Диссертация (Экспрессия генов транскрипционных факторов LXRalpha, LXRbeta, PPARgamma и транспортера ABCA1 при атеросклерозе), страница 8
Описание файла
Файл "Диссертация" внутри архива находится в папке "Экспрессия генов транскрипционных факторов LXRalpha, LXRbeta, PPARgamma и транспортера ABCA1 при атеросклерозе". PDF-файл из архива "Экспрессия генов транскрипционных факторов LXRalpha, LXRbeta, PPARgamma и транспортера ABCA1 при атеросклерозе", который расположен в категории "". Всё это находится в предмете "биология" из Аспирантура и докторантура, которые можно найти в файловом архиве СПбГУ. Не смотря на прямую связь этого архива с СПбГУ, его также можно найти и в других разделах. , а ещё этот архив представляет собой кандидатскую диссертацию, поэтому ещё представлен в разделе всех диссертаций на соискание учёной степени кандидата биологических наук.
Просмотр PDF-файла онлайн
Текст 8 страницы из PDF
Исследования, выполненные на мышах, подтверждают, чтоагонист LXR Glaxo GW3965 значительно повышает уровень ОТХ (Naik et al., 2006).Другой агонист LXR, Tularik TO901317, как было выявлено, существенно снижаетразмер атеросклеротической бляшки в линии мышей с отсутствием рецептораЛПНП -/-, являющихся моделью атеросклероза, и этот процесс является LXRзависимым (Michael et al., 2012).
Кроме того, Tularik TO901317 ингибируетинициацию и развитие атеросклеротической бляшки и активирует регрессию ужесуществующей атеросклеротической бляшки у мышей линии апо Е*3-Лейден привысоко холестериновой диете (Michael et al., 2012).451.5.2.3 Роль LXR в макрофагахКак было уже отмечено выше, макрофаги играют ключевую роль вметаболизме липидов и в обменных процессах при атеросклерозе (Rader, Pure,2005).LXR являются регуляторами гомеостаза холестерина в макрофагах, ОТХ иабсорбции холестерина в кишечнике (Bensinger, Tontonoz, 2008; Chinetti-Gbaguidi,Staels, 2009; Oosterveer et al., 2010).
Избыточное накопление холестеринамакрофагами в местах атеросклеротических поражений преобразует их в пенистыеклетки,являющиесянепосредственнымипредшественникамиатеросклеротических повреждений. Стимулируя ОТХ, LXR может снижатьобразование пенистых клеток и уменьшать содержание холестерина в макрофагах(Valledor, Ricote, 2004). Недавние исследования показали, что PPARγ повышаетуровень экспрессии LXR, что, в свою очередь, приводит к повышенному уровнюABCA1 в макрофагах (Chawla et al., 2001).При развитии атеросклероза основная роль LXR заключается в контролеобразования макрофагами пенистых клеток, обусловленном захватом макрофагамиЛПНП в субэндотелиальном слое артерии через скавенджер-рецепторы (McLarenet al., 2011). Кроме того, в исследованиях in vitro также было отмечено, чтоактивации LXR в первичных макрофагах человека индуцирует поглощение эфировхолестерина из ЛПВП (Michael et al., 2012).1.5.2.4 Антиатерогенные и противоспалительные эффекты LXRМножество исследований in vivo подтверждают антиатерогенную роль LXR.При двойном нокауте LXR-α/-β у мышей происходит увеличение накопленияпенистых клеток в аорте после 18 месяцев нормальной диеты (Schuster et al., 2002).В макрофагах с двойным нокаутом LXR-α/-β показано повышенное накоплениехолестерина (Tangirala et al., 2002).
