Диссертация (1151613), страница 25
Текст из файла (страница 25)
Debonne, A. Witters, B.Kamers, E. Decuypere, and V. Bruggeman // Poultry Science.- 87.-2008.- P. 362367.169. Higgins, D.A. Comparative immunology of avian species. In poultryimmunology / D.A. Higgins // Carfax Publishing Company.- Abingdon.- UK.1996.- P. 149-205.157170. Kuiper, J. W. Вiological study of natural incubation and its application toartificial incubation / J. W. Kuiper, А.
Ubbels // Proc. gth. World’s PoultryCongress.- 1951.- 105 p.171. Lammers, A. Adoptive transfer of natural antibodies to non-immunizedchickens affects subsequent antigen-specific and cellular immune responses / A.Lammers, M.E.V. Klomp, M.G.B. Nieuwland, H.F.J. Savelkoul and H.K.Parmentier // Dev. Comp. Immunol.- 2004.- 28.- P. 51-60.172.
Lilienthal, Sabrina. Changes in the protein secondary structure of hen’s eggyolk determined by Fourier transform infrared spectroscopy during the first eightdays of incubation / Sabrina Lilienthal, Astrid M. Drotleff and Waldemar Ternes //Poultry Science.- 94.- 2015.- P. 68-79.173. Mansikka, A. Chicken IgA H chains. Implications concerning the evolutionof H chain genes / A. Mansikka // J.
Immunol.- 1992.- 149.- P. 855-861.174. Marks, V. Differential diagnosis by laboratory medicine / V. Marks //Springer Verlag.- 2002.- P. 319 - 320.175. Marschall, W. Embryonic mortality and anomalous development duringincubation / W.
Marschall // In: Descases of Poultry.- London.- 1947.- 128 р.176. Mesko, D. Differential diagnosis by Laboratory medicine / D. Mesko.- Ed.Springer.- 2002.- P. 319-321.177. Molenaar, R. Effect of eggshell temperature and oxygen concentrationduring incubation on the developmental and physiological status of broilerhatchlings in the perinatal period / R.
Molenaar, I. van den Anker, R. Meijerhof, B.Kemp, and H. van den Brand // Poultry Science.- 90.- 2011.- P. 1257-1266.178. Nanto, Fumika. Effects of whole-grain paddy rice on growth performance,oxidative stress and morphological alterations of the intestine in broiler chickensexposed to acute and chronic heat stress / Fumika Nanto, Chiaki Ito, MotoiKikusato and Masaaki Toyomizu // Japan Poultry Science Association.- 52.- 2015.P.
109-118.158179. Okabe, R. Clinical evaluation of the elecsys β-CrossLaps Serum assay, newassay for degradation products I type collagen C-telopeptides / R. Okabe // ClinicalChemistry.- 2004.- vol.- 47.- P. 1410 - 1414.180. Parmentier, H.K. Different levels of natural antibodies in chickensdivergently selected for specific antibody responses.
/ H.K. Parmentier, A.Lammers, J.J. Hoekman, G. De Vries Reilingh, I.T. Zaanen and H.F Savelkoul //Dev. Comp. Immunol.- 2004.- 28.- P. 39-49.181. Patterson, R. The metabolism of serum proteins in the hen and chick andsecretion of serum proteins by the ovary of the hen / R. Patterson, J.S. Youngner,W.O. Weigle and F.J. J. Dixon // Gen. Physiol.- 1962.- 45.- P. 501-513.182.
Ratcliffe, M.J.H. Allotype suppression in the chicken. V. Abnormal isotyperatios of chronically suppressed IgM and IgG allotypes / M.J.H. Ratcliffe // Cell.Immunol.- 1984.- 83.- P. 208-214.183. Reijrink, I.A. M. Influence of prestorage incubation on embryonicdevelopment, hatchability, and chick quality / I.A. M. Reijrink, R. Meijerhof, B.Kemp, E. A. M. Graat and H. van den Brand // Poultry Science.- 88.- 2009.- P.2649–2660.184.
Romijn, C. The air space of the hen’s egg and its changes during the periodof incubation / C. Romijn, J. Roos // Journ. Physiol.- 1938.- № 94.- Р. 65.185. Shim, M.Y. Effects of incubation temperature on the bone development ofbroilers / M. Y. Shim and G. M. Pesti // Poultry Science.- 90.- 2011.- P. 18671877.186. Sies, H. Oxidative stress: from basic research to clinical application / H. Sies// Amer. J. Med.- 1991.- V. 91.- Suppl. 3C. - P. 315-385.187. Tarugi P., S., Apolipoprotein B-100 production and cholesterol easer contentin the liver of the developing chick / P.
Tarugi, S. Nicolini, L. Marchi et al. //Journal of lipid research. - 1994. - № 35.- P. 2019-2031.188. Tazawa, H. Temperature and metabolism of chick em-bryos and hatchlingsafter prolonged cooling / H. Tazawa, H. Rahn // Development of the avianembryo.- 1987.- P.105-109.159189. Tykalowski, B. Effect of methisoprinol administered in ovo on thehistological structure of the bursa of Fabricius in turkeys / B. Tykalowski, T.Stenzel, B.
