93725 (681594), страница 5

Просмтор этого файла доступен только зарегистрированным пользователям. Но у нас супер быстрая регистрация: достаточно только электронной почты!

Текст из файла (страница 5)

Показания к проведению исследования: хронические простатиты.

Необходимое оснащение:

1. Стерильные широкогорлые контейнеры (банки).

2. Предметное стекло.

3. Теплая вода.

4. Мыло.

5. Стерильные марлевые салфетки.

6. Резиновые перчатки.

Взятие исследуемого материала:

• больной должен провести тщательный туалет наружных половых органов с помощью теплой воды, мыла и стерильных марлевых салфеток;

• больному предлагают помочиться в стерильный контейнер, собрав 10—20 мл мочи; контейнер помечают, как проба № 1;

• больной продолжает мочиться в сосуд, для сброса мочи;

• не опорожняя полностью мочевой пузырь, больной наполняет контейнер № 2 10—20 мл мочи;

• врач проводит массаж простаты через задний проход и, если удается получить сок простаты, готовит из него мазок на стекле;

• больной мочится в контейнер № 3, собирая в него первые 10 мл мочи из последней порции мочи;

• внешние поверхности закрытых контейнеров с пробами, если на них попала моча, обтираются ветошью, смоченной дезинфектантом.

4.8.3 Материал из яичка, его придатков и паховых лимфатических узлов

Материал подвергается бактериологическому исследованию редко. Как правило, в этом случае взятие материала осуществляется путем его аспирации одноразовым шприцем 1,0 мл. После чего игла закрывается защитным колпачком, и материал доставляется в лабораторию возможно быстро. Следует избегать попадания в шприц пузырьков воздуха!

4.9 Отделяемое женских половых органов

Минимальная схема обследования женщины должна включать бактериоскопическое исследование мазков из трех биотопов:

• уретра (диагностика ЗППП);

• задний свод влагалища (оценка состояния влагалищного биоценоза, диагностика вагинозов и вагинитов);

• цервикальный канал (диагностика ЗППП).

Если все три мазка направляются на одном стекле, они должны быть четко промаркированы.

При необходимости, дополнительно отбираются пробы для бактериологического исследования и ПЦР.

Наиболее часто объектом микробиологического исследования является материал из влагалища и цервикального канала. Другие виды материала исследуются редко, поэтому ограничимся изложением общих принципов их получения.

Из вульвы и преддверия влагалища материал забирают зондом-тампоном.

При воспалении бартолиниевых желез проводят их пункцию.

Материал из матки можно получить с помощью специального инструмента — шприца-аспиратора. После прохождения зондом цервикального канала в полости матки раскрывают наружную оболочку зонда и набирают в шприц содержимое матки. Взятие для исследования материала из придатков матки проводят во время оперативного вмешательства.

4.9.1 Материал из влагалища

Состояние влагалищной микрофлоры может быть оценено с помощью трех методов: бактериоскопического, полуколичественного бактериологического и количественного бактериологического. Последний, безусловно, является наиболее информативным. В этом случае материал забирается специальной калиброванной стерильной одноразовой бактериологической петлей и сразу засевается на питательные среды или материал берут с помощью заранее взвешенного тампона. В лаборатории тампон взвешивают повторно, определяя тем самым количество забранного влагалищного отделяемого. Так как количественный метод используется, как правило, только при проведении научных исследований, в настоящем пособии его подробное описание не приводится.

Показания к проведению исследования: диагностика вагитинтов и вагинозов. Обследование супруги при уретритах у мужа.

Необходимое оснащение:

1. Одноразовое стерильное гинекологическое зеркало.

2. Стерильные одноразовые зонды-тампоны на пластиковой оси: один — в стерильной пробирке (тубсер), второй — индивидуально упакованный.

ИЛИ

1. Уретральные зонды или специальные щеточки — (cervix brush, cytobrush и vola brush).

2. 2 предметных стекла.

5. Система с транспортной средой Эймс или Стюарт (желательно).

