Автореферат диссертации (Аэрозольная санация воздушной среды кролиководческих помещений при профилактике респираторных заболеваний кроликов), страница 4
Описание файла
Файл "Автореферат диссертации" внутри архива находится в папке "Аэрозольная санация воздушной среды кролиководческих помещений при профилактике респираторных заболеваний кроликов". PDF-файл из архива "Аэрозольная санация воздушной среды кролиководческих помещений при профилактике респираторных заболеваний кроликов", который расположен в категории "". Всё это находится в предмете "биология" из Аспирантура и докторантура, которые можно найти в файловом архиве МГАВМиБ - МВА им. К.И. Скрябина. Не смотря на прямую связь этого архива с МГАВМиБ - МВА им. К.И. Скрябина, его также можно найти и в других разделах. , а ещё этот архив представляет собой кандидатскую диссертацию, поэтому ещё представлен в разделе всех диссертаций на соискание учёной степени кандидата биологических наук.
Просмотр PDF-файла онлайн
Текст 4 страницы из PDF
У кроликов первой опытнойгруппы на 3 сутки отмечалось достоверное снижение числа эритроцитов до4,89±0,08х1012/л (Р<0,05), в то время как концентрация гемоглобина илейкоцитов имела лишь тенденцию к уменьшению и, соответственносоставили 106,4±2,16 г/л (Р>0,05) и 6,89±0,59х109/л (Р>0,05). На 7 суткипосле обработки, происходило постепенное увеличение указанныхпоказателей, а на 14 сутки уровень гемоглобина, эритроцитов и лейкоцитовбыли близки к фоновым величинам.У кроликов второй опытной группы на 3 сутки после обработкипроизошло снижение количества эритроцитов и лейкоцитов, соответственнодо 5,25±0,28х1012/л(Р>0,05) и 7,02±0,79х109/л (Р>0.05). В дальнейшемпроисходило постепенное увеличение этих показателей, и к 14 суткам онибыли близки к фоновым величинам.
Количество гемоглобина на 3-е суткипосле обработки составляло 101.4±2,73г/л (Р<0,05). В дальнейшем17происходило постепенное увеличение этого показателя, и к окончанию опытаколичество гемоглобина было близкое к фоновому, соответственно119,4±0,81г/л и 120±1.57г/л.По результатам исследований крови кроликов третьей опытной группыустановлено, что содержание эритроцитов, лейкоцитов, гемоглобина неимеют достоверных различий с показателями крови животных первой ивторой опытных групп.При анализе лейкограммы у кроликов 1 опытной группы на 3 суткипосле обработки отмечалось достоверное снижение процентного содержаниясегментоядерных и палочкоядерных нейтрофилов, соответственно до28,4±2,99% и 3,0±0,55% и увеличение числа лимфоцитов (61,4±3,47%,Р<0,01) и моноцитов (3,2±0,49 %, Р< 0,05).
Аналогичные изменения влейкограмме наблюдались и на 7 сутки после обработки. На 14 суткиисследований эти показатели не имели достоверных различий от показателейконтрольной группы.Что касается базофилов, то их процентное содержание у кроликовпервой опытной группы было достоверно выше на 7 сутки после обработкипо сравнению с показателями контрольной группы животных.Процентное содержание эозинофилов у животных подопытной группыбыло более высоким по сравнению с этим показателем у животныхконтрольной группы на 7 сутки после обработки.
