Диссертация (1154473), страница 17
Текст из файла (страница 17)
вприсутствии ГВ реки Суванни концентрация ДНА в суспензии заметно снизиласьв первые 300 мин, и дальнейшее снижение происходило по достижению111постоянного значения после 1400 мин экспозиции в отсутствии и присутствии ГВ(Рисунок 37). В дальнейшем эксперимент проводился в 24 ч экспозицииСодержание ДНА в суспензии, мг/лпроростков пшеницы с ДНА.123Время, минРисунок 37. Зависимость накопления ДНА, меченные тритием от времени, уинтактных проростков пшеницы Triticum aestivum L. Анализ проводили в течение24 ч экспозиции растений с ДНА, меченных тритием (15 мг/л) и ГВ (50 мг/л) при24°С.
Где 1 – ДНА + ГК реки Суванни, 2 - ДНА + ФК реки Суванни, 3 – ДНА.Линии отражают стандартные отклонения.Накопление растениями ДНА, в присутствии ГВ после 24 ч выдержкиопределяли с помощью мокрого озоления (Таблица 9).Таблица 9. Поглощение ДНА (15 мг/л) проростками пшеницы Triticumaestivum L. при влиянии ГВ (50 мг/л).Содержание ДНА, меченные тритием, мг/гКорниПобегиЛистьяДНА1720±720cd1,2±0,7b0,6±0,4aДНА + ГК торфа680±130a0,9±0,4a0,6±0,2aДНА + ФК реки Суванни 1170±400abc0,6±0,4a0,3±0,1aДНА + ГК реки Суванни850±290a1,5±1,1b0,9±0,5aДНА + ФК торфа1810±940d0,6±0,3a0,6±0,3aДНА + ГК торфа750±300a0,4±0,1a0,3±0,1aДНА + ФК торфа, ВМФ1570±580bcd0,5±0,2a0,5±0,3aДНА + ГК торфа, ВМФ1130±200ab0,5±0,1a0,4±0,2aLSD0,055500,70,6 LSD; значение одинаковых столбцов сопровождаются разными буквами иВариантыдостоверно различаются при = 0,05.
Где ВМФ – высокомолекулярная фракция.112Результаты показали, что ДНА активно связываются с корнями растенийTriticum aestivum L. и лишь частично с побегами. Содержание ДНА в корнях был в103 раза выше, чем в стеблях и листьях, что указывает на преимущественноенакопление ДНА в корнях по сравнению с побегами. Учитывая, что ДНА,содержащиеся в корнях были адсорбированы как на поверхности, так и внутрикорней, и то что содержание ДНА в побегах было низким, можно сделать вывод,что основное содержание ДНА, меченные тритием, в корнях было представлено восновном адсорбированными ДНА, а не ДНА в сосудистой системе растений.Адсорбция на поверхности корня, в свою очередь, должна быть тесно связана состабильностью суспензии ДНА, и последняя может быть косвенно связана сдзета-потенциалом ДНА, зависящим от наличия ГВ (Таблица 8).
Действительно,корреляционный анализ выявил значимую зависимость (коэффициент корреляцииR = 0,90) содержания ДНА в корнях от дзета-потенциала ДНА (Рисунок 38).Содержание ДНА в корнях, мг/гζ-потенциал ДНА, мВРисунок 38. Зависимость между содержанием ДНА (15 мг/л) в проросткахпшеницы Triticum aestivum L. и дзета-потенциалом ДНА в присутствии ГВ (50мг/л) различного происхождения. Где CHA – ГК угля, SRFA – ФК реки Суванни,SRHA – ГК реки Суванни, PFA – ФК торфа, PHA – ГК торфа, HMW of PFA – ФКторфа,высокомолекулярнаяфракция,HMWofPHA–ГКторфа,высокомолекулярная фракция.Таким образом, наблюдаемая корреляция позволила предположить, чтодзета-потенциал является ключевым фактором, определяющим связывание ДНА с113корнями растений.
По-видимому, данное явление можно объяснить отрицательнозаряженной поверхностью корня, что предотвращает адсорбцию отрицательнозаряженных частиц ДНА в присутствии ГВ. Это предположение хорошосоответствуетпродемонстрированномувлияниюдзета-потенциаланаихсодержание в корнях: чем меньше по модулю, величина отрицательного дзетапотенциала, тем выше содержание ДНА (Рисунок 38). Однако, когда ГК не былидобавлены в суспензии и частицы ДНА обладали положительным дзетапотенциалом, содержание ДНА в корнях статистически значимо не различалось( = 0,05), что и в присутствии ФК.
Так, наряду со знаком дзета-потенциала,коллоидная стабильность очевидно, также важна для связывания ДНА с корнямирастений. В случае с ФК дзета-потенциал ДНА был вне диапазона дзетапотенциала, обеспечивающим стабильность частиц (Таблица 8). Сопоставлениеданных о физико-химических характеристиках ГК и изменение дзета-потенциалаДНА в их присутствии показало, что существует значительная положительнаясвязь между дзета-потенциалом и атомным соотношением Н/С (r = 0,86) и О/С (r= 0,5).
Это открытие указало, вероятно, в снижении коллоидной стабильностиДНА в присутствии ГВ, обогащенными алифатическими фрагментами икислородом. Однако, необходимо больше исследований, чтобы подтвердить этопредположение.Накопление корнями ДНА было значительно снижено в присутствии ГК, в товремя как ФК не влияли (Таблица 9).
