Диссертация (1151313), страница 32
Текст из файла (страница 32)
Активность КК в сыворотке крови лошадей в большинстве случаевувеличивалась, в том числе значительно, на 94 мкмоль/л (0.2 Вт/см2, 200 Гц). Значительногоуменьшения не наблюдали.Активность ЛДГ в сыворотке крови кошек увеличивалась значительно при воздействиичастотой модуляции 800 Гц на интенсивностях 0.4 и 0.7 Вт/см2 и сохранялась либонезначительно уменьшалась на остальных режимах. Воздействие той же интенсивностью0.4 Вт/см2 на частотах модуляции от 80 до 900 Гц также значительно увеличивало активностьЛДГ у собак.
Заметное падение величины активности наблюдали при воздействии УЗ0.05 Вт/см2, 800 Гц; 0.2 Вт/см2, 1000 Гц и 1.0 Вт/см2, 10–20 Гц. У лошадей на всех режимахнаблюдали повышение активности ЛДГ, минимум на ≈ 76 и вплоть до ≈ 172 МЕ/л.Сколько-нибудь значительного изменения уровня активности щелочной фосфатазыу лошадей, наоборот, не наблюдали ни на одном из режимов воздействия. У кошек активностьЩФ в основном возрастала или была близка к контрольной, понижение наблюдали тольков одном случае (0.7 Вт/см2, 10–50 Гц). У собак активность ЩФ находилась на уровнеконтрольной с незначительными отклонениями, за исключением заметного повышения послевоздействия 0.4 Вт/см2 вблизи частоты 80 Гц. Отмечали некоторое понижение до ≈ 11 МЕ/л(0.05 Вт/см2, 800 Гц; 0.2 Вт/см2, 1000 Гц).Точно так же, как и в случае с непрерывным УЗ, определение активности ферментовпроводили не только в сыворотке, но и в плазме крови.
Таблица 35 представляет результатыанализов сыворотки крови домашних животных после 90-секундной обработки модулированнымУЗ образцов цельной крови.154Таблица 35. Влияние амплитудно-модулированного УЗ на активность ферментов плазмы крови МДЖ (M ± m,p < 0.05)ЧастотаИнтенсивностьАлАТ, АсАТ,КК,ЩФ,ЛДГ,модуляции,2УЗ, Вт/смМЕ/лМЕ/л мкмоль/лМЕ/лМЕ/лГцКошкиКонтроль—7142113278270–80139 ± 6 76 ± 3142 ± 738 ± 298 ± 40.05800154 ± 5 94 ± 597 ± 260 ± 3111 ± 63012 ± 248 ± 339 ± 436 ± 480 ± 30.4800142 ± 5 88 ± 3147 ± 534 ± 293 ± 410–2065 ± 238 ± 249 ± 531 ± 275 ± 50.7800125 ± 5 70 ± 3179 ± 433 ± 3117 ± 6СобакиКонтроль—20 ± 233 ± 3192 ± 454 ± 3198 ± 580018 ± 237 ± 321 ± 3253 ± 15 455 ± 120.0510–2028 ± 347 ± 2308 ± 691 ± 3554 ± 110.23026 ± 328 ± 2283 ± 954 ± 2105 ± 40.44025 ± 437 ± 2290 ± 542 ± 3416 ± 5800–90061 ± 5 105 ± 4232 ± 7112 ± 6335 ±10–2025 ± 324 ± 2288 ± 1697 ± 4317 ± 50.75024 ± 339 ± 4136 ± 536 ± 2376 ± 1580033 ± 244 ± 2238 ± 519 ± 2135 ± 710–2035 ± 8 42 ± 13217 ± 876 ± 2275 ± 51.0Активность ЩФ плазмы крови после обработки модулированным УЗ образцов цельнойкрови лошадей находилась на уровне контрольных величин или превышала его на 10–17%.
