Диссертация (1145858), страница 40
Текст из файла (страница 40)
–2002. – No.40. – P.309–348.381. Werner T., Motyka V., Laucou V., Smets R., Onckelen H.V., Schmulling T. Cytokinindeficient transgenic Arabidopsis plants show multiple developmental alterations indicatingopposite functions of cytokinins in the regulation of shoot and root meristem activity // PlantCell. – 2003. – No.15. – P.2532–2550.382. Whitelaw M.A. Growth promotion of plants inoculated with phosphate–solubilizing fungi //Adv. Agron.
– 2000. – No.69. – P.99–151.383. Whittenbury R., Dalton H. The methylotrophic bacteria. In: The prokaryotes / M.P. Starr, H.Stolph, H.G. Truper, A. Balows, H.G.Schlegel (ed.). – Berlin: Springer–Verlag KG, 1981. –P.894–902.384. Whittenbury R., Krieg N.R. Methylococcacea fam. nov. In: Bergey’s manual of systematicbacteriology, vol. 1 / Krieg N.R., Holt J.G.(ed.). – Baltimore: The Williams & Wilkins Co.,1984. – P.256–262.385.
Whittenbury R., Phillips K.C., Wilkinson J.G. Enrichment, isolation and some properties ofmethane utilizing bacteria // J. Gen. Microbiol. – 1970. – No.61. – P.205–218.171386. Williams R.T., Crawford R.L. Methanogenic bacteria, including an acid tolerant strain, frompeatlands // Appl. Environ. Microbiol. – 1985. – No.50.
– P.1542–1544.387. Williams R.T., Crawford R.L. Microbial diversity of Minnesota peatlands // Microb. Ecol. –1983. – 9. P.201–214.388. Wilson D.B. Studies of Thermobifida fuscaplant cell wall degrading enzymes // Chem. Rec. –2004. – No.4. – P.72–82.389. Wilson D.B. Microbial diversity of cellulose hydrolysis // Current Opinion in Microbiology. –2011. – No.14. – P.259–263.390. Wilson D.B. Three microbial strategies for plant cell wall degradation // Ann. N. Y.
Acad.Sci. – 2008. – No.1125. – P.289–297.391. Wise M.G., McArtur J.V., Shimkets L.J. Methanotrophic diversity in landfill soil: isolation ofnovel type I and type II methanotrophs whose presence was suggested by culture–independent 16S rDNA analysis // Applied and environmental microbiology. – 1999. –No.61. – P.205–218.392. Woese C.R., Kandler O., Wheelis M.L. Towards a natural system of organisms: Proposal forthe domains Archaea, Bacteria, and Eucarya // Proc. Natl. Acad. Sci. – 1990. – No.87 –P.4576–4579.393.
Wright A.G., Pimm C. Improved strategy for presumptive identification of methanogensusing 16S riboprinting // J. Microbiol. Methods. – 2003. – No.55. – P.337–349.394. Xie G., Bruce D.C., Challacombe J.F., Chertkov O., Detter J.C., Gilna P.,Han C.S., Lucas S.,Misra M., Myers G.L. Genome sequence ofthe cellulolytic gliding bacterium Cytophagahutchinsonii // Appl. Environ. Microbiol.
– 2007. – No.73. – P. 3536–3546.395. Chen Y.P., Rekha P.D., Arun A.B., Shen F.T., Lai W–A., Young C.C. Phosphate solubilizingbacteria from subtropical soil and their tricalcium phosphate solubilizing abilities // AppliedSoil Ecology. – 2006. – No.34. – P.33–41.396. Zhang Y., Guo L.
Arbuscular mycorrhizal structure and fungi associated with mosses //Mycorrhiza. – 2007. – No.17. – P.319–325397. Zaied K.A., El–Diasty Z.M., El–Rhman M.M.A., El–Sanossy A.S.O. Effect of horizontalDNA transfer between Azotobacter strains on protein patterns of Azotobactertransconjugants and biochemical traits in bioinoculated Okra (Abelmoschus Esculentus, L.)// Aust. J. Basic. Appl.
Sci. – 2009. – Vol.3. No.2. – P.748–760.398. Zehnder G., Kloepper J., Yao C., Wei G. Induction of systemic resistance in cucumber againstcucumber beetles (Coleoptera, Chrysomelidae) by plant growth–promoting rhizobacteria //J. Econ. Entomol. – 1997. – No.90. – P.391–396.399. Zellner G., Winter J. Secondary alcohols as hydrogen donors for CO2–reduction bymethanogens // FEMS Microbiol.
Lett. – 1987. – No.44. – P.323–328.400. Zhang S., Wolfgang D., Wilson D.B. Substrate heterogeneitycauses the nonlinear kinetics ofinsoluble cellulosehydrolysis // Biotechnol. Bioeng. – 1999. – No.66. – P.35–41.172БлагодарностиАвтор выражает особую благодарность и признательность своему научному руководителюЧеботарю Владимиру Кузьмичу за чуткое и внимательное руководство. Также автор выражаетблагодарность всему коллективу ГНУ ВНИИСХМ и его директору Тихоновичу ИгорюАнатольевичу. Автор хотел бы поблагодарить коллег из других институтов за помощь восуществлении исследований по данной тематике: Брагину А.В, Берг Г.
