Автореферат (1150765), страница 4
Текст из файла (страница 4)
Установлено, что при наличии НЧ серебра и молекул красителей в матрице ПВС возникают центры поглощения и рассеяния электронной и колебательной энергии,проявляющееся в спектрах КР и ГКР молекул Р6Ж. При этом наблюдается усиление безызлучательного dd-переноса плазмонного возбуждения в НЧ серебра, а также усиление флуоресценции молекул.2. Экспериментально установлено, что модифицированные НЧ серебра шероховатыестекла позволяют усилить ПП НЧ серебра КРС на молекулах Р6Ж (до 104), однако матрицышероховатых стекол имеют детектируемые спектральные сдвиги в спектрах Р6Ж относительно литературных данных и не обеспечивают необходимую степень повторяемости дляанализа белковых молекул.3.
Экспериментально исследована вторичная структура белковых молекул в норме ипри патологии, адсорбированных на структурированной серебрянной поверхности и в растворе, в том числе путем определения параметров энергетического обмена белковой молекулы и НЧ серебра. Обнаружено изменение вторичной структуры белковой молекулы, вследствие наличия патологии (сепсис). По результатам анализа групп Амид I, Aмид III показано,что количество α-трубчатых слоев в молекуле белка уменьшается, молекула переходит к неупорядоченной укладке вторичной структуры.4. Предложена последовательность применения математических средств разрешенияИК-спектров и выделения различий сдвигов амидных групп: алгоритмы полиномиальногосглаживания Савицкого-Голея по 32 окнам и, последующее моделирование аппроксимированных спектров с использованием функции Гаусса.5.
Обнаружено усиление флуоресценции аминокислотных остатков триптофанавследствие выхода остатков триптофана на поверхность белковой глобулы при патологии.По итогам применения модели металл-усиленной флуоресценции в комплексе НЧ-белок врастворе установлена возможность переноса плазмонной энергии с молекулы белка на НЧ помеханизму Ферстера, рассчитаны параметры переноса, а также показаны различия параметров переноса и параметров анизотропии флуоресценции для здоровых и септических молекул САЧ.6. Предложен неинвазивный флуоресцентный метод оценки концентрации короткоживующих молекул АТФ в клетках крови и митохондриях пациентов in vitro для прогнозирования степени тяжести побочных реакций при терапии.
Определены концентрации моле15кул АТФ в клетках крови и митохондриях для тяжелой степени нежелательных побочныхреакций при терапии.СПИСОК ЦИТИРОВАННОЙ ЛИТЕРАТУРЫ1. Gonçalves M. S. T. Fluorescent labeling of biomolecules with organic probes //Chemical reviews. – 2008. – Т. 109. – №. 1. – С.
190-212.2. Moerner W. E., Orrit M. Illuminating single molecules in condensed matter //Science. – 1999. –Т. 283. – №. 5408. – С. 1670-1676.3. Weiss S. Fluorescence spectroscopy of single biomolecules //Science. – 1999. – Т. 283. – №.5408. – С. 1676-1683.4. Haes A.
J. et al. Solution-phase, triangular Ag nanotriangles fabricated by nanosphere lithography //The Journal of Physical Chemistry B. – 2005. – Т. 109. – №. 22. – С. 11158-11162.5. Hao E., Schatz G. C. Electromagnetic fields around silver nanoparticles and dimers //The Journalof chemical physics. – 2004. – Т. 120. – №. 1. – С. 357-366.6. Zhao L. et al. Electrodynamics in computational chemistry //Theory and applications of computational chemistry: the.
– 2007. – С. 47À66.7. Bertone J. F., Spencer K. M., Sylvia J. M. Fingerprinting CBRNE materials using surfaceenhanced Raman scattering //Chemical, Biological, Radiological, Nuclear, and Explosives(CBRNE) Sensing IX. – International Society for Optics and Photonics, 2008. – Т. 6954. – С.69540J.8. 133. Graham D.
et al. The crystal structures of three primary products from the selective reduction of 2, 4, 6-trinitrotoluene //New Journal of Chemistry. – 2004. – Т. 28. – №. 1. – С. 161-165.9. Sueyoshi K. et al. Fluorescence imaging of ATP in neutrophils from patients with sepsis usingorganelle-localizable fluorescent chemosensors //Annals of intensive care. – 2016. – Т.
6. – №. 1. –С. 1-8.10.183. Tan K. Y. et al. Real-Time Monitoring ATP in Mitochondrion of Living Cells: A Specific Fluorescent Probe for ATP by Dual Recognition Sites //Analytical Chemistry. – 2017. – Т. 89.– №. 3. – С. 1749-1756.11.Barhoumi A., Halas N. J. Detecting chemically modified DNA bases using surfaceenhanced Raman spectroscopy //The journal of physical chemistry letters. – 2011. – Т. 2. – №. 24. –С. 3118-3123.12.Mark S. et al. Fourier transform infrared microspectroscopy as a quantitative diagnostic toolfor assignment of premalignancy grading in cervical neoplasia //Journal of biomedical optics. –2004. – Т.
9. – №. 3. – С. 558-567.13.Зейниденов А. К., Ибраев Н. Х., Кучеренко М. Г. Влияние наночастиц серебра наэлектронные переходы в молекулах красителей и генерационные характеристики жидкостных лазеров на их основе //Вестник Оренбургского государственного университета. – 2014. –№. 9 (170).14 Shim S., Stuart C. M., Mathies R. A. Resonance Raman Cross‐Sections and Vibronic Analysisof Rhodamine 6G from Broadband Stimulated Raman Spectroscopy //ChemPhysChem. – 2008.
–Т. 9. – №. 5. – С. 697-699.15. Barth A. The infrared absorption of amino acid side chains //Progress in biophysics and molecular biology. – 2000. – Т. 74. – №. 3. – С. 141-17316Зюбин Андрей ЮрьевичСПЕКТРАЛЬНО-КИНЕТИЧЕСКИЕ ИССЛЕДОВАНИЯ ФОТОФИЗИЧЕСКИХ ПРОЦЕССОВ С УЧАСТИЕМ МОЛЕКУЛ КРАСИТЕЛЕЙ И БИОМОЛЕКУЛ В ПРИСУТСТВИИ НАНОЧАСТИЦ СЕРЕБРААВТОРЕФЕРАТдиссертации на соискание ученой степеникандидата физико-математических наукПодписано в печать __.__.2018 г.Формат 60×90 1/ 16 .Усл. печ. л.
1,0Тираж 120 экз. Заказ __Отпечатано в типографииИздательства Балтийского федерального университетаим. Иммануила Канта236022, г. Калининград, ул. Гайдара, 617.