диссертация (1105558), страница 27
Текст из файла (страница 27)
Рис. 77. Хроматограмма MМГ-БФЗ (СMМГ = 50 мг/л). Колонка Zorbax SB-C18, 4.6 × 150 мм. Элюент: 50% 0.1M ацетата аммония, 50% ацетонитрила. Скорость потока 0.7 мл/мин. Масс-спектрометрический детектор.
4.7.2. Выбор оптимальных условий хроматографического определения
При выборе условий хроматографического определения производного НДМГ большое значение имеет рН подвижной фазы, так как от этого зависит интенсивность флуоресценции и устойчивость продукта в хроматографической системе. Соответствующие значения рН создавали использованием фосфатных буферных растворов (рН 3.6–7.5).
Изучение влияния рН элюента на площадь пика НДМГ-БФЗ показало, что в исследуемом диапазоне не наблюдается выраженной зависимости интенсивности сигнала от рН подвижной фазы. Однако рН элюента оказывает влияние на удерживание пиков сопутствующих компонентов, и наилучшее разделение от примесей достигается при рН 3.6, при котором также регистрируется наименьшее количество побочных продуктов реакции.
Рис. 78. График зависимости площади хроматографического пика производного НДМГ от рН буферного раствора в составе подвижной фазы. Колонка Zorbax SB-C18, 4.6 × 150 мм. Элюент: 50% 0.05М NaН2PO4/50% ацетонитрила. Скорость потока 0.7 мл/мин. Флуориметрический детектор.
Варьирование состава подвижной фазы не оказывает существенного влияния на интенсивность флуоресценции (рис. 79). Для дальнейшей работы выбрали фосфатный буферный раствор.
Рис. 79. График зависимости площади хроматографического пика НДМГ-БФЗ от природы буферного раствора в составе подвижной фазы.
В ходе работы установлено, что изменение концентрации фосфатного буферного раствора в диапазоне 10 - 50 мМ не оказывает влияния на площадь пика производного НДМГ, однако дальнейшее увеличение концентрации ведет к снижению интенсивности сигнала (рис. 80). В качестве рабочего далее использовали 20 мМ фосфатный буферный раствор.
Рис. 80. Зависимость площади пика НДМГ-БФЗ от концентрации буферного раствора в подвижной фазе.
Поскольку интенсивнрость флуоресценции зависит от содержания органического растворителя в подвижной фазе, в работе также изучили влияние этого фактора, варирьируя количество растворителя в допустимых пределах, обеспечивающих разделение компонентов реакционной смеси. Представленная на рис.81 зависимость свидетельствует о необходимости 45-50% содержания растворителя в элюенте. Для дальнейшей работы в подвижную фазу добавляли 50% ацетонитрила.
Рис.81. Влияние содержания ацетонитрила в подвижной фазе на интенсивность флуоресценции НДМГ-БФЗ.
В качестве оптимальной подвижной фазы выбрали 0.02М фосфатный буферный раствор (рН 3.6) с 50% ацетонитрила как обеспечивающий разделение БФЗ-производных НДМГ и ММГ, лучшее разрешение с пиками сопутствующих компонентов реакционной смеси и приемлемое время удерживания НДМГ-БФЗ. Основные хроматографические параметры удерживания производных НДМГ и ММГ в выбранных оптимальных условиях разделения представлены в таблице 34.
Таблица 34. Основные хроматографические параметры удерживания БФЗ-производных гидразинов. Колонка Zorbax SB-C18, 4.6 × 150 мм. Элюент: 50% 0.02М NaН2PO4 (рН 3.6) /50% ацетонитрила. Скорость потока 0.7 мл/мин.
Определяемое вещество | tR, мин | tR’, мин | k’ | N тт | Rs |
НДМГ | 4.9 | 3.3 | 3.1 | 4400 | 1.1 |
ММГ | 3.0 | 1.47 | 0.9 | 2300 | 1.7 |
Хроматограммы производных НДМГ и ММГ, полученные в различных вариантах деектирования, приведены на рис. 82 и 83.
Рис. 82. Хроматограмма производного НДМГ-БФЗ (СНДМГ = 5 мкг/л). Колонка Zorbax SB-C18, 4.6 × 150 мм. Элюент: 50% 0.02 М фосфатный буферный раствор (рН 3.6), 50% ацетонитрила. Скорость потока 0.7 мл/мин. Детектор — флуориметрический (lвозб = 488 нм, lэм = 540 нм).
Рис. 83. Хроматограмма производного ММГ-БФЗ (СНДМГ = 5 мкг/л). Колонка Zorbax SB-C18, 4.6 × 150 мм. Элюент: 50% 0.02 М фосфатный буферный раствор (рН 3.6), 50% ацетонитрила. Скорость потока 0.7 мл/мин. Детектор — спектрофотометрический (lпогл = 553 нм).
Построение градуировочной зависимости определения НДМГ в виде производного с БФЗ показало, что линейность площади пика деривата от концентрации НДМГ сохраняется в диапазоне 0,5-50 мг/л в случае спектрофотометрического и 0,02-50 мг/л в случае флуориметрического детектирования, пределы обнаружения составили 10 и 3 мкг/л соответственно (при соотношении сигнал:шум, равном 3:1). Рассчитанные метрологические характеристики определения НДМГ по реакции с 4-хлор-7-нитробензофуразаном приведены в таблице 35.