Взятие исследуемого материала:

• материал для анализа получают до проведения мануального исследования;

• зеркало и подъемник вводят во влагалище, с помощью стерильной салфетки убирают избыток выделений и слизи;

• материал собирают с заднего свода или с патологически измененных участков двумя стерильными зондами-тампонами;

• первый тампон помещают обратно в стерильную пробирку и возможно быстро доставляют в лабораторию для проведения бактериологического исследования;

• второй тампон используют для приготовления мазка; мазок наносится на 2 предметных стекла; если одновременно планируется исследование материала из цервикального канала и/или уретры, все 2—3 мазка можно сделать на одном стекле (в лабораторию в этом случае доставляются два стекла, на каждом из них мазки из всех обследуемых биотопов); мазки маркируют, высушивают на воздухе и, поместив в специальные планшеты для транспортировки стекол, или в чашки Петри, доставляют в лабораторию;

• если планируется исследование на гонорею, материал забирается зондом-тампоном системы с транспортной средой (предпочтительно — среда Эймс с активированным углем), который немедленно после взятия погружается в транспортную среду; материал должен быть доставлен в лабораторию в течение 24 часов; не допускается его охлаждение до температуры ниже +30°С (по некоторым данным литературы гонококки в среде Эймс с активированным углем переживают не менее 48 часов при комнатной температуре) при исследовании на уреаплазмы и микоплазмы материал забирается зондом-тампоном (ложкой Фолькмана, специальным зондом) и сразу же суспендируется в специальной питательной среде; может использоваться как единая питательная среда для микоплазм и уреаплазм, так и отдельные среды для каждого микроорганизма; в течение 2 часов материал должен быть доставлен в лабораторию; допускается увеличение сроков транспортировки до 48 часов при температуре +4 — +8°С;

• при исследовании на трихомонады для сбора материала используют сухой стерильный тампон; сразу после взятия материал суспендируют в пробирке (флаконе) с транспортной средой для трихомонад (раствором Рингера); материал доставляется в лабораторию возможно быстро без охлаждения.

4.9.2 Материал из цервикального канала

Показания к проведению исследования: диагностика цервицитов и заболеваний, передающихся половым путем.

Необходимое оснащение:

1. Одноразовое стерильное гинекологическое зеркало.

2. Стерильные одноразовые зонды-тампоны на пластиковой оси: один — в стерильной пробирке (тубсер), второй — индивидуально упакованный.

ИЛИ

3: Специальные щеточки — (cervix brush, cytobrush и vola brush).

4. Система с транспортной средой Эймс или Стюарт (желательно).

Взятие исследуемого материала:

1. обнажают шейку матки с помощью зеркал и убирают избыток выделений и слизи стерильной марлевой салфеткой или ватным шариком, смоченным стерильным физиологическим раствором или дистиллированной водой; высушивают салфеткой;

2. если предполагается бактериологическое исследование, например на гонорею, тонкий стерильный тампон (входящий в состав транспортной системы) аккуратно вводят в цервикальный канал на глубину 1,0—1,5 см, и вращают 10 сек., извлекают, не касаясь стенок влагалища, и сразу же погружают тампон в транспортную среду, например, среду Эймс с активированным углем;

3. для исследования на хламидии, микоплазмы/уреаплазмы и вирусы материал лучше забирать с помощью специальных цитощеток (зондов). Порядок дальнейших действий зависит от выбранного метода исследований:

   • культуральный метод — материал помещается в питательную среду. Может использоваться как единая питательная среда для микоплазм и уреаплазм, так и отдельные среды для каждого микроорганизма. В течение 2 часов материал должен быть доставлен в лабораторию. Допускается увеличение сроков транспортировки до 48 часов при температуре +4 - +8°С;

   • ПЦР — материал помещают в полученную в лаборатории микропробирку с лизирующим буфером, физиологическим раствором и т.п. Зонд несколько раз вращают в пробирке для снятия материала. Вопрос, можно ли обломить зонд и оставить его в пробирке, следует уточнить непосредственно в лаборатории, выполняющей исследования;

   • РИФ (ПИФ) — сразу после взятия материала приготавливаются мазки на предметном стекле. Лучше использовать специальные стекла «с лунками», которые обычно входят в состав диагностических наборов.

