11009 (684973), страница 5

Просмтор этого файла доступен только зарегистрированным пользователям. Но у нас супер быстрая регистрация: достаточно только электронной почты!

Текст из файла (страница 5)

Представитель отряда Cyclopodia Cyclops scutifer стал ответственным за заражение Eubothrium salvelini у двухлеток нерки в 2004 г. Эта цестода была выявлена в одном случае – у двухлеток нерки. Инвазия отличалась низкими показателями интенсивности и экстенсивности – 1.0 (1) и 9.09%(д.и. 0.9–24.6%) соответственно.

Питаясь бокоплавами семейства Gammaridae и поденками семейства Ephemeridae, ранее приобретших церкарий от моллюсков родов Sphaerium (S.corneum) и Pisidium (P.amnium) молодь кижуча заражается трематодой Crepidostomum farionis (Margolis, 1982). Изредка, входящий в рацион питания лосося младших возрастных групп, реликтовый бокоплав отряда Amphipoda, Pontoporea affinis тоже является промежуточным хозяином для C.farionis (Бауер, Никольская, 1952). Данный вид трематод был обнаружен только у кижуча в 2003 г. Индекс обилия составил всего 0.07 с экстенсивностью 6.67%(0.0–24.6%).

P. oncorhynchi приобретаются лососями при поедании циклопов. Вероятнее всего, переносчиком является C. scutifer. Среди шести видов молоди лососей этой нематодой заражены только кета в 2004 г. и двухлетки чавычи. Причем экстенсивность заражения низкая и примерно одинаковая 10.0%(1.9–23.3%) и 10.53%(1.0–28.2%) соответственно.

Нематода Contracaecum sp. выявлена у сеголеток чавычи с экстенсивностью 23.3% (10.0–40.2%), интенсивностью 2,28 (1–6). У сеголеток кижуча в 2004 г. зараженность оказалась ниже: 6.67% (0.6–18.4%), 1.5 (1–2).

Пресноводный Neoechinorhyncus rutili передается лососям с помощью остракоды Candona candida, но кроме того данный паразит может аккумулироваться у лососевых при питании трех- и девятииглой колюшками, зараженных данным скребнем (Буторина, 1990). N.rutili был обнаружен у двухлеток нерки и чавычи. В остальных выборках данного паразита не было. Выше количественные показатели заражения были у нерки, чем у чавычи. Значения были следующими: экстенсивность 13.64% (2.7–31.1%) с индексом обилия 0.41 в первом случае, 5.26% (0.0–19.8%) и 0.11 – во втором случае.

Заключение

Моя квалификационная работа посвящена изучению паразитофауны молоди лососей в пресноводный период жизни. Исследования паразитов молоди лососевых рыб в р. Большая в 2003–2004 гг. позволили выделить 17 видов паразитов, принадлежащих к разным классам. По видовому составу и количественным показателям большее количество относится к эктопаразитам, эндопаразиты у молоди лососей появляются в процессе питания промежуточными хозяевами. Показательным является пример горбуши, которая сразу скатывается в море, почти не питаясь.

В ходе работы мы выяснили, что заражение тихоокеанских лососей эктопаразитами происходит по классической схеме. Наиболее высокий уровень инвазии эктопаразитами отмечается в период резкого увеличения численности рыб в русле реки при массовом скате в море. В этот период возрастает контактирование внутри ихтиоценоза и вероятность обмена паразитами межу рыбами. При высокой плотности молоди лосося в реке увеличивается возможность заражения хозяев свободноживущими формами эктопаразитов.

Эндопаразиты попадают в рыбу в результате употребления в пищу их промежуточных хозяев. Состав естественной пищи (кормовые объекты), наличие в рационе значительных количеств промежуточных хозяев патогенных гельминтов способствует развитию определенных эндопаразитозов. Также играет роль возраст рыбы, видовой и количественный состав паразитов у молоди расширяется от продолжительности пребывания её в пресной воде. Так, например, у чавычи на третьем году жизни обнаружено 10 видов паразитов, у сеголеток – всего 7. У нерки на первом году жизни присутствуют 2 вида эктопаразитов, на третьем году жизни – уже 6 видов.

