15078 (686424), страница 3

Просмтор этого файла доступен только зарегистрированным пользователям. Но у нас супер быстрая регистрация: достаточно только электронной почты!

Текст из файла (страница 3)

При агглютинации культуры с О – сывороткой определяют ее групповую принадлежность. Затем при помощи Н – сывороток соответствующей группы окончательно устанавливают тип исследуемой культуры.

Сухие сыворотки перед употреблением растворяют в стерильном физиологическом растворе из расчета 2 мл на ампулу, что соответствует первоначальному объему сыворотки до высушивания. Растворенные сыворотки используют в реакции агглютинации на стекле. Методика постановки РА на стекле такая же, как и с комплексными сыворотками.

Биопроба. Метод применяют в необходимых случаях, например при выделении нетипируемых серологически сальмонелл. Исследуемую культуру вводят подкожно белым мышам по 0,2...0,3 мл при концентрации клеток

(0,5 – 1) • 10⁸/мл. В положительных случаях животные гибнут в течение 3 – 10сут.

Серологическая диагностика входит в состав лабораторной и заключается в постановке РА. Используют свежие сыворотки от животных или сыворотки, консервированные фенолом (до 0,5%), со сроком их давности не свыше 15 дней. Антиген для реакции агглютинации выбирают в зависимости от вида животного, а именно: сыворотки от крупного рогатого скота исследуют с антигенами S. enteritidis (dublin) и S. typhimurium, от свиней — S. typhisuis или S. choleraesuis и S. typhimurium и т. д.

Для постановки реакции агглютинации готовят двукратное разведение исследуемых сывороток карболизированным (0,5%-м) физиологическим раствором, начиная с разведения 1:25 и до 1:3200. Сыворотку берут по 0,5 мл каждого разведения.

При массовых исследованиях допускают постановку реакции в четырех разведениях (1:50, 1:100, 1:200, 1:400) с последующей проверкой положительных проб в разведениях сыворотки до 1:3200.

Одновременно ставят контроли:

1) с негативной сывороткой в тех же разведениях, что и исследуемые сыворотки;

2) с положительными сыворотками до их предельного титра;

3) антиген с физиологическим раствором без сыворотки.

В пробирки вносят по 0,5 мл соответствующего разведения сыворотки. Затем во все пробирки (в том числе и контрольные) добавляют по 0,5 мл антигена при концентрации клеток 5 • 10⁸мл. Штатив с пробирками тщательно встряхивают до получения равномерной суспензии и выдерживают в термостате при 37 – 38 °С 4 – 10 ч, затем оставляют при комнатной температуре на 14 – 20 ч, после чего проводят макроскопический учет реакции.

Реакцию считают положительной при наличии агглютинации в разведениях сыворотки 1:200 и выше, при отрицательных результатах реакции агглютинации — в контрольных пробирках. Реакцию считают сомнительной при наличии агглютинации в разведении сыворотки 1:100 и ниже. При получении сомнительной реакции сыворотку крови от этих животных исследуют повторно через 10... 15 дней, и в случаях, если титр не повысился, реакцию следует считать отрицательной. Оценивают реакцию агглютинации в крестах.

Возбудитель сальмонеллеза телят — S. enteritidis (dublin) может обусловливать гастроэнтерит у человека вследствие пищевой токсикоинфекции. По антигенной структуре относится к группе D1. Патогенен для белых мышей. Реже сальмонеллез телят может быть обусловлен S. typhimurium, который вызывает сальмонеллез у водоплавающей птицы и у человека. По антигенной структуре входит в группу В.

Лечение. Больных или подозреваемых в заболевании животных изолируют от общего поголовья. Проводят комплексное лечение направленное на повышение защитных сил организма (используют иммуностимуляторы и иммуномодуляторы). Применяют поливалентную антитоксическую сыворотку против сальмонеллеза. Для подавления сальмонелл используют бактериофаги, антибиотики, сульфаниламиды и нитрофурановые вещества (специфическая этиотропная терапия). Необходимо вводить витаминные препараты и бактериальные препараты АБК, ПАБК, ацидофилин.

Иммунитет. Животные преобретают иммунитет после перенесенного заболевания или при иммунизации.

Профилактика и меры борьбы. Профилактика инфекционных болезней — система мероприятий, обеспечивающих предупреждение возникновения и распространения болезней в благополучных хозяйствах.

Специфическая профилактика — это специальная система мер, направленная на предупреждение появления определенной (конкретной) инфекционной болезни путем применения различных специфических средств, главным образом вакцин.