4.10 Раневые (хирургические) инфекции

Показания к проведению исследования: признаки гнойно-воспалительного процесса в ране.

Необходимое оснащение:

1. Зонд-тампон из вискозы на пластиковой или деревянной оси в сухой пробирке (тубсер) и зонд-тампон из вискозы из транспортной системы со средой Эймс или Стюарта;

2. Стерильная пробирка или 2 пробирки (при отсутствии транспортных систем).

3. Стерильный физиологический раствор.

4. Стерильные пробирки.

5. Стерильные марлевые салфетки.

6. Антисептик.

Взятие исследуемого материала:

Взятие материала при подозрении на раневую инфекцию осуществляет врач при проведении перевязки или операции. Технология взятия образца для микробиологического исследования определяется клинической ситуацией и не может быть унифицирована. Исследуемым материалом могут служить: экссудат, аспират из раны, мазки (тканевая жидкость, пропитавшая зонд-тампон), биоптаты и др. Направление для исследования собственно гноя или струпа не целесообразно.

Подготовительные мероприятия:

Взятие материала врач осуществляет при соблюдении правил асептики. Кожу вокруг раны или над очагом воспаления обрабатывают 70° этиловым спиртом и 1—2% настойкой йода (ее обязательно надо смыть 70° спиртом либо другим разрешенным антисептиком) во избежание ожогов. При необходимости удаляют с помощью стерильной салфетки некротические массы, детрит, гной. Использовать растворы антисептиков для снятия повязки или обработки раневой поверхности до взятия материала нельзя.

Взятие материала с помощью стерильного тампона:

• материал забирают после туалета раны, совершенного вышеописанным способом;

• используют два ватных (коттоновых), вискозных или дакроновых тампона на деревянной или пластиковой оси; пробы для бактериологического и микроскопического исследования следует забирать отдельными тампонами;

• пробы отбирают прокатывая каждый зонд-тампон по раневой поверхности от центра к периферии в течении 5—10 секунд; тампон должен равномерно пропитаться тканевой жидкостью; манипуляцию необходимо проводить максимально осторожно, не травмируя ткани; появление даже следов крови свидетельствует о неудаче, так как кровь обладает бактерицидными свойствами;

• взятие материала для микроскопии ОБЯЗАТЕЛЬНО, так как в ряде случаев, она более информативна по сравнению с бактериологическим исследованием; зонд-тампон, предназначенный для отбора материала на микроскопическое исследование, помещают обратно в пустую пробирку (тубсер);

•'тампон с материалом для бактериологического исследования помещают в среду Эймс или Стюарт.

Взятие аспирата:

• материал забирают после обработки кожи вышеописанным способом;

• после высыхания дезинфектанта врач с помощью одноразового шприца объемом 3—5 мл и иглы №22 или №23 берет аспират из глубины раны. Если имеется везикула, берется жидкость и клетки у основания дефекта;

• если попытка взять аспират вышеописанным способом не удается, подкожно вводят стерильный физиологический раствор и повторно пытаются взять аспират;

• если и эта попытка оказывается неудачной, через иглу в шприц набирают жидкую питательную среду или физиологический раствор в небольшом количестве, ополаскивают иглу и используют полученную жидкость в качестве исследуемого материала;

• при наличии в ране дренажей, отделяемое из них засасывают шприцем в количестве 1—2 мл;

• аспират из шприца, сняв иглу, переливают в пробирку с транспортной средой Кери Блейр или иной, обеспечивающей сохранение неспорообразующих анаэробов; в крайнем случае, если гарантирована немедленная доставка материала в лабораторию, допускается транспортировать материал непосредственно в шприце с иглой, надев на нее защитный колпачок.

Взятие биоптатов:

При сборе пробы в процессе операции кусочки ткани (3—5см³) помещают в стерильный контейнер, пробирку или стерильную стеклянную емкость, добавив 3—5 мл стерильного физиологического раствора для предохранения материала от высыхания.

