Диссертация (1144279), страница 21
Текст из файла (страница 21)
— Pp. 4045–4049.141. Development of Nanoparticle Stabilized Polymer Nanocontainers withHigh Content of the Encapsulated Active Agent and Their Application inWater-Borne Anticorrosive Coatings / Martin F Haase, Dmitry O Grigoriev,Helmuth Möhwald, Dmitry G Shchukin // Advanced Materials. — 2012. —Vol. 24, no. 18. — Pp. 2429–2435.142. Near-Infrared-Activated Nanocalorifiers in Microcapsules: Vapor Bubble Generation for In Vivo Enhanced Cancer Therapy / Jingxin Shao,Mingjun Xuan, Luru Dai et al.
// Angewandte Chemie International Edition.— 2015. — Vol. 54, no. 43. — Pp. 12782–12787.139143. Biodegradable protein-based rockets for drug transportation and lighttriggered release / Zhiguang Wu, Xiankun Lin, Xian Zou et al. // ACSapplied materials & interfaces. — 2014. — Vol. 7, no. 1. — Pp. 250–255.144. NIR-Laser-Switched In Vivo Smart Nanocapsules for Synergic Photothermal and Chemotherapy of Tumors / Zhouqi Meng, Fang Wei,Ronghua Wang et al.
// Advanced Materials. — 2016. — Vol. 28, no. 2. —Pp. 245–253.145. Layer-by-Layer Coated Gold Nanoparticles: Size-Dependent Delivery ofDNA into Cells / Asmaa Elbakry, Eva-Christina Wurster, Alaa Zaky et al. //Small. — 2012. — Vol. 8, no. 24. — Pp. 3847–3856.146. Link, Stephan.
Size and temperature dependence of the plasmon absorptionof colloidal gold nanoparticles / Stephan Link, Mostafa A El-Sayed // TheJournal of Physical Chemistry B. — 1999. — Vol. 103, no. 21. — Pp. 4212–4217.147. Pattnaik, Priyabrata. Surface plasmon resonance / Priyabrata Pattnaik //Applied biochemistry and biotechnology. — 2005. — Vol. 126, no. 2. —Pp. 79–92.148. Laser-induced release of encapsulated materials inside living cells / Andre G Skirtach, Almudena Munoz Javier, Oliver Kreft et al. // AngewandteChemie International Edition.
— 2006. — Vol. 45, no. 28. — Pp. 4612–4617.149. Tetracycline-inducible expression systems with reduced basal activity inmammalian cells / Karin Forster, Vera Helbl, Thomas Lederer et al. // Nucleic acids research. — 1999. — Vol. 27, no. 2. — Pp. 708–710.150. Tumor necrosis factor receptor I from patients with tumor necrosis factor receptor–associated periodic syndrome interacts with wild-type tumornecrosis factor receptor I and induces ligand-independent NF-B activation / Nasim Yousaf, David J Gould, Ebun Aganna et al.
// Arthritis &Rheumatology. — 2005. — Vol. 52, no. 9. — Pp. 2906–2916.140151. Gene therapy with an improved doxycycline-regulated plasmid encoding a tumour necrosis factor-alpha inhibitor in experimental arthritis /David Gould, Nasim Yousaf, Rewas Fatah et al. // Arthritis research &therapy. — 2007. — Vol.
9, no. 1. — P. R7.152. Arbeloa, F López. Flourescence self-quenching of the molecular formsof Rhodamine B in aqueous and ethanolic solutions / F López Arbeloa,P Ruiz Ojeda, I López Arbeloa // Journal of luminescence. — 1989. —Vol. 44, no. 1-2. — Pp. 105–112.153. In situ synthesis of fluorescent carbon dots/polyelectrolyte nanocomposite microcapsules with reduced permeability and ultrasound sensitivity /Hui Gao, Andrei V Sapelkin, Magdalena M Titirici, Gleb B Sukhorukov //ACS nano. — 2016. — Vol.
10, no. 10. — Pp. 9608–9615.154. Zhu, Huiguang. Biomacromolecules electrostatic self-assembly on 3dimensional tissue engineering scaffold / Huiguang Zhu, Jian Ji, Jiacong Shen // Biomacromolecules. — 2004. — Vol. 5, no. 5. — Pp. 1933–1939.155. Chang, Hsin-I. Cell responses to surface and architecture of tissue engineering scaffolds / Hsin-I Chang, Yiwei Wang // Regenerative medicineand tissue engineering-cells and biomaterials. — InTech, 2011.141Список рисунков1.1 Схематическое представление синтеза молекулярноупорядоченной полимерной плёнки при помощи методапоследовательной полиионной адсорбции [42]. .
. . . . . . .1.2 График зависимости коэффициента поглощения (осьординат) плёнки (PSS/PDADMAC) от количестваполиэлектролитных бислоёв (ось абсцисс), в зависимости отконцентрации солей NaCl в растворах данныхполиэлектролитов. Коэффициент поглощения измерялся надлине волны 226 нм, поскольку спектр поглащения PSS, вводном растворе, имеет пик на данной длине волны. [43] . .1.3 Атомная силовая микроскопия поверхности(PSS/PDADMAC)10 плёнки с 10 бислоями полиэлектролитовпри концентрации 0.1М (а), 0.3М (б) и 1.0М (в) NaCl врастворах полиэлектролитов.