Кроме того, трансплантация костного мозгаLXR- / - мышей, используемая для генерации макрофагов с отсутствием LXR,46приводит в результате сильному увеличению размеров атеросклеротическихпоражений и накоплению липидов (Tangirala et al., 2002).Было показано, что у мышей с гиперэкспрессией LXRα в макрофагахнаблюдается сокращение на 83% размеров атеросклеротических поражений иувеличивается экспрессия ABCA1 и ABCG1 (Teupser et al., 2008). УвеличениеэкспрессииLXRвмакрофагахуменьшалоразмератеросклеротическогоповреждения на 30% и повышало экспрессию макрофагами апо Е и ABCA1.Одновременно с этим было отмечено снижение уровня триглицеридов на 50% пригиперэкспрессии LXR в макрофагах мышей с отсутствием рецептора ЛПНП -/-,которые являются моделью атеросклероза (Li et al., 2011). Кроме того,индуцированная гиперэкспрессия LXRα в макрофагах у мышей с отсутствиемрецептора ЛПНП -/- приводит к уменьшению атеросклеротических бляшек изначительному увеличению оттока холестерина из клеток (Teupser et al., 2008).
Вработе Lo Sasso и соавт. было продемонстрировано, что у мышей с отсутствиемрецептора ЛПНП -/- индукция LXRα в кишечнике приводит к сокращениюкишечной абсорбции холестерина, усилению ОТХ и, в результате, к замедлениюразвития атеросклероза (Lo Sasso et al., 2010).LXR могут играть ключевую роль в ответах на воспаление. Активация LXRослабляет воспаление и экспрессию воспалительных генов во многих клеточныхтипах – макрофагах, CD-позитивных лимфоцитах, микроглии, астроцитах (Michaelet al., 2012).
Было показано, что LXR ингибируют продуцирование TNFα и IL-1βиэкспрессию таких воспалительных медиаторов как СОХ2, iNOS, IL-6 (Steffensen etal., 2004).Таким образом, многочисленными исследованиями показано, что уровеньэкспрессии LXRα и LXRβ может учитываться в качестве фактора, влияющего наразвитие атеросклероза.Развитие атеросклеротических поражений включает в себя сложноевзаимодействие между различными про- и анти-атерогенными процессами.
В47последнее время, с появлением трансгенных моделей атеросклероза стали активноизучатьсямеханизмывлиянияуровняэкспрессиигеновнаразвитиеатеросклеротических поражений и основанное на этом прогрессированиезаболеваний сосудистой системы. Из совокупности вышеприведенных данныхможно сделать вывод, что определение уровня мРНК генов PPARγ, LXRα, LXRβ,MMP-9 и ABCА1 и уровня белка ABCА1 в макрофагах могут вносить вклад впонимание наследственной предрасположенности к атеросклерозу.
Именно этойпроблеме посвящено настоящее исследование.48Глава 2. МАТЕРИАЛЫ И МЕТОДЫ2.1 Характеристика обследованных групп.В соответствии с поставленными задачами были выбраны следующиегруппы:пациентысатеросклерозом,подтвержденнымнаоснованииангиографического исследования и соответствующая контрольная группа. Лица,вошедшие в группу пациентов с атеросклерозом и контрольную группу являлисьпредставителями европеоидной расы, проживали в Северо-Западном регионеРоссийской Федерации и не были связаны узами родства. Проведение настоящейработы было одобрено этическим комитетом Первого Санкт-Петербургскогогосударственного медицинского университета имени академика И.П.
Павлова.Для оценки вклада вариантов гена АВСА1 в развитие атеросклероза былаотобрана группа пациентов, которая состояла из 119 человек (79.0% мужчин и21.0%женщин)сатеросклерозом,подтвержденнымангиографическимисследованием (средний возраст – 51.41±6.21 года). Первые клиническиепроявления атеросклероза у пациентов наблюдались в возрасте 47.87±7.05 лет.Обследованиеиангиографическуюдиагностикуартериальногостеноза,отражающего атеросклеротические изменения в сосудах, проводили в ПервомСанкт-Петербургскомгосударственноммедицинскомуниверситетеимениакадемика И.П. Павлова.
