Диссертация (1151493), страница 14
Текст из файла (страница 14)
Биологическая ценность печени и почек существенно неотличались.99Безвредность исследуемых проб определяли по изменению характерадвижения инфузорий, наличию патологических форм и мертвых клеток вкультуре. Отклонений не наблюдалось. Таким образом, все исследуемыеобразцы являлись безвредными в отношении тест - организмов инфузорияTetrahymena periformis.3.3.4.4 Результаты патоморфологических и гистологическихисследований тканей и органовС помощью микроскопического исследования срезов можно выявитьопределённые структурные изменения в различных тканях, поэтому намипроведена гистоморфологическая оценка органов респираторного тракта(трахея, лёгкие) и печени кроликов. Материалом для исследования служилиобразцыпечени, легочной ткании образцы трахеи кроликов опытной иконтрольной групп.Макроскопическая картина внутренних органов была следующая:- печень объемистая,однородного темно-красного цвета, упругойконсистенции с острыми краями.
Поверхность разреза влажная с четкимрисунком. На главной дольке печени с внутренней стороны расположенжелчный пузырь, наполненный желчью;- трахея имеет форму цилиндра немного сдавленного в дорсальномнаправлении,слизистаяоболочка чистая, блестящаябезпостороннихналожений, кровоизлияния отсутствуют;- лёгкие заполнены воздухом бледно-розового цвета, доли лёгкихнормально развиты;Микроскопическая картина печени у кроликов контрольной и 3 опытнойгруппы не имела выраженных различий.Печень кроликов контрольной группыимеладольчатое строение,каждая долька имела многогранную форму, гепатоциты имели многоугольнуюформу, ядра гепатоцитов занимали центральное положение, печеночные веныбыли четко контурированы.
(рис. 7).100Цитоплазма гепатоцитов кроликов 3 опытной группы имела умереннуюбазофилию, цитолемма клеток определяется отчетливо. Между печеночнымипластинкаминесущиерасполагаютсякровьсвнутридольковыеперифериидолькиксинусоидныецентральнойкапилляры,вене.Вокругвнутридольковых синусоидных капилляров определяется перисинусоидальныепространства.
Между дольками, в слабо развитой междольковой рыхлойсоединительной ткани располагается триада печени (междольковая артерия,вена и междольковый желчный проток) (рис. 8).Рис. 7. Микроструктура дольки печени кролика контрольной группы. Окраскагематоксилинэозин. Увеличение: ок. 10, об. 40.101Рис. 8. Микроструктура центральной вены дольки печени 3 опытной группы.Окраска гематоксилинэозин.
Увеличение: ок. 10, об. 40.В образцах гистопрепаратов лёгкихконтрольной и 3 опытной группвидимых различий не установлено (рис. 9,10).В просветах бронхов не отмечалось экссудата и клеточного детрита,характерных для деструктивных процессов в ткани. Респираторные отделывыглядели воздушными, альвеолярные стенки не были утолщены, из клетокинфильтрата в лёгочной паренхиме отмечались отдельные альвеолярныемакрофаги.Признаковсерозногоилиальвеолярных полостях не обнаруживалось.геморрагическогоэкссудатав102Рис.
9. Микроструктура лёгкого кролика контрольной группы. Окраскагематоксилинэозин. Увеличение: ок. 10, об. 20.Рис.10. Микроструктура лёгкого кролика 3 опытной группы. Окраскагематоксилинэозин. Увеличение: ок. 10, об. 20.103Трахея кроликов контрольной и 2 опытной группы видимых отличий неимеет (рис.11,12).Слизистая оболочка стенки трахеи не изменена, выстлана многоядернымпризматическим ресничтатым эпителием. Собственная пластинка слизистойоболочки, образованная рыхлой волокнистой неоформленной соединительнойтканью, содержит многочисленные эластические волокна, не имеющиеопределенной ориентировки. Адвентициальная оболочка трахеи состоит изрыхлой волокнистой неоформленной соединительной ткани.Рис.
