Автореферат (1141126), страница 2
Текст из файла (страница 2)
Томск, нами усовершенствованного.Материалы и методы экспериментальногоисследования. Вкачестве метода оценки влияния материалов на заживление костной раны вэксперименте было выбрано традиционное исследование. Создавался дефектв области тела нижней челюсти у кроликов с последующим заполнением егоматериалом, и изучением динамики заживления костной ткани.Было прооперировано 45 кроликов. Искусственно сформированныйдефект нижней челюсти заполнялся гранулированным пористым никелидтитана у 15 кроликов, волокнистым никелид титана у 15 кроликов. Вконтрольной группе дефект не заполнялся ничем.В группах у экспериментальных животных был создан искусственныйдефект,размером5мм.Сцельюостеоинтеграции,повышенияостеоиндукции и, как следствие, ускорения заживления костного дефекта, ввоспроизведенные полости вводился гранулированный и волокнистыйникелид титана.Впротоколеисследованияфиксированы:предоперационнаяподготовка, премедикация и наркоз, ход операции, физическая активностьпосле операции, состояние тканей.Имплантат для замещения остаточных костных полостей в челюстнолицевой хирургии, усовершенствованный нами, выполненный из никелидтитана.
Получен патент на полезную модель: «Имплантат для замещенияостаточных костных полостей и дефектов в челюстно-лицевой хирургии» №2015117277 от 7.05.2015.Имплантат представляет собой компактный узел, состоящий из трехгрупп витков, ориентированных по взаимно перпендикулярным осямимплантата. Витки первой группы имеют больший размер, ориентированы9вдоль большей оси имплантата. Имеют размер по этой оси, который на 1-2мм превышает наибольший линейный размер статочной костной полости.Витки второй группы меньшего размера охватывают витки первой группы,ориентированы вдоль меньшей оси имплантата и имеют по этой оси размерна 1-2 мм превышающий наибольший линейный размер остаточной костнойполости, измеренный в направлении, перпендикулярном наибольшемулинейному размеру остаточной костной полости. Витки третьей группыохватывают витки второй группы, расположены внутри витков первойгруппы и ориентированы вдоль оси, перпендикулярной большей и меньшейосям имплантата.
При этом все витки выполнены из одного цельного кускапроволоки никелид титана, диаметр которой составляет 0,2 – 0,4 мм, путемпоследовательной намотки с использованием микроскопа. Концы проволокисвязаны узлом и заправлены внутрь витков.Рисунок 1 – Схема формирования узла из волокнистого NiTi.10Операции кроликам выполнялись под внутривенным наркозом, сиспользованием препарата Рометар 2 % , Золетил 100 в объеме 2 мл. Послепроведения гидропрепаровки с помощью ультракаина DS 1,8 (1: 200 000),выполнялся разрез по краю нижней челюсти.
Формировался искусственныйдефект, соответствующий размерам около 5 мм. С целью остеоинтеграции иповышенияостеоиндукциивоспроизведенныедефектызаполнялисьстерильным гранулированным или волокнистым никелид титана. Материал ввиде гранул вносился в полость с помощью кюретажной ложки, затемуплотнялся с помощьюштопфера. Имплантат из волокнистого NiTiформировался заранее, вносился в рану в виде специального узла.Интраоперационно имплантаты смешивались с кровяным сгустком.
Затемрана укрывалась сеткой из тканевого никелид титана соответствующегоразмера, который выполнял роль мембраны. Раны над дефектом ушивалисьузловыми швами.Вывод животных из эксперимента осуществлялся на – 30, 90, 180 сутки.Забой производился путем введения воздуха в ушную вену послепредварительного выполнения внутримышечного наркоза.После выведения животных из эксперимента проводилинижней челюстирезекциюс последующим её препарированием и выделениефрагмента челюсти, содержащий имплантированный материал. Образцытканейпомещалив10%забуференныйформалин,сдальнейшейдекальцинацией в растворе Трилон-Б и обезвоживанием в батарее спиртов постандартной методике, с последующим изготовлением парафиновых блоков.Срезы толщиной 4-6 мкм окрашивали гематоксилином и эозином,пикрофуксином по методу ван Гизон.
Светооптическое исследование ифотографирование микропрепаратов осуществляли на микроскопе «Axiostar»(Германия) при увеличении (х200 и х400). Морфометрическое исследованиеполученных срезов проводили припомощи программы «ImageTool»:сфотографированные в цифровом формате срезы (при увеличении х200 и11х400)вводиливкомпьютер(операционнаясистема Windows XP) в формате BMP и посредством копирования из буфераобмена анализировали данной программой.случаяпроизводилиизмерениеВ отношении каждогоопределенногокритерияв 10 полях зрения.Всего было изучено 175 гистологических препаратов.Анализ полученных данных позволяет заключить, что процесс репарациикостной ткани при применении различных типов никелида титана имеет рядотличий.