Паразитофауна лососей отличается в зависимости от вида рыб, их возраста и места обитания в пределах бассейна одной реки. Так, сеголетки кеты, горбуши, кижуча, нерки, чавычи в р. Большая заражаются простейшими, моногенеями, в некоторых случаях – нематодами. В зависимости от вида рыбы, у сеголетков присутствуют от 2 до 7 видов паразитов. Минимальное количество паразитов обнаружено у нерки.

При исследовании выборок не было обнаружено особо опасных паразитов рыб, которые могли бы вызвать массовую гибель рыб. Также у молоди не было найдено ни одного вида, опасного для человека.

Несмотря на в целом благоприятную эпидемиологическую обстановку, среди обнаруженных паразитов пять видов (C.branchialis, C.piscicola, I.necator, T.truttae и A.conicum) относятся к группе патогенных. При возникновении благоприятных для развития паразита условий они могут нанести ущерб как естественным популяциям лососевых, так и, попадая на ЛРЗ, значительное повреждение и гибель мальков, а также снижение устойчивости к заболеваниям при скате в море.

Список используемой литературы

1. 75 лет КамчатНИРО. – Петропавловск-Камчатский: КамчатНИРО, 2007, стр. 120

2. Багров А.М, Илясов Ю.И. Сборник научных трудов. Болезни рыб. Выпуск 79 // М: Компания спутник+ – 2004. – с. 100

3. Банина Н.Н., Чернышова Н.Б. Влияние амиозом и эпистилисов на ткани рыб // Изв. ГосНИОРХ.Л.:1977.Т.С. 110–115

4. Бауэр О.Н. Экология паразитов пресноводных рыб // Изв. ГосНИОРХ. – 1959

5. Бауер О.Н., Богданова Е.А. Протозойные и грибковые заболевания при выращивании лососевых // Изв. ГосНИОРХ. Л.: 1963. Т. 54.С. 7–14

6. Бауер О.Н., Мусселиус В.А., Николаева В.М., Стрелков Ю.А. Ихтиопатология. – Издательство «Пищевая промышленность». – 1977. – С. 59–60

7. Бауер О.Н., Никольская Н.П. Новые данные о промежуточных хозяевах паразитов сига // Докл. АН СССР. – 1952. – Т. 84. – №5. – С. 1109–1112

8. Буторина Т.Е. Изучение паразитофауны молоди лососей рода Oncorhynchus в Охотском море // Паразитология. – Т.Х. – №1. – С. 3–7

9. Буторина Т.Е. О биологии скребней лососевых рыб озера Азабачье (Камчатка) // Тез. докл. IX Всесоюз. совещ. по паразитам и болезням рыб. – Л., 1990. – С. 15–16

10. Буторина Т.Е., Куперман Б.И. Экологический анализ зараженности цестодами рыб пресных вод Камчатки // В кн.: Биология и систематика гельминтов животных Дальнего Востока. – Владивосток: Изд-во ДВНЦ АН СССР, 1981. – С. 82–95

11. Буторина Т.Е., Шедько М.Б. Об использовании паразитов-индикаторов для дифференциации молоди нерки в озере Азабачьем (Камчатка) // Паразитология. – 1989. – Т. 23. – Вып. 4. – С. 302–308.

12. Ванятинский В.Ф., Мирзоева Л.М., Поддубная А.В. Болезни рыб. – М.: «Пищевая промышленность», 1979. – С. 118–121.

13. Ивашевский Г.А. Экология массовых видов паразитов рыб бассейна Северной Двины. Труды Коми научного центра УрО РАН. 1998. №57

14. Карманова И.В. Некоторые аспекты исследования паразитофауны тихоокеанских лососей Камчатки // В кн. Исследование биологии и динамики численности промысловых рыб Камчатского шельфа. – Петропавловск-Камчатский, 1991 а. Вып. 1. – Часть 2. – С. 82–94

15. Карманова И.В. Паразиты тихоокеанских лососей в эпизоотической обстановке паразитозов в бассейне р. Паратунки (Камчатка). Автореф. дис. … канд. биол. наук/ ИНПА РАН. Петропавловск-Камчатский, 1998.23 с.

