Автореферат диссертации (1151492), страница 2
Текст из файла (страница 2)
Даниловой ФГБОУ ВПО «Московскаягосударственная академия ветеринарной медицины и биотехнологииимени К.И. Скрябина».Апробация работы. Основные материалы диссертации доложены:-на научных конференциях профессорско-преподавательского составанаучных сотрудников и аспирантов МГАВМиБ (2012, 2014);-на расширенном заседании сотрудников кафедры зоогигиены иптицеводства им. А.К. Даниловой (2014);-на международной научно-практической конференции, посвящённой95-летию МВА (2014);Публикации. По материалам диссертации опубликовано 5 печатныеработы, 3 из которых в рецензируемых журналах ВАК.Объем и структура диссертации. Диссертация изложена на 134страницах компьютерного текста; включает введение, обзор литературы,собственные исследования, обсуждение полученных результатов, выводы,рекомендации об использовании научного положения, сведения опрактическом использовании научных положений, список использованнойлитературы и приложения.Работа иллюстрирована 32 таблицами, 12 рисунками.Список использованной литературы включает 207 источников, изкоторых 35 иностранных авторов.2.
СОБСТВЕННЫЕ ИССЛЕДОВАНИЯ2.1 Материалы и методы исследованийДиссертационная работа выполнена в 2012-2015 гг. Экспериментальнаячасть работы проведена на кафедре зоогигиены и птицеводства им. А.К.Даниловой ФГБОУ ВПО «Московская государственная академияветеринарной медицины и биотехнологии имени К.И.
Скрябина», и на базекролиководческой фермы «Наука» Государственного научного учреждения(ГНУ) «Научно-исследовательский институт пушного звероводства икролиководства им. В.А. Афанасьева Россельхозакадемии» и в условияхкролиководческого хозяйства «Вихрово» Серпуховского района Московскойобласти.С целью изучения эффективности применения аэрозольногодезинфектанта Вироцид для профилактики респираторных заболеванийкроликовбылопроведено2 научно-хозяйственных опытаи6производственная проверка.
Для проведения исследований по методу параналогов отбирали контрольные и опытные группы животных.Для аэрозольной дезинфекции нами впервые использованобактерицидное средство нового поколения Вироцид, выпускаемое фирмой"СИД ЛАЙНС НВ/СА" ("CID LINES NV/SA", Бельгия).В процессе проведения экспериментов по определению оптимальнойконцентрации раствора Вироцида, опытные крольчатники подвергались двукратной аэрозольной обработке растворами Вироцида различныхконцентраций (от 0,35 до 0,6%) согласно общей схеме исследований (табл.1),с помощью аэрозольных генераторов ИГЕБА (Германия): Небуло иНебуротор, методом холодного тумана в количестве 5 мл/м³ с диаметромчастиц 50 – 60 мкм. рабочего раствора. Интервал между обработкамисоставлял 7 суток.Таблица- 1Общая схема исследованийОпытРастворВироцида,%0,350,40,50,6-ГруппаКоличествоживотных18501 Опытная12 Контрольная1 Опытная1752 Опытная1753 Опытная17524 Контрольная175Базовый2130ПроизводственнаявариантпроверкаНовый вариант0,52130В течение эксперимента оценивали динамику ОМЧ воздухапомещений, заболеваемость кроликов респираторными заболеваниями,падёж, сохранность кроликов, прирост живой массы.По завершении эксперимента проведена производственная апробация вусловиях кролиководческой фермы «Наука» в ГНУ «НИИ ПЗК им.Афанасьева» Московской области.При проведении экспериментов учитывали следующие показатели:зоогигиенические,зоотехнические,диагностические,клинические,бактериологические, гистологические, а также проводили ветеринарносанитарную оценку мяса и продуктов убоя кроликов.Температурно–влажностный режим определяли с помощью гигрометрапсихрометрического ВИТ-1, скорость движения воздуха с помощью7кататермометра, запылённость с помощью аспиратора, содержание в воздухеаммиака и сероводорода с помощью универсального газоанализатора,освещённость люксметром Ю-117.Массу кроликов определяли путём взвешивания на весах марки СОЛО15 МТ.Сохранность кроликов определяли по результатам ежедневного учётападежа и вынужденной выбраковки.Анализ заболеваемости кроликов проводили по результатам осмотраживотных, а также по данным статистической ветеринарной отчетности(Журнал регистрации больных животных, форма № 1–вет).Физиологическое состояние кроликов оценивали по изменениюгематологических и биохимических показателей крови.Уровень гемоглобина и объём эритроцитов определяли наавтоматическом гематологическом анализаторе АБХ Micros ES60,лейкоцитов - подсчётом в камере Горяева, лейкограмму - подсчётом 200лейкоцитов в мазках, окрашенных по Романовскому - Гимза.