Так, было отмечено, что у животных контрольной группы дефекткостной ткани заполнялся медленнее.Результаты собственных исследованийБыло выявлено, что через 30 дней от начала эксперимента у животныхкак контрольной, так и в опытных группах, в заполняемых дефектах наличиязрелой костной ткани не наблюдалось.Таблица 1 – Ткани, заполняющие костный дефект через 30 суток послеоперацииКонтрольГранулирован- Волокнистыйный NiTiNiTi0,84±0,100,84±0,10Соединительная ткань0,97±0,10Ткань волокнистого хряща8,26±0,295,32±0,296,27±0,29Ткань гиалинового хряща3,89±0,356,42±0,357,54±0,35Грубоволокнистая костнаятканьЗрелая костная ткань68,12±2,3373,35±2,3362,40±2,35---Миелоидная ткань3,02±0,212,08±0,21121,57±0,21В контрольной группе в месте восполняемого дефекта через 30 днейгрубоволокнистая костная ткань составляла 68,12±2,33 объемных процента,тканьгиалиновогохряща–3,85±0,35объемныхпроцентов,тканьволокнистого хряща – 8,26±0,29 объемных процентов.
Объемы миелоиднойи соединительной тканей составляли3,02±0,21 и 0,97±0,10 %соответственно.Большая часть дефекта заполнена костными балкамис начальнымипризнаками зрелости. Часть из них имеет фиброзную или хрящеподобнуюструктуру. Наружный слойбывшего дефекта представлен фибрознойтканью, которая состоит из плотно расположенных коллагеновых волокон.Костная ткань представлена в виде островков компактного вещества. Вглубине дефекта, под плотной соединительной тканью, обнаруживаютсяучастки грануляционной ткани, богатой фибробластами, макрофагами,лимфоцитами, а также многочисленные сосуды микроциркуляторного русла.При заполнении костного дефекта гранулированным никелидом титанавыявлено наличие грубоволокнистой костной ткани в количестве 73,35±2,33объемных долей.
Также наблюдались ткани гиалинового хряща 6,42±0,35%и волокнистого хряща – 5,32±0,29%. Миелоидная и соединительная тканиприсутствовали в незначительном количестве – 2,08±0,21% и 0,84±0,10%соответственно.Рыхловолокнистаясоединительнаятканьбылаотечной.Вновьобразующаяся костная ткань представлена в виде остеобластокластическойрезорбции отдельных балок, а также формирующимися остеоидными икостно-остеоидными балками.Припримененииволокнистогогрубоволокнистой костной тканиникелидтитанадолясоставляла до 62,40±2,33 объемныхпроцента. Объем гиалинового и волокнистого хрящаколичествеобъемнаябыл представлен в– 7,54±0,35 и 6,27±0,29 процентов соответственно.
Объеммиелоидной ткани был1,57±0,21%. Количество соединительной ткани13-0,84±0,10%. Среди участков формирующейся костной ткани наблюдалисьнебольшие группы некротизированных костных балок, между нимиопределялись небольшие очажки тканевого детрита. Костномозговыеполостисодержалирыхлуюволокнистуюсоединительнуютканьсэлементами миелоидного ряда.
Отдельные синусоидные сосуды окруженынебольшими скоплениями клеточных элементов гемопоэтического ряда.Таким образом, новообразованная костная ткань во всех трех группахзанимает более двух третей объема и имеет губчатое и компактное строение.При этом, созревающая плотная волокнистая ткань располагается внаружной части дефекта. Во всех группах определялись незначительныеучастки хрящевой ткани.8070Соединительная ткань6050Ткань волокнистого хряща40Ткань гиалинового хряща302010Ткань гиалинового хряща01Грубоволокнистая костнаятканьСоединительная ткань23Рисунок 2 – Состояние тканей на 30 суткиНа 90 сутки от начала эксперимента в образцах контрольной группыгрубоволокнистая костная ткань заменялась зрелой костной тканью, котораясоставляла 51,05±1,66 объемных долей %.
Наличие гиалинового и14волокнистого хряща в исследуемых образцах не наблюдалось. Возрослоколичество миелоидной ткани – до 5,12±0,36 объемных процентов (табл. 2).Таблица 2 – Ткани, заполняющие костный дефект через 90 суток послеоперацииКонтрольГранулирован- Волокнистыйный NiTiNiTi-Соединительная ткань-Ткань волокнистого хряща---Ткань гиалинового хряща---Грубоволокнистая костнаятканьЗрелая костная ткань---51,05±1,6678,07±1,6689,37±1,66Миелоидная ткань5,12±0,364,36±0,365,38±0,36Среди грануляционной ткани встречаются небольшие костные балкив состоянии некроза, а также участки пролиферации остеогенных клеток свытянутым, веретенообразным ядром.В опытной группе через 3 месяца при заполнении костного дефектагранулированным никелидом титанаклетки грубоволокнистой костнойткани, а также соединительная ткань и ткани волокнистого и гиалиновогохряща не определялись.
![](https://s.studizba.com/z.php?f=/templates/si/i/noavatar.png&w=100&h=100&t=1"){kind=avatar}
