Диссертация (1335894), страница 6
Текст из файла (страница 6)
Неравномерный лазерный нагрев посредством импульснопериодического воздействия приводит к формированию микропор и каналовхрящевой структуры, способствующих циркуляции жидкости, содержащейпитательные вещества и сигнальные молекулы, активирующие клеточныйметаболизм» [25, 59, 98, 99].31На кафедре болезней уха, горла и носа Первого МГМУ имени И.М.Сеченова совместно с группой ученых института фотонных технологийфедеральногонаучно-исследовательскогоцентра"Кристаллографияифотоника" РАН в течение длительного времени изучалась возможностьприменения эффекта лазерного формообразования в клиническую практику [8,27, 54]. Проводились многочисленные экспериментальные исследования вусловиях in vitro (на изолированных хрящах) и in vivo (на животных) [27].Лазерная септохондрокоррекция, внедренная в клиническую практику,является воплощением идеи спроектированного моделирования формы хрящапод воздействием лазера.
Разработанная методика позволяет бескровно инеинвазивно в амбулаторных условиях восстанавливать носовое дыхание [27,54, 73, 96].Исследователи пришли к следующему выводу: «для используемойтолщины имплантатов (3 мм) и полного его прогрева наиболее оптимальнымпредставляется использование излучение волоконного лазера на эрбий-активированном стекле (длина волны излучения λ = 1,56 мкм)» [2, 25]. Изученныепараметрыоптимальноеизлученияпредставленногоколичествоэнергиивлазерапозволяютнеобходимомобъёменакапливатьткани,чтообеспечивает эффективность и значительно уменьшает продолжительностьоперативного вмешательства [27].Волоконные лазеры отличаются от полупроводниковых и твердотельныхлазеров тем, что излучение генерируется непосредственно в волокне [25, 63,72].Конец 80-х гг.
XX века является началом стремительного развитияиспользования волоконных лазеров. В этот период было изучено, чтоволоконные световоды, легированные ионами эрбия (Er+), эффективны дляволоконных усилителей сигнала при λ=1530–1560 нм [9, 72, 94].Таким образом, волоконные лазеры внедрились в практическуюмедицину. В связи с быстрым прогрессом и высокими достоинствами лазеры32этого класса заняли ведущее место среди применяемых в биофотонике иклинической практике ранее лазерных установок [94].Основнымихарактеристикамиволоконноголазеранаэрбий-активированном стекле являются практичность, экономичность и надежность.Ведущими преимуществами предложенной лазерной установки являютсянебольшиеразмерыинизкоепотреблениеэнергии[27].Отсутствиепотребности в жидкостном охлаждении, необходимости в частом проведениитехническихработ,высокаянадежностьипростотавобращении,обусловливают возможность использования данной установки в различныхмедицинских учреждениях — от амбулаторных кабинетов до научноисследовательских институтов [9, 25, 63].Прочие положительные факторы работы данной установки, к которымотносятся:простотавуправлениипараметрамиизлученияинизкаячувствительность к климатическим воздействиям, дополняют положительныеаспекты использования данного прибора [9, 27].Мощность и длина волны излучения определяют ведущие эффектылазерного воздействия на биологические ткани.
В работе Баум О.И. отражено,что «длина волны излучения Er-волоконного лазера (λ= 1,56 мкм) являетсядостаточно безопасной для глаза человека» [2]. По данным группы ученыхнаучно-исследовательскогоинститута«Кристаллографияифотоника»:«характерная глубина проникновения этого излучения в биоткань составляетпримерно 1,0 мм» [24].Отмечалась безопасность применения данного лазера при попаданиирассеянного излучения в глаз человека, так как не происходило разрушенияповерхностного слоя роговицы, а также при умеренных режимах воздействияисключено минимальное тепловое воздействие на внутренние слои органазрения [2, 24].33Кроме того, данный вид излучения, при используемых в медицинепараметрахлазерноговоздействия,непровоцируетканцерогенныеимутагенные изменения [42].По данным экспериментальных исследований in vivo, проведенныхроссийскими учеными, процесс моделирования формы ушной раковины свиньии кролика не способствует травматизации хрящевой ткани [24].
Полученнаяформа в течение всего наблюдательного периода (6 месяцев) сохраняласьнеизменной.позволилиПолученныевпервыерезультатыразработатьэкспериментальныхметодикукоррекцииисследованийдеформациичетырехугольного хряща перегородки носа под воздействием неразрушающеголазерного излучения [9, 24, 28]. Способ является универсальным и может бытьобширно применим в других областях медицины после определенноймодификации [24].По мнению следующей группы авторов «реберный хрящ являетсяперспективным материалом для аутотрансплантации при восстановлениихряща носовой перегородки и трахеи» [10, 41, 114]. Применение реберногохряща становится возможным благодаря его относительной прочности, а такжемалоинвазивному доступу извлечения с минимальной травматизацией тканей ибольшим объемом донорского материала [33, 62, 93].Применениепредставляетсяспособаактуальнымлазерногонамоделированиязаключительномхрящевойэтапетканипроведенияреконструктивно-восстановительных операций у больных с сочетаннымистенозами гортани, что послужило целью нашего исследования.34Глава 2.