Окраску мазковдля определения лейкоцитарной формулы проводили по методу Мая –Грюнвальда в модификации Папенгейма.Уровень аспартатаминотрансферазы (Аст), аланинаминотрансферазы(Алт) определяли колориметрическим методом (метод Френкеля), щелочнуюфосфатазу - реакцией с нитрофинилфосфатом.Для определения общего микробного числа пробы воздуха отбиралиаспирационным методом с помощью аппарата Кротова. Посевы напитательные среды производили в 3 точках, расположенных по диагоналикрольчатника в соответствии общепринятой методикой.Общее микробное число воздуха определяли посевом на чашки Петрина среде МПА (мясо-пептонный агар).
Гемолитические и негемолитическиестафилококки и стрептококки на МПА, микроскопические грибы Aspergillus,Candida, Mucor на среде Сабуро, бактерии кишечной группы на среде Эндо.Чашки Петри закрывали и помещали в термостат при температуре 370С. Учётвыросших колоний проводили через 48 часов.Бактериологическиеисследованиявыделенныхкультурмикроорганизмов проводили согласнометодическим рекомендациям«Методы лабораторных исследований и испытаний дезинфекционныхсредств для оценки их эффективности и безопасности» Р 4.2.2643-10, Москва2010. Видовую принадлежность микроорганизмовопределяли всоответствии срекомендациями, изложенными в определителезоопатогенных микроорганизмов (Сидоров М.Н.
и др., 1995)8Гистологическое исследование проводили в соответствии сруководством А.А. Артишевского и др., «Гистология с техникойгистологических исследований». Пробы размером 1х0,5 сантиметровфиксировали10%-нымрастворомнейтральногоформалина.Продолжительность фиксации 3 суток. После промывки и высушивания пробпроводили нарезку их до размеров необходимых для дальнейшей работы.Завтем пробы обезвоживали и заливали парафином.
Изготовлениемикросрезов проводили на санном микротоме (толщина срезом составляла 5мкм). Срезы окрашивали гематоксилин-эозином. Окрашенные препаратыизучали с помощью микроскопа «Биомед С2».Органолептические исследования проводили в соответствии с ГОСТ20235.0-74. «Мясо кроликов. Органолептические методы оценки качества»,учитывали следующие показатели: внешний вид и цвет, консистенцию,запах, состояние мышц на разрезе, состояние жира, прозрачность и ароматбульона.Для определения физико-химических показателей мяса использовалиГОСТ20235.1-74«Мясокроликов.Методыхимическогоимикроскопического анализа свежести».