Небыловыявленодостоверногоуменьшенияактивностипоследействияамплитудно-модулированного УЗ в диапазоне интенсивностей 0.05–1.0 Вт/см2 и активными частотамимодуляции. Также ни в одном случае не было диагностировано достоверное увеличениеактивности ЩФ более 18%. В связи с этим данные по этому ферменту в таблице 36 неприводятся.Таблица 36.
Влияние 90-секундной экспозиции амплитудно-модулированного УЗ на активность ферментов плазмыкрови лошадей (M ± m, p < 0.05)ЧастотаИнтенсивностьАлАТ,АсАТ,КК,ЛДГ,модуляции,УЗ, Вт/см2МЕ/лМЕ/лмкмоль/лМЕ/лГцЛошадиКонтроль—8±2240 ± 7180 ± 6280 ± 5102.0 ± 0.7 244 ± 6171 ± 8255 ± 40.0590–10010 ± 2250 ± 3156 ± 12267 ± 320013 ± 2253 ± 7191 ± 6290 ± 105001.0 ± 0.2 254 ± 8180 ± 5279 ± 118008±2257 ± 11 170 ± 10306 ± 91013 ± 3252 ± 9277 ± 5300 ± 100.22019 ± 4249 ± 7163 ± 8289 ± 620013 ± 2232 ± 7158 ± 4255 ± 1110009±2249 ± 6189 ± 5300 ± 10101.0 ± 0.2 260 ± 8168 ± 5288 ± 60.4202.0 ± 0.7 257 ± 858 ± 4226 ± 114014 ± 3259 ± 6153 ± 5270 ± 101550.71.05080–90800100010501008001000102080010008±25±27±210 ± 215 ± 28±24.0 ± 0.813 ± 410 ± 21.0 ± 0.24.0 ± 1.02.0 ± 0.43.0 ± 1.0233 ± 7251 ± 6245 ± 6245 ± 7256 ± 7249 ± 5252 ± 4249 ± 5226 ± 9238 ± 727 ± 4536 ± 12224 ± 7173 ± 4183 ± 4253 ± 5177 ± 3223 ± 6121 ± 4162 ± 3205 ± 6153 ± 4171 ± 5168 ± 6153 ± 7159 ± 5230 ± 9282 ± 8352 ± 12323 ± 11327 ± 11237 ± 6198 ± 7317 ± 12271 ± 6301 ± 11265 ± 9246 ± 8310 ± 10Активность АлАТ в плазме крови кошек увеличивалась значительно.
Лишь в двухслучаях отмечали понижение, наиболее значимое (на 59 МЕ/л) при 0.4 Вт/см2, частота модуляциивблизи 30 Гц. У собак активность в основном сохранялась близко к контрольной величине илиувеличивалась, в том числе очень значительно (на 41 МЕ/л, 0.4 Вт/см2, 800–900 Гц). У лошадейуровень АлАТ изначально низок: нижняя граница активности фермента в крови животныхв референтных рядах составляет ≈ 2.7 МЕ/л [94]. Поэтому на уровне контрольных 8 МЕ/л дажепогрешность метода измерения ± 2 МЕ/л выглядит весомой. На этом фоне можно отметитьтолько значительное падение — до 1.0 МЕ/л (0.05 Вт/см2, 500 Гц; 0.4 Вт/см2, 10 Гц; 1.0 Вт/см2,10 Гц) — либо возрастание активности — до 19 МЕ/л (0.2 Вт/см2, 20 Гц).
При интенсивности1.0 Вт/см2 активность понижалась на всех диапазонах модуляции.Активность АсАТ плазмы крови кошек и собак повышалась на всех режимах воздействия;лишь при 0.7 Вт/см2, 10–20 Гц регистрировали небольшое понижение; у собак также при0.4 Вт/см2, 10–20 Гц. У лошадей также наблюдали повышение активности фермента (илисохранение на контрольном уровне) почти на всех режимах.
