A., Zougagh M., Avila M. Miniaturization through lab-on-a-chip: Utopia orreality for routine laboratories? // Analytica Chimica Acta. 2012. V. 740. P.
1–11.21. Savage P. R. Lab-on-a-chip: the revolution in portable instrumentation (2nd Ed.) /Savage P. R. // Wiley, 1999. Р. 230.22. Hart R. W., Mauk M. G., Liu C., Qiu X., Thompson J. A., Chen D., Malamud D.,Abrams W. R., Bau H. H. Point-of-care oral-based diagnostics // Oral Diseases.2011.
V. 17. Р. 745–752.23. Martins A. M. G., Glass N. R., Harrison S., Rezk A.R., Porter N. A., Carpenter P.D., Plessis J. D., Friend J. R., Yeo L. Y. Toward сomplete miniaturisation of flowinjection analysis systems: microfluidic enhancement of chemiluminescentdetection // Analytical Chemistry. 2014. V. 86. P. 10812−10819.24.Dempsey E., Diamond D., Smyth M. R., Urban G., Jobst G., Moser I., Verpoorte E.M. J., Manz A., Widmer H. M., Rabenstein K., Freaney R.
Design and developmentof a miniaturised total chemical analysis system for on-line lactate and glucosemonitoring in biological samples // Analytica Chimica Acta. 1997. V. 346. P. 341–349.25. Greenway G. M, Haswell S. J., Petsul P. H. Characterisation of a micro-totalanalytical system for the determination of nitrite with spectrophotometric detection// Analytica Chimica Acta. 1999. V.
387. P. 1–10.26. Guenat O. T., Ghiglione D., Morf W. E., de Rooij N. F. Partial electroosmoticpumping in complex capillary systems: Part 2: Fabrication and application of amicro total analysis system (μTAS) suited for continuous volumetric nanotitrations// Sensors and Actuators B. 2001. V. 72. P. 273–282.11527. Beaton A. D., Cardwell Ch.
L., Thomas R. S., Sieben V. J., Legiret F.-E., Waugh E.M., Statham P. J., Mowlem M. C., Morgan H. Lab-on-Chip measurement of nitrateand nitrite for in situ analysis of natural waters // Environmental Science andTechnology. 2012. V. 46. P. 9548–9556.28. Shim W.-B., Dzantiev B.
B., Eremin S. A., Chung D.-H. One-step simultaneousimmunochromatographic strip test for multianalysis of ochratoxin and zearalenone// Journal of Microbiology and Biotechnology. 2009. V. 19. P. 83–92.29. Woolley A. T., Hadley D., Landre Ph., de Mello A. J., Mathies R. A., Northrup M.A. Functional integration of PCR amplification and capillary electrophoresis in amicrofabricated DNA analysis device // Analytical Chemistry. 1996. V. 68. P. 4081–4086.30. Geschke O., Klank H., Telleman P. Microsystem engineering of Lab-on-a-chipdevices // Wiley-VCH Veralg GmbH&Co. KGaA, Weinheim, 2004. Р.
251.31. Huang X., Ren J. Chemiluminescence detection for capillary electrophoresis andmicrochip capillary electrophoresis // Trends in Analytical Chemistry. 2006. V. 25.№ 2. Р. 155–166.32. Pana J., Li X., Chena Z., Yanga F., Wua X., Li Y., Suna D., Yu Y.
A beveledworking electrode coupled to a sandglass shape detection cell: A strategy to improvethe sensitivity of electrochemiluminescence detection in microchip electrophoresis// Electrochimica Acta. 2013. V. 90. P. 101–107.33.Jiang G., Attiya S., Ocvirk G., Lee W. E., Harrison D. J. Red diode laser inducedfluorescence detection with a confocal microscope on a microchip for capillaryelectrophoresis // Biosensors and Bioelectronics. 2000.
![](https://s.studizba.com/z.php?f=/templates/si/i/noavatar.png&w=100&h=100&t=1"){kind=avatar}
