Raznye_bilety (1123251)
Текст из файла
Про ЯМР,ЭПР и люминесценцию есть в учебнике лекций рубина,это не пишу,модели хаотических процессов криво-косо написаны в Таниных билетах.Билет1,9.Молекулярно-абсорбционнаяспектрометрия–исследуетаналитические сигналы в области от 200 до 750 нм (УФ-излучение и видимый свет),вызванные электронными переходами внешних валентных электронов, а такжепоглощение излучения в ИК- и микроволновой области, связанное с изменениемвращения и колебания молекул.Наиболее широкое распространение получил метод, основанный на изучениипоглощения в видимой области спектра в интервале длин волн от 400 до 750 нм —фотометрия;Фотометрический метод количественного анализа основан на способностиопределяемого вещества, компонента смеси или их окрашенных форм поглощатьэлектромагнитное излучение оптического диапазона. Способность к поглощениюзависит от цветности исследуемого вещества.
Цветность определяется электроннымстроением молекулы, обычно ее связывают с наличием в молекуле так называемыххромофорных групп, обусловливающихпоглощение электромагнитного излучения веществом в видимой и УФ-областяхспектра.Крометого,еслимолекулаорганическогосоединенияблагодаряналичиюкомплексообразующих групп способна образовывать комплексы с ионами металлов,это вызывает появление или изменение окраски комплекса по сравнению сисходным соединением. Свойства таких комплексообразующих реагентов широкоиспользуют на практике, в частности при определении загрязнения пищевыхпродуктов тяжелыми металлами.Для каждого поглощающего вещества имеется определенное распределениеинтенсивности поглощения по длинам волн.
Концентрацию поглощающего веществапроводят при длине волны, соответствующей максимальному поглощению. Такимобразом, поглощение является количественной характеристикой определяемоговещества в виде аналитического сигнала.Общая схема выполнения фотометрического определения едина и включаетследующие стадии:· подготовку пробы и переведение определяемого вещества или компонента враствор, в реакционноспособную, в зависимости от химизма аналитической реакции,форму;· получение окрашенной аналитической формы определяемого вещества врезультатепроведенияцветнойреакцииприоптимальныхусловиях,обеспечивающих ее избирательность и чувствительность;·измерениесветопоглощающейспособностианалитическойформы,т.е.регистрация аналитического сигнала при определенных условиях, отвечающих еголокализации и наибольшей интенсивности.Промышленностью выпускаются различные приборы молекулярно-абсорбционнойспектрометрии – фотометры, фотоэлектроколориметры, спектрофотометры и т.
д., вкоторых установлены различные комбинации источников света, монохроматизаторови рецепторов. Приборы можно классифицировать следующим образом:по способу монохроматизации лучистого потока — спектрофотометры, т.е. приборы спризменным или решеточным монохроматором, позволяющие достигать высокойстепени монохроматизации рабочего излучения; фотоэлектроколориметры, т. е.приборы, в которых монохроматизация достигается с помощью светофильтров;поспособуизмерения—однолучевыеспрямойсхемойизмерения(прямопоказывающие) и двухлучевые с компенсационной схемой;по способу регистрации измерений — регистрирующие и нере-гистрирующие.В настоящее время для получения спектров поглощения применяют, как правило,двухлучевые спектрометры.Применение автоматизированного, управляемого микропроцессором фотометра веще большей степени расширяет возможности спектрофотометрии: позволяетпроводить измерения большого количества образцов при различных длинах волнчерез различные интервалы времени.Билет 2,18,28, 31 (из статьи Рубина)Флуоресцентные методы в экологическом мониторинге.
Характер измененияпервичныхстадийфлуоресценциифотосинтезахлорофилланепосредственновотражаетсяфотосинтетическихвмембранахизмененииклеток.Флуоресценция хлорофилла является пока единственным показателем, которыйпозволяет исследовать в живых объектах протекание фотохимических реакций,связанных с работой фотосистемы 2 высших растений (ответственной за разложениеводы и выделение кислорода) — системы, наиболее чувствительной к факторамвнешней среды таким как: экстремальные температуры, избыточная освещенность,соли тяжелых металлов, высушивание, повышение содержания солей в питательнойсреде.При активном фотосинтезе, когда все РЦ находятся в открытом рабочем состоянии,в условиях слабого освещения почти вся поглощенная энергия света используется впроцессе фотосинтеза.
Поэтому интенсивность флуоресценции хлорофилла в клеткенамного ниже, чем в растворе. Однако и здесь небольшая часть энергииэлектронного возбуждения (не более 3%) переходит в энергию света флуоресценциив виде так называемой фоновой флуоресценции F0. Как правило, в нормальныхусловиях величина F0 мала, что говорит об активном использовании клеткамиэнергии поглощенного света. Но если при каких-либо воздействиях нарушаетсясостояние фотосинтетических мембран, то центры (РЦ) переходят в неактивное(закрытое)состояние,когдапроисходитпрекращениепотокаэлектроноввпервичных процессах фотосинтеза.
В этих условиях поглощенная энергия света ужене может использоваться в фотосинтезе, поэтому и флуоресценция хлорофиллавозрастает. Можно полностью вывести из рабочего состояния РЦ, например придействии ингибитора потока электронов диурона. В этом случае флуоресценциясильно возрастает и приближается к своим максимальным значениям Fm. Заметим,что закрыть центры, можно создавая также избыточную освещенность клеток, когдапроисходит световое насыщение фотосинтеза. Фотосинтетическая цепь переносаэлектрона как бы захлебывается от избытка поглощенной световой энергии,переводя все большую часть поглощенной энергии света в флуоресценцию.Билет 13 .Флуоресцентные зондыНа кафедре биофизики биологического факультета МГУ разработан специальныйприбор (погружной зонд-флуориметр), позволяющий проводить измерение величинF0 и Fm в водоемах на разных глубинах (до 200 м). Принцип действия зонда состоитв том, что при освещении первой слабой вспышкой света порции фитопланктона, взонде измеряется величина фоновой флуоресценции F0.