МАТЕРИАЛЫ И МЕТОДЫ ЭКСПЕРИМЕНТАЛЬНОГО ИКЛИНИЧЕСКОГО ИССЛЕДОВАНИЯВданнойработепредставленырезультатыэкспериментальныхисследований на животной модели, хирургического лечения и клиническогонаблюдения больных с хроническими РПСГТ и ЛТД.В период 2014–2016 гг. проведено экспериментальное исследованиелазерного формообразования хрящевой ткани на 10-ти лабораторных кроликахпороды "шиншилла" в виварии Первого МГМУ им.
И.М. Сеченова(заведующий виварием Лузин А.В.) совместно с сотрудниками институтафотонныхтехнологийфедеральногонаучно-исследовательскогоцентра"Кристаллография и фотоника" РАН (Соболь Э.Н., Баум О.И., АлександровскаяЮ.М.).На основании проведенного эксперимента была разработана новаятехнология лечения больных стенозом гортани и трахеи на заключительномэтапе реабилитации, основанная на применении в качестве пластическогоматериала пластин реберного аутохряща, которым предварительно с помощьюлазерного воздействия придавалась форма полукольца, повторяющая формуполых органов шеи. В работе использован многолетний опыт запланированногонеинвазивного лазерного формообразования хрящевой ткани, накопленный врезультате целой серии экспериментальных и клинических исследованийколлектива авторов [28, 54, 57, 99, 100].Морфологический анализ полученного в результате экспериментаматериала проводился в лаборатории экспериментальной патоморфологии(заведующий лабораторией Шехтер А.Б.).Клинический этап исследования проводился на базе университетскойклинической больницы №1 с 2015 по 2018 гг.
в оториноларингологическихотделениях №1 и №2 клиники болезней уха, горла и носа ПМГМУим. И.М. Сеченова.35Всемпациентампроводилосьобщеклиническоеобследование,направленное на выявление сопутствующей патологии, сбор жалоб, анамнеза,изучение факторов риска, а также стандартный оториноларингологическийосмотр, фиброларинготрахеоскопия, ларингостробоскопия, спирометрия.Проанализированы результаты хирургического лечения больных схроническими сочетанными стенозами гортани и ЛТД.2.1. Дизайн экспериментального исследованияЭкспериментальная часть работы проводилась на кроликах самцахпороды "шиншилла" весом 900±50 г. Животные были размещены в решетчатыхклетках из нержавеющей стали.
Доступ к воде и пище был свободный, поилки –стеклянные с металлическим наконечником. Корм выдавался по стандартнойнорме, которая соответствовала весу животных. Для корма использовалсягранулированныйкомбикормПК-122длялабораторныхкроликов:производитель ООО "Лабораткорм" сертификат соответствия № РОСС RU. АВ1103144. ГОСТ 32897-2014. Животных взвешивали перед введением в наркоз иперед забоем.Испытуемая группа кроликов составила 10 животных, которые былиподелены на две группы: доноров (4 особи) и реципиентов (6 особей).2.2.
Модель экспериментаДляпроведенияэкспериментальноговмешательстваживотныхпереставали кормить за 12 часов перед операцией при свободном доступе кводе.Проводилась премедикация животных раствором Атропина 0,5% израсчета 0,01 мг/кг веса подкожно. С целью общего обезболивания имиорелаксациииспользовалисьвнутримышечныеинъекциирастворазолазепама гидрохлорида и раствора Рометара соответственно из расчета 0,136мл/кг веса, которые вводились внутримышечно через 30 минут послепремедикации.Выполнялась подготовка операционного поля: эпиляция шерсти вобласти грудной клетки кролика-донора, обработка кожи спиртовым растворомхлоргексидина. Скальпелем выполнялся разрез кожи кролика длиной 3 см отгрудины до X ребра с правой стороны грудной клетки.
С помощью зажима«москит» послойно производилась отсепаровка подкожной жировой клетчатки,фасций, тупо разводились мышцы грудной клетки. Выделялся хрящ X ребрасправа с надхрящницей (Рис. 1). Скальпелем вырезался фрагмент реберногохряща длиной 1,5 см. Сопоставлялись свободные края ребра, рана послойноушиваласьнитямиПролен 2,0иВикрил 2,0.Кожавобластираныобрабатывалась антибактериальным спреем «Террамицин».Далее проводилось моделирование хрящевого трансплантата. Настройкилазера были выбраны аналогично использованным для лазерной коррекцииперегородки носа.
![](https://s.studizba.com/z.php?f=/templates/si/i/noavatar.png&w=100&h=100&t=1"){kind=avatar}