16. Коновалов С.М., Шевляков А.Г., Красин В.К. Паразитофауна различных групп молоди красной Oncorhynchus nerka (Walb.) локального стада Азабачьего озера // Паразитология. – 1970. Т. 4. – Вып. 6. – С. 547–556

17. Коновалов С.М. Дифференциация локальных стад нерки Oncorhynchus nerka (Walbaum) // – Л.: Наука, 1971. – 217 с.

18. Леман В.Н., Есин Е.В. Иллюстрированный определитель лососеобразных рыб Камчатки. – М.: Изд-во ВНИРО, 2008. – 100 с.

19. Линева Г.П. Паразитологические исследования сеголетков тихоокеанских лососей на лососевых рыбоводных заводах Камчатки в 2000 г. // Отчет. Петропавловск-Камчатский. КамчатНИРО. 2000. 31 с.

20. Методы санитарно – паразитологической экспертизы рыб, моллюсков, ракообразных, земноводных, пресмыкающихся и продуктов их переработки // МУК 3.2.988–00. – Минздрав России, М., 2001. – С. 5–21.

21. Мусселиус В.А., Ванятинский В.Ф., Вихман А.А. Лабораторный практикум по болезням рыб // Легкая и пищевая промышленность. – 1983

22. Определитель паразитов пресноводных рыб фауны СССР. Т.3. Паразитические многоклеточные. (Вторая часть). – Наука, 1987. – С. 12.

23. Первый российско-американский симпозиум «Аквакультура и здоровье рыб». Рабочая программа и тезисы сообщений // М: ВНИИПРХ – 1998. – с. 121–125, 127–129, 142, 143, 155–158

24. Современные проблемы лососевых рыб. заводов ДВ: материалы междунар. Научно-практич. Семинара, сост. В 2006 г. в Петр-Камч в рамках VII научн. Конф. …, П-К., Камчатск. печ. двор. Книжн. изд. 2006, стр. 87

25. Стрелков Ю.А. Эндопаразитические черви рыб Восточной Камчатки // В кн.: Материалы по паразитологии рыб дальневосточных морей. Тр. Зоол. ин-та АН СССР. – 1960. Т. 28. – С. 147–196.

26. Уильямсон М. Анализ биологических популяций. – Издательство «Мир», М., 1975. – С. 26–31

27. Шустрова М.В., Пашкин П.И. Белова Л.М и др. Паразитология и инвазионные болезни животных: учебник для студ. сред. проф. учеб. заведений. – Издательский центр «Академия», 2006. – С. 89–91

28. Amos K.H. Procedures for the detection and identification of certain fish pathogens. Third ed. 1985. – 114 p.

29. Bartholomew J.L., Fryer J.L., Rohovec J.S. Ceratomyxa shasta infection of salmonid fish // In: Proceedings of the oji internat. sympos. of salmonid dis., 21–25 October1991./ Ed. T. Kimura/Hokkaido Univ. press. Sapporo. Jap. – P.267 – 275.

30. Kent M.L., Whitaker D.J., Margolis L. Transmission of Myxobolus arcticus Pugachev and Khokhlov, 1979, a myxosporean of pacific salmon, via a triactinomyxon from the aquatic oligochaete Stylodrilus heringianus (Lumbriculidae) // Can. J. Zool. – 1993b. – №..71. – P.1207–1211.

31. Kent M.L., Whitaker D.J., Magolis L. Sphaerospora oncorynchi n.sp. From the kidney of sockeye salmon (Oncorhynchus nerka) in British Columbia and its possible relationship to the myxosporean causing proliferative kidney desease in salmonid fish // Can.J. Zool. – 1993c. – №71. – P.2425–2430.

32. Margolis L. Parasitology of Pacific salmon – an overiew // In: Aspects of Parasitology / Ed. E. Meerovitch McGill/ Univ. Montreal: 1982. – P.135–226

33. Urawa S. Effects of Ichtiobodo necator infections on seawater survival of juvenile chum salmon (Onchorhynchus keta) // Aquaculture. 1993. Vol.110. P.101–110

34. Wisniewski L.W. Cyathocephalus truncatus Pallas. I. Die postembryonalen-twicklung und biologie //Bull. Acad. Polon. Sci. Cl. Ser. Nat. – 1933. – №33. – P.237–259

Характеристики

Список файлов ВКР