11. Микроструктура трахеи кролика контрольной группы. Окраскагематоксилинэозин. Увеличение: ок. 10, об. 20.104Рис.12. Микроструктура трахеи кролика 2 опытной группы. Окраскагематоксилинэозин. Увеличение: ок. 10, об. 20.Полученные данные гистологических исследований свидетельствуют отом, что применение препарата Вироцид для аэрозольной дезинфекциикролиководческих помещений в присутствии животных в концентрациях от0,35% до 0,6 % не оказывает отрицательного влияния на организм кроликов,чтоподтверждаетсяотсутствиемморфофункциональныхисследуемых органах животных контрольной и опытных групп.измененийв1053.4 Результаты производственной проверкиДляподтвержденияполученныхрезультатовбылапроведенапроизводственная проверка в условиях ГНУ НИИ ПЗК пушного звероводства икролиководства им.
В.А. Афанасьева. В новом варианте была проведенааэрозольная дезинфекция крольчатника с помощью аэрозольного генераторахолодного тумана Небуло и Небуротор 0,5%-ным раствором Вироцида. Вбазовомвариантедезинфекциюкрольчатникапроводидирастворомтримицина-вет по схеме хозяйства.Режим кормления и содержания для кроликов нового и базовоговариантов были одинаковыми.В результате производственной проверки было отмечено, что аэрозольнаясанация воздуха крольчатников 0,5 %-ным раствором Вироцида способствуетзначительному уменьшению количества микрофлоры.После 2-кратнойобработки Вироцидом на 10 сутки произошло снижение ОМЧ воздуха в 4 разапо сравнению с фоновыми показателями. Сохранность кроликов всехвозрастных групп в новом варианте была выше на 8% (табл.32).Биохимические исследования кровипосле применения Вироцидасвидетельствуют об отсутствии побочного действия препарата на клиническийстатус кроликов.
Так, уровень общего белка, АСТ, АЛТ не выходили запределы физиологической нормы, что указывает на отсутствие токсическогодействия препарата на кроликов при аэрозольной обработке.Установлено, что 2-х кратное применение 0,5%-ного раствора Вироцида,с интервалом 7 суток, в дозе 5мл/м3 в присутствии кроликов, методомхолодного тумана (генераторы Небуло и Небуротор), с экспозицией 25 мин.,позволяет в несколько раз снизить бактериальную обсеменённость воздухакрольчатника, а также приводит к уменьшению количества санитарнопоказательных микроорганизмов.Экономический эффект от применения Вироцида в кролиководческомхозяйстве составил 40713 рубля.106Таблица 32Результаты производственной проверки аэрозольной дезинфекциипомещений для содержания кроликов 0,5% раствором ВироцидаБазовыйвариантНовыйвариант±кбазовомувариантуЦена 1л препарата, руб.276479+203Затраты на дезинфекцию в расчетена одну голову кролика с учетомпоголовья в крольчатнике, руб.1,630,44-1,19Общие затраты на дезинфекциюодного крольчатника, руб.4752579-4173Увеличение прироста живой массытела 1 головы кролика, грамм912-3Стоимостное выражение прироста,руб.2,73,6+0,9Сохранность, %8795+866468107181+40713Экономический эффект на 1животное, руб.22,936,9+14Экономическая эффективностьмероприятий на рубль затрат13,9185,1+167,6от16.07.2014ПоказательОбщий экономический эффект, руб.Актпроизводственной(приложение 1).проверкиг.прилагается1074.
Обсуждения полученных результатовВ условиях развития промышленного кролиководства для обеспечениявысокого санитарного состояния и устойчивого благополучия отрасли важноезначение приобретают дезинфекционные мероприятия и санация воздушнойсреды в помещениях для содержания кроликов. Для проведения этихмероприятий в настоящее время разработаны и широко применяютсяразличные методы и средства.
Вместе с тем для дезинфекции и санации воздухапомещений набор средств и их качество не всегда отвечают потребностямпрактики. Так, например, широко используемый в кролиководстве в этих целяхнатрий гидроокись окисляет оборудование (Поляков А.А., 1975; Данилов Е.П.и др., 1984), хлорамин Б не обладает моющей и проникающей способностью,текстант обладает выраженными раздражающими свойствами на кожу ислизистую оболочку глаз, феносмолин слабоактивен в отношении спор,трихлоризоциануровая кислота плохо растворяется в воде.