Размер каждого изображения 5х5 мкм [43]. . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . .1.4 СЭМ изображения полимерных микроструктурированныхплёнок с массивами полых контейнеров на их поверхности,которые были сформированы посредствам микропечати(PSS/PDADMAC). Для микропечати использоваласькремниевая подложка с круглыми, квадратными иконическими паттернами [21]. . . . . . .
. . . . . . . . . . .1.5 Схематическое представление синтеза полых многослойныхмикрокапсул методом последовательной адсорбцииразнозаряженных полиэлектролитных слоёв [45]. . . . . . ..17.18.19.20.211421.6 Функционализация полиэлектролитных капсул при помощиметаллических неорганическими наночастиц, посредствамвключения в многослойную полиэлектролитную оболочкумикрокапсул (PSS/PAH)4 . Типичные TЭM-изображения (a)золотые наночастицы AuNP, (b) золотые наностержни AuNRи (c) оксид железа Fe3 O4 . На вставках показаны отдельныемодифицированные капсулы. Масштабные полосысоответствуют 50 нм [65]. .
. . . . . . . . . . . . . . . . . . . .1.7 (a)-(b) Микрокапсулы, состоящие из синтетическихполимеров: a) ТЭМ изображение пустых капсул, б)конфокальная сканирующая лазерная микроскопиямикрокапсул после инкапсуляция TRITC-декстрана. (c)-(d)Микрокапсулы, состоящие из биоразлогаемых полимеров, наоснове ядер CaCo3 : c) Атомная силовая микроскопия сухихмикрокапсул, d) конфокальная сканирующая лазернаямикроскопия капсул после инкапсуляции FITC-декстрана [67].1.8 In vivo биолюминесцентная визуализация распределениямногослойных микрокапсул, с однослойными углеродныминанотрубками, в тканях крысы. Время наблюдения 10 секунд- 72 часа после введения суспензии капсул в хвостовую венукрысы.
[68]. . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . .2324261431.9 (а) Биолюминисцентные изображения клеток 293Т в 24луночном клеточном планшете. В каждую лунку высевались150 000 клеток 293Т. Через 24 часа, микрокапсулыдобавлялись в лунки планшета в соотношении 1:1 или 1:10клеток на капсулу. В лунки столбцов 1,2,5 и 6 добавлялисьмагнитные микрокапсулы в соотношениях 1:1 или 1:10клеток на капсулу. В лунки столбцов 3 и 4 добавлялисьмикрокапсулы без магнетита.
Постоянный магнитпомещался только под лунки столбцов 5 и 6. Через 72 часасубстрат люциферазы добавлялся в каждую лункуклеточного планшета с последующей регистрацией свеченияфлуоресценции клеток.Усреднённые значение свеченияфлуоресценции по всей прямоугольной области,представленны на столбцовой диаграмме (б).
Жёлтымстолбцам соответствует усреднённый флуоресцентныйсигнал из области теоретического нахождения магнита.Красным столбцам соответствует усреднённыйфлуоресцентный сигнал из зон под которыми находилсямагнит. Данные усреднялись по 4 лункам соответствующихстолбцов клеточного планшета. [32]. . . . . .
. . . . . . . . . .1.10 In vivo магнитная МРТ навигация ферромагнитной сферыдиаметром 1,5 мм в сонной артерии живой свиньи.Траектория следования сферы определяется при помощиметода рентгеновской ангиографии. Зелёные точкипоказывают перемещение сферы в реальном масштабевремени. Белые круги диаметром 20 мм вокруг точекпоказывают их примерную локализацию, котораяопределялась при помощи МРТ системы. Белая стрелкапоказывает направление движения ферромагнитной сферы.Зоны перемещения ферромагнитной сферы маркированыцифрами 1, 2 и 3 [35]. .
. . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . .27291441.11 Управляемая (МРТ) химиоэмболизация в печени кроликапри помощи терапевтических магнитных носителей (ТМН).Изображение (a) соответствует схематическомупредставлению ТМН с противоопухолевым препаратом.Изображение (б) представляет собой СЭМ изображениеТМН. Изображения (в, г) - рентгеноконтрастныеизображения артерии печени кролика с наложеннымиизображениями распределения TMН без (в) и с (г) МРТнавигацией микрокапсул.
На изображении (в),микроносители доставляются в артерию печени кроликачерез катетер. Изображение (г) показывает МРТ навигациюмикрокапсул в артерии печени кролика. Изображения (д-ж)соответствуют in vivo T2 - взвешенным МРТ изображениямпечени кролика до (д) и после введения ТМН через катетербез (е) и с МРТ навигацией (ж). Без МРТ навигации, праваяи левая доли печени затемнены, что указывает наприсутствие ТМН во всей печени. При МРТ навигациипотока ТМН в артерии печени, поток ТМН направляется влевое артериальное ответвления, оставляю ткани печенивокруг правой артериальной ветви, свободными от ТМН [33].1.12 Артериальный кровоток, основанный на трехмерныхизображениях CTA для анализа кровотока в Круге Уиллиса.(a) Снимок 3D CTA-клинического изображение пациента сишемическим инсультом (б) Трёхмерная сосудистаяреконструкция с морфологическим удалением участковизображения костей (c) Цифровая реконструкция сосудов (d)Результаты моделирования кровотока.
![](https://s.studizba.com/z.php?f=/templates/si/i/noavatar.png&w=100&h=100&t=1"){kind=avatar}