При обнаружении в хозяйстве сальмонеллеза на него накладывают карантин и его снимают через 30 дней после последнего выявленного больного и проведения заключительной дезинфекции. Текущую дезинфекцию проводят через каждые 7 – 10 дней до снятия карантина. Больных животных изолируют и лечат, здоровых вакцинируют, контролируют качество кормов, режим кормления и содержания.

Для предотвращения заболевания животных сальмонеллезом необходима своевременная случка; полноценное кормление беременных маток; кормление молодняка бактериальными препаратами (ацидофилин, ацидофильная бульонная культура, ПАБК) и премиксами, содержащими подтитрованные лекарственные вещества; вакцинация беременных самок и молодняка.

Биопрепараты. Концентрированную формолквасцовую вакцину против паратифа (сальмонеллеза) телят готовят из селекционированного штамма S. dublin.

Вакцину применяют для прививок телят и коров. Телят вакцинируют с 1 – 2 – дневного возраста, двукратно с интервалом 3 – 5 дней. Иммунитет наступает на 10 день после второй прививки и продолжается до 5 месяцев.

Коров рекомендуется прививать дважды с 8 – 10 – дневным интервалом за 50 – 60 дней до отела.

Вакцина против сальмонеллеза телят из аттенуированного штамма S. dublin № 6.

Поливалентную антитоксическую сыворотку против паратифа телят, поросят, ягнят, овец и птиц получают из крови волов – продуцентов, иммунизированных поливалентным антигеном, состоящим из четырех серотипов сальмонелл: S. dublin, S. typhimurium, S. abortusovis, S. choleraesuis. Сыворотку проверяют на стерильность, безвредность и активность.

Бактериофаг против паратифа и колибактериоза телят и бактериофаг против пуллороза (тифа птиц) готовят из фагов, выделенных от переболевших сальмонеллезом или колибактериозом животных. В реактор в МПБ или бульон Хоттингера засевают суспензию бактерий и добавляют маточные фаги. Визуально определяют полноту лизиса бактерий, затем добавляют хинозол и фенол. Фаголизат фильтруют через стерилизующие пластинки. Проверяют на стерильность, безвредность и активность (по Аппельману).

Сальмонеллезный антиген для серологической диагностики представляет собой гомогенную инактивированную суспензию сальмонелл (концентрация клеток 1 • 10⁹/мл). Применяют для серологической диагностики сальмонеллезов в пробирочной РА.

Флуоресцирующие сальмонеллезы О – сыворотки получают из крови кроликов, иммунизированных формалинизированными антигенами. Сыворотки адсорбируют, осаждают сульфатом аммония глобулины и проводят люминесцентное мечение очищенных глобулинов флуоресцеинизотиоционатом. Выпускают сыворотки к сальмонеллам 5 серогрупп и комплексную сыворотку.

Наборы сывороток сальмонеллезных О – комплексных и моно – рецепторных О – и Н – агглютинирующих предназначены для экспресс – диагностики в РА на предметном стекле 33 групп сальмонелл, выделяемых от животных, из продуктов животного происхождения и объектов внешней среды.

Предложения и рекомендации

1. Проводить плановую диспансеризацию маточного поголовья и молодняка с использованием клинико – биохимических методов.

2. Строго соблюдать санитарно – гигиенические нормы и режим в родильном и телятниках – профилакториях.

3. В телятниках – профилакториях проводить санацию по принципу ″все занято – все свободно″.

4. Организовывать активный моцион стельных коров.

5. Производить первое кормление молозивом в течение первого часа жизни новорожденного.

6. Выпаивать молозиво строго с температурой не ниже 36 – 38^оС.

7. Включать в рацион специальные премиксы с витаминно – минеральными компонентами.

8. Облучение молодняка инфракрасными и ультрафиолетовыми источниками света.

9. Проводить регулярную дезинфекцию и дезинсекцию в телятниках.

10. Необходимо повышение квалификации обслуживающего персонала по вопросам ветеринарной санитарии.

СПИСОК ИСПОЛЬЗОВАННОЙ ЛИТЕРАТУРЫ:

1. Справочник ветеринарного врача / Сост. и общ. ред. В.Г. Гавриша и И.И. Калюжного. Изд – е 5 – е , испр. и доп. – Ростов н/Д: изд – во ″Феникс″, 2003. – 576 с.

2. Профилактика заболеваний сельскохозяйственных животных и птиц / В.А. Трушина, Л.А. Сивохина, В. А. Каптюшин.—М: ООО «Аквариум-Принт», 2005. — 190, [2] с.

3. Практикум по ветеринарной микробиологии и иммунологии / Костенко Т.С., Родионова В. Б., Скородумов Д. И. — М.: Колос, 2001. — 344 с: ил. — (Учебники и учеб. пособия для студентов высш. учеб. заведений).

Характеристики

Список файлов курсовой работы