Тем не менее, в варианте 1.0 Вт/см2,20 Гц наблюдали понижение активности более, чем на 200 МЕ/л, и не такое большое — припараметрах воздействия 0.2 Вт/см2, 200 Гц и 0.7 Вт/см2, 1000 Гц.Значимое повышение активности КК у кошек было отмечено после обработки УЗ в трёхрежимах: 0.05 Вт/см2, 70–80 и 800 Гц; 0.4 Вт/см2, 800 Гц; 0.7 Вт/см2, 800 Гц. В целом у кошекрегистрировали как увеличение, так и уменьшение активности. У собак практически при всехрежимах воздействия было отмечено значительное повышение ферментативной активности КК;исключением послужили режимы 0.05 Вт/см2, 800 Гц (падение на 171 МЕ/л) и 0.7 Вт/см2, 50 Гц(на 56 МЕ/л).
У лошадей регистрировали разнонаправленное влияние инсонации на активностьКК: уменьшение, увеличение и сохранение уровня контрольных значений активности. Наиболеезначительным было уменьшение активности на ≈ 122 МЕ/л при УЗ обработке 0.4 Вт/см2, 20 Гц,увеличение — на ≈ 97 МЕ/л при 0.2 Вт/см2, 10 Гц.156Значительного понижения активности ЛДГ в плазме крови кошек не было отмечено;после воздействия УЗ 0.7 Вт/см2, 800 Гц регистрировали возрастание активности на ≈ 35 МЕ/л.У собак значительное понижение активности фермента наблюдали в двух случаях — на≈ 93 МЕ/л (0.4 Вт/см2, 30 Гц) и ≈ 63 МЕ/л (0.7 Вт/см2, 800 Гц).
При остальных параметрах УЗвоздействия активность фермента повышалась, в том числе до больших величин, намногопревышающих контрольные: на ≈ 356 МЕ/л (0.2 Вт/см2, 10–20 Гц), на ≈ 257 МЕ/л (0.05 Вт/см2,800 Гц), на ≈ 218 МЕ/л (0.4 Вт/см2, 40 Гц). У лошадей было отмечено как повышение активностиЛДГ, так и её понижение, а также сохранение на уровне контрольных значений.Уровень активности ЩФ плазмы крови кошек повышался при всех режимах УЗобработки. У собак в трёх случаях наблюдали понижение активности, наиболее значительное (на≈ 35 МЕ/л) после инсонации с параметрами 0.7 Вт/см2, 800 Гц. В большинстве вариантов опытарегистрировали либо возрастание, либо сохранение активности на контрольном уровне.
Так,послевоздействияУЗс интенсивностью0.05 Вт/см2и частотойрегистрировали повышение уровня активности примерно на 200 МЕ/л.модуляции800 Гц15712. Биосинтез интерферона. Использование ультразвукав процессе биосинтеза лейкинферонаПрактическую значимость этого этапа работы определяет необходимость изысканияэкологически чистых и относительно несложных в исполнении методов и нанотехнологий приполучении биологических препаратов [97, 258]. Исследование возможностей применения дляэтих целей акустических непрерывных и модулированных волн помогут выявить измененияв клетках в момент физического воздействия и сразу же после него. Это даст не толькотеоретическое объяснение процессов в любой биологической ткани при её попаданиив акустическое или электромагнитное поле, но и позволит снизить степень нежелательныхэффектов при любой физиотерапии и диагностике.
Возможность применения непрерывного УЗв процессесуспензионногобиосинтезабыладоказанаранееи защищенаАвторскимсвидетельством [2; рисунок 115 в Приложении Б1 на странице 321]. В настоящей работеопробовали возможность использования модулированных ультразвуковых волн в процессеполучения лейкоцитарного ИФН.Для стимуляции интерфероногенеза, а именно выхода лейкинферона с помощьюобработки УЗ суспензии лейкоцитов, использовали разработанную нами ранее методику [2],дополненную использованием амплитудно-модулированного УЗ (синусоидальная модуляцияс глубиной модуляции 100%, модулирующие генераторы ГЗ–112 и ГЗ–110, несущая частота0.88 МГц).
![](https://s.studizba.com/z.php?f=/templates/si/i/noavatar.png&w=100&h=100&t=1"){kind=avatar}