Количество амино-аммиачного азотаопределяли по (Софронову А.М., Макарову В.А. и др.,1987). Величина рНустановлена потенциометрическим методом по ГОСТ Р 54478-99, ИСО 291774 «Мясо и мясные продукты. Контрольный метод определенияконцентрации водородных ионов рН».Относительную биологическую ценность (ОБЦ) определяли наинфузориях Tetrahymena pyriformis согласно «Методическим рекомендациямдля использования экспресс-метода биологической оценки продуктов убоя икормов» (1990 г.).Дегустационную оценку варёного мяса кроликов и бульонаосуществляли по 9-бальной шкале (Антипова Л.В., Глотова И.А., Рогов И.А.,2004).Все полученные результаты исследований обработаны методамивариационной статистики с вычислением средних арифметических величин,статистических ошибок, а также степени изменчивости и достоверностипоказателей с использованием персонального компьютера и руководствуясьописанием биометрических методов (Кочиш И.И., 1992).Диссертационная работа оформлена в текстовом и табличномредакторе Word и Excel 2007.93.РЕЗУЛЬТАТЫ СОБСТВЕННЫХ ИССЛЕДОВАНИЙАнализируя распространенность респираторных заболеваний в ООО«Вихрово» необходимо отметить, чтов общей заболеваемостиреспираторные болезни составили 46,85%, а по стаду 3,62%.Заболеваемость кроликов респираторными заболеваниями в ООО«Вихрово» в холодный период составляла 33,3%, в переходный период56,2%, наименьшее количество респираторных болезней регистрировали втёплый период – 10,5%.Основную долю в структуре респираторных заболеваний в холодныйпериод составлял ринит - 17,3%, бронхит и пневмония составлялисоответственно 7,9% и 11,9%.
Наиболее высокая заболеваемость кроликовринитом отмечена в зимний период, бронхитом и пневмонией в переходныйпериод. Заболеваемость кроликов ринитом в холодный период была выше в1,2 раза, чем в переходный период и в 9,2 раза выше, чем в тёплый период.Заболеваемость кроликов бронхитом в переходный период была в 3,1 разавыше, чем в холодный период и в 3,7 раза выше, чем в тёплый период. Позаболеваемости кроликов пневмонией по периодам года отмеченааналогичная динамика (рис.1).При анализе заболеваемости кроликов на экспериментальной ферме«Наука»установлено, чтоу кроликов, содержавшихся в шедах,респираторные болезни составляли в среднем 55,9 % от числа всех болезней,а по стаду – 4,97%; при содержании в помещениях с регулируемыммикроклиматом – соответственно 48,86 % и 6,0%.Рис.1 Влияние сезонности на частоту респираторных болезней в ООО«Вихрово» (%)10Эти данные свидетельствуют о том, что наибольшее числореспираторных болезней регистрируется у кроликов, содержащихся взакрытых помещениях.Заболеваемость кроликов респираторными заболеваниями в НИИ ПЗКв холодный период составляла 49,56 %, в переходный период 35,4 %,наименьшее количество респираторных болезней регистрировали в тёплыйпериод -15,04%.Основную долю в структуре респираторных заболеваний в холодныйпериод занимал ринит.
Заболеваемость кроликов ринитом в холодныйпериод была в 1,4 раза выше, чем в переходный период и в 5,6 раз, чемвтёплый. По заболеваемости кроликов бронхитом и пневмонией по периодамгода отмечена аналогичная динамика (рис.2).При оценке санитарного состояния помещений для содержаниякроликов нами установлено несоответствие параметров воздушной средыкрольчатников по ряду показателей, а именно освещённости, скоростидвижения воздуха, содержания в воздухе аммиака и сероводорода, пылевой имикробной загрязнённости.Рис. 2. Влияние сезонности на частоту респираторных болезней наэкспериментальной ферме «Наука» НИИ ПЗК (%)Выращиваемые в таких условиях кролики находятся под постоянныммикробным прессингом, что отрицательно влияет на здоровье ипродуктивность снижает резистентность кроликов и приводит к высокойзаболеваемости кроликов, что в конечном итоге является причинойповышенной выбраковки и падежа.Микрофлора обследованных кролиководческих помещений былапредставлена следующими микроорганизмами: гемолитическими палочками,11гемолитическими стафилококками и стрептококками, негемолитическимистафилококками и стрептококками, бактериями группы кишечной палочки(БГКП), грибами.Установлено, что 0,4-0,6%-ные растворы Вироцида губительновоздействовали на основную часть микроорганизмов, присутствующих вобрабатываемых крольчатниках, нонаилучший результат получен приприменения Вироцида в концентрации 0,5-0,6%.
![](https://s.studizba.com/z.php?f=/templates/si/i/noavatar.png&w=100&h=100&t=1"){kind=avatar}