По даннымХасанова Ч.Г. и др. (1991) формальдегид, содержащий в своем составе активноевещество ФСС-Д, по сравнению с общеизвестными дезинфектами, имеет болееширокий спектр действия и инизкую токсичность для теплокровных животных,однако обладает коррозионным свойством в отношении металлоконструкций,ноего растворыможноиспользовать дляаэрозольной дезинфекцииживотноводческих объектов в присутствии животных. Однако по результатампатологоанатомических и гистологических исследований органов дыханияподопытных животных было установлено резкое повышение капиллярнойпроницаемости,нарушениецелостностимуноциллиарногоаппаратабронхиального эпителия и развития очаговых катарально десквамативныхбронхитов при воздействии аэрозолей 16%-ного и особенно 32%-ного раствораФСС-Д.
Е.Л. Матвеева (1991) считает допустимым двукратную обработкунорок только 8%-ным раствором ФСС-Д с интервалом 24 часа.В настоящее время вопрос санации воздуха как меры уничтоженияпатогенных микроорганизмов и недопущения заражения здоровых животныхпривлекает к себе внимание многих исследователей.108Работа в этом направлении ведется с использованием химическихаэрозолей, ультрафиолетового облучения, осаждения и фиксации пыли, а такжевентиляцией воздуха.Изсказанноговышевидно,наскольковажноинеобходимоосуществление в животноводческих хозяйствах регулярной аэрозольнойсанации воздуха для профилактики болезней животных (Онегов А.П.
и др.,Поляков А.А,, 1979; Боченин Ю.Н., 1980; Коляков Я.Е., 1986; Дуранов В.С.,Тонков В.Д., 1987; СиницкийВ.В., и др. 1990).Ухудшение ветеринарно-санитарной обстановки и рост заболеваемостиживотных требует от ветеринарной науки и практики более совершенныхэффективных методов и средств для санации воздуха помещений в присутствииживотных.Санация воздуха помещений в присутствии животных эффективна иприемлема лишь тогда, когда дезинфектанты безвредны для организмаживотных, обладают высокой активностью, не вызывают коррозию металлов, внебольшом количестве способны насыщать воздух.
Именно такими свойствамиобладает препарат Вироцид.Проведенные нами исследования показали безвредность, возможность,эффективность использования Вироцида для санации воздуха и профилактикиреспираторныхзаболеванийкроликовприсодержаниивзакрытыхпомещениях.Нами впервые предложено применение Вироцида для аэрозольнойдезинфекции воздуха и доказана его эффективность для профилактикиреспираторных заболеваний кроликов.Изучение профилактической эффективности Вироцида проводили впроизводственных условиях на кролиководческих фермах при содержанииживотных в закрытых помещениях.При анализе заболеваемости кроликов на экспериментальной ферме«Наука»установлено, чтоу кроликов, содержавшихся в шедах,респираторные болезни составляли в среднем 55,9 % от числа всех болезней, а109по стаду – 4,97%; при содержании в помещениях с регулируемыммикроклиматом – соответственно 48,86 % и 6,0%.
Эти данные свидетельствуюто том, что наибольшее число респираторных болезней регистрируется укроликов, содержащихся в закрытых помещениях.Анализируя распространенность респираторных заболеваний в ООО«Вихрово» необходимо отметить, что в общей заболеваемости респираторныеболезни составили 46,85%, а по стаду 3,62%.В системе ветеринарно-санитарных мероприятий по профилактикереспираторных заболеваний у кроликов необходимо уделять особое вниманиесостоянию воздушной среды помещений для содержания кроликов.При оценке санитарного состояния помещений для содержания кроликовнами установлено несоответствие параметров воздушной среды крольчатниковпо ряду показателей, а именно освещённости, скорости движения воздуха,содержания в воздухе аммиака и сероводорода, пылевой и микробнойзагрязнённости.
![](https://s.studizba.com/z.php?f=/templates/si/i/noavatar.png&w=100&h=100&t=1"){kind=avatar}