В выбранных условиях определения производное ММГ-БФЗ можно детектировать только спектрофотометрически при 553 нм, предел обнаружения составил 2 мкг/л при объеме пробы 100 мкл. Характеристики определения ММГ в виде производного с БФЗ указаны в таблице 35.
Таблица 35. Метрологические характеристики хроматографического определения производных БФЗ (n = 3, P = 0.95). Спектрофотометрическое (СФД) и флуориметрическое (ФЛД) детектирование.
Условия детектирования | Диапазон линейности, мг/л | Sr | Сmin, мг/л | r | a | b | ||
НДМГ | СФД | погл=488 нм | 0,5 - 50 | 0,05 | 0,01 | 0,9996 | 54 | -15 |
ФЛД | возб=488 нм рег=540 нм | 0,02 - 50 | 0,04 | 0,003 | 0,9996 | 2,6 | -0,6 | |
ММГ | СФД | погл=553 нм | 0,02 - 20 | 0,06 | 0,002 | 0,9995 | 170 | 29 |
Правильность предложенного подхода проверяли методом «введено-найдено» на примере анализа реального образца речной воды. Данные, представленные в таблице 36, свидетельствуют о том, что предложенный подход позволяет проводить определение НДМГ и ММГ в реальных объектах. Хроматограммы образца воды с добавкой НДМГ и МММГ представлены на рис. 84, 85.
Рис. 84. Хроматограмма образца воды с добавкой 0,1 мг/л НДМГ. Колонка Zorbax SB-C18, 4.6 × 150 мм. Элюент: 50% 0.02 М фосфатный буферный раствор (рН 3.6), 50% ацетонитрила. Скорость потока 0.7 мл/мин. Детектор — флуориметрический (lвозб = 488 нм, lэм = 540 нм).
ММГ-БФЗ
Рис. 85. Хроматограмма образца воды с добавкой 0,1 мг/л ММГ. Колонка Zorbax SB-C18, 4.6 × 150 мм. Элюент: 50% 0.02 М фосфатный буферный раствор (рН 3.6), 50% ацетонитрила. Скорость потока 0.7 мл/мин. Детектор — спектрофотометрический (lпогл = 553 нм).
Таблица 36. Результаты определения гидразинов в синтетическом образце воды (n = 3, P = 0.95)
Введено, мкг/л | Найдено, мкг/л | |
НДМГ | 100 7 | 96 ± 6 6.5 ± 0.8 |
ММГ | 100 | 102 ± 7 |
Таким образом, разработан подход определения НДМГ в виде флуоресцирующего производного с 4-хлор-7-нитробензофуразаном. Предел обнаружения НДМГ с использованием метода ОФ ВЭЖХ с наиболее чувствительным флуориметрическим детектированием (lвозб = 488 нм, lэм = 540 нм) составил 3 мкг/л при объеме вводимой пробы 100 мкл.
4.7.3. Сорбционное концентрирование
С целью повышения чувствительности определения НДМГ с БФЗ использовали стадию сорбционного концентрирования 100 мл раствора НДМГ после дериватизации. Сорбцию проводили на картриджах Strata C18-E, основывая выбор сорбента на составе неподвижной фазы, используемой для разделения производных.
Контроль сорбции показал отсутствие деривата НДМГ в 4 фракциях по 25 мл, собранных с картриджа в off-line режиме. Найдена возможность удаления избытка реагента из фазы сорбента при удерживании производного НДМГ, для чего требуется пропустить через картридж 40 мл дистиллированной воды. Количественная десорбция НДМГ-БФЗ (102±8 %) реализуется при использовании 2 мл ацетонитрила.
Однако сочетание сорбции со стадией хроматографического разделения не позволяет проводить определение малых количеств НДМГ из-за сложного состава матрицы реакционной смеси даже для модельных растворов. Длительная высокотемпературная реакция с БФЗ приводит к образованию многочисленных флуоресцирующих продуктов с аминосоединениями, которые при работе на низком уровне концентраций также сорбируются и затрудняют определение следовых количеств НДМГ в off-line или on-line режиме.
Таким образом, 4-хлор-7-нитробензофуразан не демонстрирует селективности к диметилгидразину и может использоваться для определения НДМГ при содержании свыше 5 мкг/л в природной воде.
4.7.4. Ограничения подхода
Поскольку гидразин и ММГ, сопутствующие диметилгидразину и являющиеся продуктами его разложения, образуют в выбранных реакционных условиях нефлуоресцирующие продукты с БФЗ, то они в любом случае не мешают флуориметрическому детектированию производного НДМГ. Однако диметиламин (ДМА), также являющийся продуктом его разложения, может затруднять определение НДМГ-БФЗ.
В работе установлено образование флуоресцирующего производного ДМА-БФЗ в выбранных условиях протекания реакции с НДМГ. Производное ДМА имеет такие же параметры детектирования и удерживания и обладает в 18 раз большей интенсивностью флуоресценции, чем НДМГ-БФЗ в выбранных условиях определения. Варьирование природы и состава подвижной фазы с использованием цитратных, ацетатных, фосфатных буферных растворов, а также использование других разделяющих колонок не привело к разделению этих компонентов. Реакционно-хроматографическое определение смеси НДМГ и ДМА представлено на рис. 86.