Lewczuk, M. Andrzejewski, A. Koncicki // Bull. Veter. Inst. inPulawy.- 2009.- 53(3).- P. 471-476.190. Uzieblo,A.Wplyvwiekurnateknawypicichowubrijlerowkurzuch/A.Uzieblo, Z. Danczak, Zeszytynauk Tarasewicz // Acad. Roln. Szcecin.- 1984.-Vol.101.- P. 139-151.191. Van der Pol, C. W. Effect of relative humidity during incubation at a seteggshell temperature and brooding temperature posthatch on embryonic mortalityand chick quality / C. W.
van der Pol, I. A. M. van Roovert-Reijrink, C. M.Maatjens, H. van den Brand and R. Molenaar // Poultry Science.- 92.- 2013.- P.2145–2155.192. Wang, Fu-chuan. Effects of compound chinese herbal immune synergist onimmunity of egg-laying chicken / Fu-chuan Wang, Chang-ge Fang, Yu-huanZhang, Hong-bao Wang, Yi-chao Han // Acta veter. zootechn.
Sinica.- 2006.37(1).- P. 187-192.193. Wang, Guangying.Effect of cooling egg with spraying water on thehatchability of Muscovy duck eggs / Guangying Wang,Wang, Li Ang, LaiShigeng // J. FujianAgr.- Coll.- 1990.- Т. 19.- № 2.- Р. 237-240.194. Willemsen, H. Intermittent thermal manipulations of broiler embryos duringlate incubation and their immediate effect on the embryonic development andhatching process / H. Willemsen, Y. Li, E. Willems, L. Franssens, Y.
Wang, E.Decuypere and N. Everaert // Poultry Science.- 90.- 2011.- P. 1302–1312.195. Zakarial, H. Effect of ascorbic acid and cooling during egg incubation onhatchability, culling, mortality, and the body weights of broiler chickens / H.Zakarial and M. A. Al-Anezi // Poultry Science.- 75.- 1996.- P. 1204-1209.196. Zulkifli, I. Gibt es eine positive Seite von Stress? / I. Zul-kifli, P.
Siegel //World's Poultry science journal.- 1995.- №1.- 95 р.160ПРИЛОЖЕНИЯПриложение АХарактеристика кросса «Шейвер 2000»«Шейвер2000»-четырехлинейныйкросс,бело-скорлупный,аутосексный.Отцовская родительская форма - быстро оперяемая. Материнскаяродительская форма - медленно оперяемая. Цыплята финального гибрида всуточном возрасте аутосексны по скорости роста пера.Отличительными особенностями этой птицы являются:—высокая конверсия корма: 2,02 кг/кг;—длительныйиустойчивыйпикяйцекладкидо80недель(продолжительность яйценоскости свыше 90 % от 30 до 40 недель,продолжительность яйценоскости свыше 95 % от 15 до 25 недель);— оптимальный размер яиц;— гладкая, белая и очень прочная в течение всего периода яйцекладкискорлупа;— плотный белок, не разжижающийся при длительном хранении;—В-локусгистосовместимостиобеспечиваетповышеннуюрезистентность птицы к неопластическим болезням, в т.ч.
болезнь Марека,лейкоз птиц, ретикулоэндотелиоз;— уникальным свойством кросса является способность накапливатьмаксимальное количество Омега-3 жирных кислот в яйце при введении врацион семени льна;— более высокое содержание сухих веществ в яйце: по сравнению симеющимися аналогами яичной птицы на российском рынке этот показательвыше на 0,3-0,5 %, что позволяет обеспечить дополнительную прибыль припереработке яйца на яичный порошок и другие яйцепродукты.При полноценном кормлении поголовье несушек несется на уровне 90 %до возраста 58-60 недель.
Применяется рацион для несушек с содержанием19 % протеина до 42-45 недель. Позже уровень сырого протеина можно161постепенно снизить на 0,5 %. Важно поддерживать оптимальный уровеньобменной энергии - начинать с 2900 ккал на кг, а заканчивать с 2830 ккал.При поддержании уровня кальция в рационе, начиная с 4,0-4,1 % и, доводяего постепенно до 4,5 %, производители получают пищевое яйцо соскорлупой отличного качества. При соблюдении вышеупомянутых нормнесушки этого кросса на голову потребляют не более 100 г корма в сутки присоблюдении оптимальных параметров микроклимата. По некоторым данным,при высокой продуктивности несушки «Шейвер 2000» потребляют на 6-10 гкорма меньше, чем другие несушки других белоскорлупных яичных кроссов.В России несушки этого кросса получили широкое распространение наптицефабриках южных регионов.
Живая масса кур в 23-недельном возрастесоставила 1850 г, а в 52-недельном возрасте 1950 г. Технологический брак яицне превышал 1 %.Таблица 1 - Зоотехнические показатели кросса «Шейвер 2000»Период выращивания 0-17недельСохранность, %Живая масса в 18 недель, кгПотребление корма (0-17 недель), кгПериод продуктивности, 18-80 недельЯйценоскость на начальную несушку, шт.Возраст при 50 % продуктивности, недельПик продуктивности, %Средняя масса яиц, гЕдиницы ХауЯйцемасса на начальную несушку, кгПотребление корма в среднем в день, гКонверсия корма, кг/кгЖивая масса в возрасте 80 недель, кгСохранность (18-80 недель), %16297-981,35,41342-35221-2296-9860,08621,31052,021,7894,5-96Приложение БТаблица 2 - Режим инкубации яицсутки инкубации температура,ºС температура,ºС на вл.
![](https://s.studizba.com/z.php?f=/templates/si/i/noavatar.png&w=100&h=100&t=1"){kind=avatar}