На 14 сутки различия впоказателях процентного содержания эозинофилов животных контрольной ипервой опытной групп были недостоверными.При анализе лейкограммы у кроликов второй опытной группы на 3сутки после обработки отмечалось достоверное снижение процентногосодержаниясегментоядерныхипалочкоядерныхнейтрофилов,соответственно до 20.8±1,86% ( Р<0,001), и 4,6±0,75% ( Р<0,05) и увеличениечисла лимфоцитов до 67,4±1,17% ( Р<0,001).Аналогичные изменения в лейкограмме наблюдались и на 7 сутки. На14 сутки исследований эти показатели не имели достоверных различий отпоказателей контрольной группы.Что касается базофилов, то их процентное содержание у кроликоввторой опытной группы было достоверно выше на 7 сутки после обработки,по сравнению с показателями контрольной группы животных.Процентное содержание эозинофилов у животных второй опытнойгруппы было более высоким по сравнению с этим показателем у животныхконтрольной группы на 3 сутки после обработки, но на 14 сутки различия впоказателях процентного содержания эозинофилов животных контрольной иподопытной групп были недостоверными.18Лейкограмма у кроликов третьей опытной группы не имеетдостоверных различий с лейкограммой животных первой и второй опытныхгрупп.Биохимические показатели крови.
Содержание в крови АсАТ, АлАТ,щелочной фосфатазы до аэрозольной обработки крольчатников растворомВироцида находилось приблизительно на одном уровне во всех опытных иконтрольной группах.На 3 сутки после обработки в крови кроликов 1 опытной группысодержание АсАТ было ниже на 7% по отношению к этому показателю дообработки. В крови кроликов 2 и 3 опытных групп отмечено незначительноеповышение уровня АсАТ на 0,87 и 1,72% соответственно.
По отношению кконтрольной группе этот показатель у кроликов 1 опытной группы был нижена 8,62%, у кроликов 2 опытной группы был аналогичен контролю, а в 3опытной группе был выше на 1,72% (Р<0,05).Содержание АлАТ в сыворотке крови до обработки и на 3 сутки вовсех опытных и контрольной групп существенных различий не имела.Следует отметить, что данный показатель в контрольной группе на 3 суткинесколько увеличился и составил 52,82±5,6 ед.
л, что на 1,8% выше, этогопоказателя до обработки.Содержание в крови щелочной фосфатазы на 3 сутки после обработкине имело достоверных различий у кроликов контрольной и опытных групп.Содержание в крови АсАТ и АлАТ на 14 сутки после аэрозольнойдезинфекции не имели достоверных различий у животных контрольной иопытных групп.Следует отметить, что на 14 сутки уровень щелочной фосфатазы вкрови кроликов контрольной, 1 и 3 опытных групп был выше этогопоказателя до обработки на 2,9; 0,42; 2,4%, в то время как у кроликов 2опытной группы он был ниже на 1,59 % (Р<0,05).Полученные результаты биохимических исследований указывают наотсутствие достоверных изменений в количестве АсАТ, АлАТ, щелочнойфосфатазы в крови кроликов контрольной и опытных групп.Таким образом, применение раствора Вироцида для аэрозольнойдезинфекции помещений в концентрациях 0,4-0,6% не вызывает у кроликовзначительных изменений в морфологическом и биохимическом составекрови, исследуемые показатели в контрольной и опытных группахварьировали в пределах физиологических параметров, а отмеченныеизменения в процентном содержании отдельных показателей кровидостаточно быстро восстанавливались, и показатели крови возвращались кисходным величинам.19Послеубойный ветеринарно-саннитарный осмотр тушек и внутреннихорганов кроликов не выявил видимых патологоанатомических изменений,что подтверждает проведённый органолептический анализ.Тушки кроликов были хорошо обескровлены.
В лимфатических узлахвидимых изменений не наблюдалось.В тушках всех опытных и контрольной групп послеубойные измененияне имели различий, в них не было обнаружено видимых изменений.Установленные физико-химические показатели мяса кроликовопытных групп достоверно не отличались от показателей рН контрольнойгруппы (табл.6).Количество амино-аммиачного азота в пробах из мяса кроликов убитыхна 3 сутки после обработки не выходило за пределы допустимой нормы длядоброкачественного мяса кроликов.Реакция на пероксидазу была положительной, а реакция на первичныепродукты распада белков - отрицательной во всех группах.Таблица –6Результаты физико-химических исследований мяса и продуктов убоякроликов при применении Вироцида (М±m)Времяисследования3 сутки15сутки30суткиПоказателирНАмино-аммиачн. азотРеакция на пероксидазуПерв.