Локализация пораженных атеросклерозом артерий былакак минимум в одной артерии одного из трех артериальных бассейнов(церебральный, коронарный или бассейн артерий нижних конечностей). Группабольных была гетерогенной по степени локального (% окклюзии артерииатерогенной бляшкой) и диффузного (общее количество артерий, пораженныхатеросклерозом) атеросклероза. Пациенты, вошедшие в выборку, не принимали нистатинов, ни каких-либо иных гиполипидемических средств.Контрольная группа состояла из 300 человек (63% мужчин и 37% женщин)без ССЗ в анамнезе и соответствовала группе пациентов по полу и возрасту(средний возраст 45.60±6.30 года). Возраст контрольной группы соответствовал49возрасту начала заболевания у пациентов.
Данная выборка является случайной ипринадлежит к тому же географическому региону, что и включенная в анализгруппа лиц больных атеросклерозом. Все лица, вошедшие в контрольную группу,проходили обследование врача кардиолога и проведенные обследования данныхлиц включали электрокардиографию, велоэргометрию и ЭХО кардиографию.Для оценки вклада уровня мРНК генов PPARγ, LXRα, LXRβ, MMP-9 и ABCА1и уровня белка ABCА1 в развитие атеросклероза была отобрана группа пациентов,котораясостоялаиз15мужчинсатеросклерозом,подтвержденнымангиографическим исследованием (средний возраст – 53.87±6.78 года).
Первыеклинические проявления атеросклероза у пациентов наблюдались в возрасте47.73±4.33 лет. Обследование и ангиографическую диагностику артериальногостеноза, отражающего атеросклеротические изменения в сосудах, проводили вПервом Санкт-Петербургском государственном медицинском университете имениакадемика И.П. Павлова. Пораженные атеросклерозом артерии располагались вкоронарном бассейне.
На рисунках 6 и 7 представлены ангиограммы двухпациентов с различной степенью стеноза коронарных артерий. Однако у всехбольных был выявлен стеноз более 50% как минимум в одной артерии коронарногобассейна. Пациенты, вошедшие в выборку, не принимали ни статинов, ни какихлибо иных гиполипидемических средств.Контрольная группа состояла из 19 человек без ССЗ в анамнезе исоответствовала группе пациентов по полу и возрасту (средний возраст –52.05±6.05лет). Все представители контрольной группы проходили обследованиеврача кардиолога.
Данная выборка является случайной и принадлежит к тому жегеографическому региону, что и включенная в анализ группа лиц больныхатеросклерозом.50Рисунок 6. Ангиограмма пациента. Показан 99% стеноз ствола левойкоронарной артерии.Рисунок 7. Ангиограмма пациента. Показаны: 1- стеноз 50% и 3 – стеноз99% передней межжелудочковой артерии; 2 – стеноз 75% огибающей ветви левойкоронарной артерии.51У всех пациентов и представителей контрольной группы измерялиэнзиматическим методом с использованием наборов ByoSystems (Испания)концентрацию общего холестерина (ОХ) и Х-ЛПВП в плазме крови. Уровень ОХсыворотки крови и Х-ЛПВП выражали в ммоль/л.2.2 Выделение ДНК из периферической крови человекаВыделение ДНК проводили из венозной крови, забранной из локтевой веныв объеме 5 мл в стерильные пластиковые пробирки, содержащие 50 мкл 0.5М ЭДТАрН=8.0 как антикоагулянта.
Собранная данным образом кровь подвергаласьзамораживанию и хранилась при температуре -20°С. ДНК выделяли из лейкоцитовкрови стандартным фенол-хлороформным методом (Маниатис и соавт., 1984).Лизис клеточных элементов крови проводили по методу Канкеля (Lahiri et al.,1992): к 500 мл крови добавляли 500 мкл раствора для лизиса эритроцитов (29 мМTris-HCl pH 7.4, 10 мМ NaCl, 3 мМ MgCl2, 5% сахароза, 1% тритон Х100),инкубироваливтечение5мин.,осторожноперемешивая,изатемцентрифугировали 10 минут при +9°С, 4000 оборотов в минуту.