Несмотря на установленные различия вэффектах ГК и ФК на накопление ДНА в корнях, и ГК и ФК не влияли наконцентрацию ДНА в листьях. Тем не менее, было обнаружено статистическизначимое снижение содержание ДНА в стеблях в присутствии ГК (Таблица 9).Особый интерес представляет вывод, что наряду с увеличением диаметра ДНА от133 нм до 145 нм, содержание ДНА в стеблях снижается, а для ДНА большегоразмера не наблюдалось взаимосвязи между диаметром ДНА и их содержанием встеблях (Рисунок 39).114Содержание ДНА в стеблях, мг/гДиаметр ДНА, нмРисунок 39. Зависимость между содержанием ДНА (15 мг\л) в стебляхпроростках пшеницы Triticum aestivum L.
и диаметром ДНА в присутствии ГВ (50мг/л) различного происхождения. Где CHA – ГК угля, SRFA – ФК реки Суванни,SRHA – ГК реки Суванни, PFA – ФК торфа, PHA – ГК торфа, HMW of PFA – ФКторфа,высокомолекулярнаяфракция,HMWofPHA–ГКторфа,высокомолекулярная фракция.Для получения прямых доказательств поглощения ДНА растениями ипрослеживания распределения меченных тритием ДНА внутри растенийиспользовали авторадиографию. Побеги обрабатывали ДНА, меченные тритием исочетанием ДНА, меченных тритием и ГВ реки Суванни с последующей оценкойсодержания ДНА, меченных тритием в базальной, средней и апикальной частилистовой пластинки (Рисунок 40).Авторадиограмма показала, что максимальное содержание ДНА может бытьв базальной части растения в 1 – 2 см от кроны.
Это заключение свидетельствуето неравномерном распределении ДНА в листьях. Как в случае с только ДНА иДНА в присутствии ГВ наблюдалось постепенное увеличение содержания ДНАот базальной к апикальной части листовой пластинки (Рисунок 40). ЛокализацияДНА в верхушке побегов, может быть связана с задержкой ДНА в верхней частипродольных вен, из-за увеличения концентрации ДНА в ксилеме, связанного сиспарением воды. Таким образом, накопление ДНА в апикальной части листьевможно объяснить высоким уровнем васкуляризации в этой области.Относительное содержание ДНА в листьях115АОтносительное содержание ДНА в листьяхРасстояние от кроны, смБРасстояние от кроны, смОтносительное содержание ДНА в листьяхВРасстояние от кроны, смРисунок 40. Содержание ДНА, меченные тритием в листовых пластинкахпервого (черные точки) и второго (открытые точки) листьев в проростках116пшеницы Triticum aestivum L., нормированных к общему содержанию ДНА(слева) и соответствующие автодиаграммы (справа) проростков пшеницы,обработанные ДНА, меченные тритием (15 мг/л, удельная радиоактивность 240Бк/л) и ГВ реки Суванни (50 мг/л) в течение 24 ч).
Линии представляют длинуучастков листа. Где А – ДНА; Б – ДНА + ФК реки Суванни; В – ДНА + ГК рекиСуванни.Таким образом, наши измерения показали, что ДНА не влияют нафотосистему I, но могут оказывать негативное влияние на реакции ФС II приповышенной интенсивности света, включая слабое ингибирование переносаэлектрона между QA и QB, последующее снижение PIABS и Ek, а также вформировании электрохимического протонного градиента на мембране. Однако,при освещении в физиологических пределах, как правило, используемое длявыращиваниярастений,электрон-транспортнаяцепьнормальнофункционировала в присутствии ДНА.
Было показано, что влияние ГВ нафотосинтез растений в присутствии ДНА зависит от свойств ГВ. Введение ФКоказало частичное восстановление переноса электронов, в присутствии ГК онвосстанавливался до уровня контроля или даже выше. Как и в опытах стоксическим воздейстивием ионов хрома, наиболее чувствительным параметромоказался показатель функциональной активности ФС II - PIABS.1173.6. Влияние наночастиц серебра на микроводоросли Scenedesmusquadricauda и изменение их устойчивости при разных режимах добавлениягуминовых веществВ последнее десятилетие из-за противомикробных и других уникальныхфизико-химическихсвойств(каталитическаяактивность,специфическиеэлектронные свойства) все шире используются наночастицы (НЧ) серебра (Batistaet al., 2017).
Они используются в производстве тканей, воздушных фильтров,косметических средств. Появилось большое количество серебросодержащихмедицинских препаратов, которые обладают антимикробными свойствамиблагодаря наличию в них ионов серебра (Тодоренко, 2017; Doody et al., 2016).Рост производства НЧ серебра приводит к тому, что все больше НЧ попадает впресные воды, где они могут быть токсичными для водной экосистемы иприводить к нарушению различных экологических процессов (Conine et al., 2016;Hong et al., 2016; Yang et al, 2014). Хотя НЧ серебра высокотоксичны для водныхорганизмов, пока нет единого мнения о том, чем обусловлена данная токсичность:исключительно выделяемыми ионами серебра или же активными формамикислорода (Juganson et al., 2017).Нами были проведены исследования по влиянию НЧ серебра в четырехразличных концентрациях на параметры быстрой флуоресценции зеленыхмикроводорослей Scenedesmus quadricauda.
![](https://s.studizba.com/z.php?f=/templates/si/i/noavatar.png&w=100&h=100&t=1"){kind=avatar}