прод. распадабелковПерекисное числоКислотное числорНАмино-аммиачн. азотРеакция на пероксидазуПерв. прод. распадабелковПерекисное числоКислотное числорНАмино-аммиачн. азотРеакция на пероксидазуПерв. прод. распадабелковПерекисное числоКислотное числоКонтрольнаягруппа5,75±0,0391,34±0,023+-1 опытнаягруппа0,35%-5 мл/м35,74±0,0391,32±0,024+-2 опытнаягруппа0,5%- 5 мл/м 35,73±0,0351,67±0,046*+-3 опытнаягруппа0,6%-5мл/м 35,77±0,0641,6±0,04*+-0,05±0,010,72±0,0035,82±0,071,33±0,017+-0,04±0,010,71±0,0035,8±0,071,31±0,01+-0,03±0,0060,73±0,015,76±0,0361,6±0,058+-0,04±0,0030,74±0,025,74±0,051,53±0,023+-0,04±0,010,70±0,015,75±0,041,32±0,029+-0,04±0,010,71±0,015,76±0,011,31±0,029+-0,03±0,0090,73±0,025,78±0,0271,57±0,052+-0,04±0,0060,73±0,025,73±0,0621,48±0,003*+-0,03±0,010,71±0,010,03±0,0010,71±0,010,04±0,010,70±0,010,03±0,0060,71±0,0120При определении безвредности и биологической ценности мясаустановлено, что по биологической ценности мясо кроликов 1 опытнойгруппы было выше на 3,07%, во второй опытной группе на 1,40%, в третьейна 1,91% по отношению к контролю, но изменения были недостоверными.Биологическая ценность печени и почек существенно не отличались (табл.7)Безвредность исследуемых проб определяли по изменению характерадвижения инфузорий Tetrahymena periformis, наличию патологических форми мертвых клеток в культуре.
Все испытуемые образцы не оказывалиугнетающего действия на инфузории. Таким образом, все исследуемыеобразцы являлись безвредными в отношении тест - организмов инфузорияTetrahymena periformis, что свидетельствует о безопасности растворовВироцида, и безвредности мяса кроликов.Таблица –7Относительная биологическая ценность мяса, печени и почек кроликовпри аэрозольной дезинфекции крольчатника Вироцидом на инфузорияхTetrahymena periformis. (М±m)1 опытная2 опытная3 опытнаяВремяВидКонтрольгруппагруппагруппаисследо- продукная(0,35%-5(0,5%-5(0,6%-5ванияциигруппа33мл/м )мл/м )мл/м3)Мясо211±7,94 217,67±12,44212±7,5213,1±8,4430 сутки Печень 396±11,15 391,33±6,17 401,67±10,98 397,76±10,76Почки 463,6±4,84 462,34±6,93462±1,53461,35±7,33Микроскопическая картина печени у кроликов контрольной и 3опытной группы не имела выраженных различий.Печень кроликов контрольной группы имела дольчатое строение,каждая долька имела многогранную форму, гепатоциты имелимногоугольную форму, ядра гепатоцитов занимали центральное положение,печеночные вены были четко контурированы.
(рис. 3).Цитоплазма гепатоцитов кроликов 3 опытной группыимелаумеренную базофилию, цитолемма клеток определяется отчетливо. Междупеченочными пластинками располагаются внутридольковые синусоидныекапилляры, несущие кровь с периферии дольки к центральной вене. Вокругвнутридольковыхсинусоидныхкапилляровопределяетсяперисинусоидальные пространства. Между дольками, в слабо развитоймеждольковой рыхлой соединительной ткани располагается триада печени(междольковая артерия, вена и междольковый желчный проток) (рис. 4).21Рис. 3. Микроструктура долькипечени кролика контрольнойгруппы.