(Институтприродоведческой биотехнологии, Технологический университет, Грац, Австрия), Берг К.(Ботанический институт, Карл-Франсес университет, Грац, Австрия), Кузьмину Е.Ю.(Ботанический институт им. Комарова РАН, С.Петербург, Россия), Лапшину Е.Д. (Югорскийгосударственныйуниверситет,Ханты-Мансийск,Россия).Такжеавторвыражаетблагодарность своим близким и жене Елене за неоценимую поддержку, оказанную в ходеподготовке работы.173ПРИЛОЖЕНИЕКраткий отчетГНУ ВНИИОУ по выполнению этапа 02.06.03.01 Изучить влияние новыхмикробиологических препаратов на процессы трансформации пожнивных остатков зерновыхкультур в дерново-подзолистой почве за 2012 г.Руководитель и отв.
исполнитель – канд. биол. наук Русакова И.В.02.06.03.01. Изучить влияние новых микробиологических препаратов на процессытрансформации пожнивных остатков зерновых культур в дерново-подзолистой почвеЦель исследований – изучить влияние микробиологических препаратов новогопоколения на процессы гумификации и минерализации соломы в почве и датьагроэкологическую оценку эффективности использования соломы зерновых культурсовместно с микробиологическими препаратами в специализированном зерновом севооборотена дерново-подзолистой супесчаной почве для разработки высокоэффективных способовприменения биопрепаратов при использовании не товарной части зерновых на удобрение.Новизна исследований.
Впервые получены экспериментальные данные поагроэкологической эффективности новых микробиологических препаратов, полученных наоснове эффективных микроорганизмов и предназначенных для ускорения разложенияпослеуборочных остатков зерновых культур, установлены количественные параметры,характеризующие влияние инокулирования биопрепаратами на скорость и направленностьпроцессов трансформации растительных остатков зерновых культур в дерново-подзолистойсупесчаной почве.Методика исследований. Исследования проводили в микрополевом опыте, заложенномосенью 2011 г. после уборки ячменя на опытном поле ГНУ ВНИИОУ согласно следующейсхеме: 1 – Контроль без удобрений; 2 –Солома ячменя 5т/га; 3 - Солома ячменя 5т/га + N50 ; 4– Солома ячменя 5т/га + N50 + Баркон ; 5 – Солома ячменя 5т/га + N50 + Экстрасол С ; 6 –Солома ячменя 5т/га + N50 + Экстрасол ЦС; 7 – Солома ячменя 5т/га + N50 + Bioforce.Опыт закладывается в 2-х полях.
Площадь опытной делянки 3,36 м2 (2,1 х 1,6м).Повторность 4-х кратная.Почва дерново-подзолистая супесчаная. В эксперименте использовали солому ячменя(измельчѐнную до размеров 1 – 3 см) с опытного поля ГНУ ВНИИОУ, микробиологическиепрепараты, разработанные во Всероссийском научно-исследовательском институтесельскохозяйственной микробиологии (ГНУ ВНИИСХМ Россельхозакадемии):1. Баркон – на основе культур микроорганизмов деструкторов целлюлозо- илигнинсодержащих растительных отходов;2. Экстрасол С – на основе культуры эффективных штаммов Bac.
Subtilis;3. Экстрасол ЦС – с усиленной целлюлозолитической активностью;4. Bioforce – Биопрепарат компании Bionick, применяемый для ускорениякомпостирования органических отходов различного происхождения, в том числерастительных.Биопрепараты в опыте применялись согласно рекомендациям производителей.Солома ячменя после уборки зерна измельчалась и распределялась по поверхностиделянок опыта вручную в дозе из расчѐта 5 т/га.
После равномерного распределения соломына еѐ поверхность распределялась компенсирующая доза азота (N50) в виде аммиачнойселитры и изучаемые биопрепараты согласно схеме опыта. В этот же день (28.08.2011 г.)обработанная биопрепаратами солома равномерно заделывалась в почву на глубину 0 – 20 см(модель зяблевой вспашки).Для оценки эффективности влияния применяемых биопрепаратов в отношениискорости трансформации соломы, а также показателей плодородия дерново-подзолистойпочвы в отчетном году проведено изучение: минерализационных потерь (эмиссии) CO2 из174пахотного слоя почвы – абсорбционным методом по Шаркову; численности основныхфизиологических групп микроорганизмов (ФГМ) – методом посева почвенной суспензии натвердые и жидкие питательные среды; содержания микробной биомассы (С мб) - методомрегидратации – экстракции; динамики минерального азота – по ГОСТ; нитрифицирующейспособности (НС) – по методу Кравкова; актуальной (полевой) целлюлозолитическойактивности – по % разложения целлюлозы; содержания углерода, экстрагируемого горячейводой – Сэгв; величины, структуры урожая, химического состава зерна и соломы яровойтритикале.Обсуждение экспериментальных данных и результаты научных исследований.Наблюдения за размерами эмиссии СО2 из почвы опыта проводили в динамике, начиная с 1суток после заделки соломы с БП, с интервалом 7 суток.
![](https://s.studizba.com/z.php?f=/templates/si/i/noavatar.png&w=100&h=100&t=1"){kind=avatar}