4.11 Пробы при воспалительных заболеваниях глаз

4.11.1 Материал с конъюнктивы

Отделяемое

Показания к проведению исследования: воспалительные заболевания конъюнктивы.

Необходимое оснащение:

1. Зонды-тампоны из хлопкового или вискозного волокна на пластиковой или деревянной оси в составе транспортной системы со средой или такие же тампоны в сухой стерильной пробирке (тубсеры).

2. Стерильный физиологический раствор.

Взятие исследуемого материала:

• материал целесообразно забирать утром, до умывания; за 6— 8 часов до этого (ночь) отменяются все медикаменты и процедуры;

• при наличии гнойного отделяемого материал собирают с помощью зонда- тампона;

• гной собирают с внутренней поверхности нижнего века движением в направлении от наружного к внутреннему углу глазной щели;

• больной должен придерживать веки руками, чтобы при моргании ресницы не касались тампона;

• при скудном отделяемом зонд-тампон предварительно смачивают стерильным физиологическим раствором; избыток влаги отжимают о внутреннюю поверхность емкости, после чего собирают материал, как описано выше;

• тампоны помещают в пробирки с транспортными средами или, в крайнем случае, в пустые стерильные пробирки (тубсеры); маркируют их «правый глаз», «левый глаз» и доставляют в лабораторию.

Соскоб с конъюнктивы Показания к проведению исследования: воспалительные заболевания конъюнктивы.

Необходимое оснащение:

1. Раствор анестетика.

2. Стерильная лопаточка или специальный стерильный шпатель.

3. 96° этиловый спирт или ацетон.

4. Предметное стекло.

Взятие исследуемого материала:

• материал целесообразно забирать утром, до умывания; за 6—8 часов до этого (ночь) отменяются все медикаменты и процедуры;

• вводят 1—2 капли анестетика, например, пропаракаина гидрохлорида или другого;

• двумя-тремя короткими резкими движениями в одном направлении специального стерильного шпателя собирают соскобы;

• готовят, по меньшей мере, по 2 мазка из каждого глаза, нанося материал на чистое обезжиренное предметное стекло круговыми движениями на площадь диаметром примерно 1 см;

• стекла подписывают: правый глаз — «Пр» и левый — «Лв»;

• высушенный мазок фиксируют в 96° этаноле в течение 5 мин., либо наносят на мазок 0,1см³ ацетона до полного испарения;

стекло с фиксированным мазком может храниться при температуре -10⁰С не более 7 сут.

4.11.2 Соскоб с роговицы

Показания к проведению исследования: воспалительные заболевания роговицы.

Необходимое оснащение:

1. Раствор анестетика.

2. Стерильные шпатели (2 шт.).

3. Предметные стекла (4 шт.).

4. Зонд-тампон в составе транспортной системы со средой.

Взятие исследуемого материала:

• материал целесообразно забирать утром, до умывания; за 6—8 часов до этого (ночь) отменяются все медикаменты и процедуры;

• вводят 1—2 капли анестетика, например, пропаракаина гидрохлорида или другого;

• при помощи стерильной лопаточки (шпателя) делают соскоб с язвы или другого образования;

• готовят мазок, нанося материал на чистые обезжиренные предметные стекла круговыми движениями на площадь диаметром примерно 1 см;

• высушенные мазки фиксируют в 96%-ном этаноле в течение 5 мин, либо наносят на мазок 0,1 см³ ацетона до полного испарения. Стекла с фиксированным мазком может храниться при температуре -10°С не более 7 сут.;

• материал для бактериологического исследования забирают с помощью зонда-тампона, который после взятия мазка помещают в пробирку с транспортной средой, например средой Эймс с углем;

• одновременно исследуют мазки и соскобы с конъюнктивы и смывы с контактных линз.

4.11.3 Смыв с контактных линз

Показания к проведению исследования: воспалительные заболевания роговицы.

Характеристики

Список файлов реферата