Затем при действии второймощной вспышки света в клетках происходит кратковременное насыщение всех РЦ,которые не успевают утилизировать поглощенную энергию света и переходят врезультате этого в закрытое состояние. В этих условиях флуоресценция хлорофиллавозрастает до максимальных значений Fm. Таким образом можно определитьзначения переменной флуоресценции Fv = Fm − F0 и отношение Fv / Fm, которыеотражаютэффективностьзапасанияэнергиисветананачальныхэтапахфотосинтеза. Поскольку величина F0 зависит от количества хлорофилла в клетках,то это можно использовать для определения его концентрации. По величине F0можнотакжеопределятьиколичествобиомассыфитопланктона,котороепропорционально содержанию хлорофилла в клетках.
Определение величин F0 иFv/Fmпозволяетвыявитьситуации,когдавводоемахимеетсямногофитопланктона (F0 велико), однако его активность и продукция невелика из-занеблагоприятныхусловий.Наоснованииэтихданныхможнополучитьсравнительную информацию о распределении как самого фитопланктона (F0), так иего фотосинтетической активности (Fv / Fm) по глубине и горизонтальным разрезам вводоемах и рассчитать фотосинтетическую продукцию.Билет 4, Длительное послесвечение хлорофиллаПроцесс замедленной флуоресценции (ЗФ) обнаружен Арноном и Стреллером в1951 году.
Это явление состоит в том, что после светового возбуждения вфотосинтезирующихклеткахнаблюдаетсяслабое(сверхслабое),длительнозатухающее свечение, испускаемое хлорофиллом. Такое свечение возникает ужепосле прекращения флуоресценции (F0) за счет энергии, выделяемой в ходетемновых реакций первичных фотопродуктов фотосинтеза в РЦ.
Было показано, чтоинтенсивностьЗФпропорциональнаколичествуРЦвсостоянииР+А1−сразделенными зарядами. Это состояние зависит от скорости последующих стадийпереноса электрона. При действии повреждающих факторов на фотосинтетическийаппарат концентрация РЦ в состоянии Р+А1− может изменяться. Это позволяетиспользовать ЗФ для обнаружения загрязнений в различных средах обитаниярастений.Обычно при исследовании замедленной флуоресценции растений используютметодырегистрации кинетик затухания долгоживущих компонент с τ > 1с и кривых индукциимиллисекундныхкомпонентпослесвечения(зависимостейинтенсивностипослесвечения отвремениосвещенияобразцов.Кинетиказатуханияфлуоресценциирастений,возбужденной коротким импульсомсвета, включает в себя как короткоживущие компоненты (τ = (I0)^−9 -( I0)^−7с,быстраяфлуоресценция), так и долгоживущие компоненты (τ = (I0)^−6 -( I0) с, замедленнаяфлуоресценция).
Как отмечалось выше, спектральный состав всех компонентфлуоресценцииодинаков,поэтомуприрегистрациипослесвечениярастенийвозникаетнеобходимостьвременногоразделенияисследуемыхпроцессов.Обычнодлявыделениясоставляющейпослесвечения из общей люминесценции объекта момент возбуждения отделяетсяот началарегистрации свечения некоторым темновым интервалом, в течение которого быстраяфлуоресценция хлорофилла полностью затухает. В наиболее простых установкахобъектзакрепляется на вращающейся подставкеи послеосвещения механическиповорачивается всторону детектора излучения.
Короткоживущие компоненты--базе фосфоскопа,который представляет собой систему из трехкоаксиальных цилиндров (1, 2а, 2). Неподвижные внешний (I) и внутренний (2а)цилиндрыимеют два окна; через окна проходит свет возбуждения от источника (4; рубиновыйлазер)или свет послесвечения, который регистрируется ФЭУ (3). Средний подвижныйцилиндр(2) имеет одно окно и приводится во вращение электродвигателем (5). При вращениисреднего цилиндра попеременно открывается окно возбуждения или измерениясвечения.Объект помещается во внутренний неподвижный стакан ближе к окну регистрации;освещение объекта производится красным светом.
Время между возбуждением иизмерениемпослесвечения определяется скоростью вращения электродвигателя и составляетобычнонесколько миллисекунд. Установка позволяет регистрировать короткоживущиекомпонентыпослесвечения с τ = (I0)^-3 -(I0)^−2 с.Билет 5. липосомы и билипидные мембраны (из разных диссертаций)Липосомы представляют собой коллоидные образования, состоящие из небольшогообъёма водной фазы, отделённой от объёма раствора замкнутым липиднымбислоем.Обычно липосомы разделяют на малые (d~200÷500Å), большие (d~500÷5000Å) игигантские (до 300 мкм).
Характеристики
Тип файла PDF
PDF-формат наиболее широко используется для просмотра любого типа файлов на любом устройстве. В него можно сохранить документ, таблицы, презентацию, текст, чертежи, вычисления, графики и всё остальное, что можно показать на экране любого устройства. Именно его лучше всего использовать для печати.
Например, если Вам нужно распечатать чертёж из автокада, Вы сохраните чертёж на флешку, но будет ли автокад в пункте печати? А если будет, то нужная версия с нужными библиотеками? Именно для этого и нужен формат PDF - в нём точно будет показано верно вне зависимости от того, в какой программе создали PDF-файл и есть ли нужная программа для его просмотра.