Диссертация (1151316), страница 34
Текст из файла (страница 34)
2.93, 2.94).КМЗРис. 2.93 Результаты иммуногистохимического исследования клеточных структурмозга взрослых половозрелых особей солнечного окуня при хроническом воздействиимазута (МЗ) по сравнению с препаратами мозга контрольных особей (К); об. 20, ок.10217КPbРис. 2.94 Результаты иммуногистохимического исследования клеточных структурмозга взрослых половозрелых особей солнечного окуня при хроническом воздействииионов свинца (Pb) по сравнению с препаратами мозга контрольных особей (К); об. 20,ок.10Полученныеданныеполностьюсогласуютсясрезультатамииммуноблотинга с использованием этих же проб. На микрофотографияхотчетливо видны слои нейронов, в которых отсутствует окрашивание наГФКБ. В образцах гистологических срезов мозга взрослых половозрелыхособей карася экспериментальных групп, также наблюдается корреляционнаязависимость между присутствующими участками астроглиоза и результатамииммуноблотинга.
Наиболее обширные зоны астроглиоза выявлены на срезахмозга особей карася, обитающих в условиях хронического воздействияповышенных концентраций ионов свинца и хлорбензола (рис. 2.95, 2.96).КPbРис. 2.95 Результаты иммуногистохимического исследования клеточных структурмозга взрослых половозрелых особей карася при хроническом воздействии ионов свинца(Pb) по сравнению с препаратами мозга контрольных особей (К); об. 20, ок.10.218КХБРис. 2.96 Результаты иммуногистохимического исследования клеточных структурмозга взрослых половозрелых особей карася при хроническом воздействии хлорбензола(ХБ) по сравнению с препаратами мозга контрольных особей (К); об.
20, ок.10В препаратах мозга взрослых половозрелых особей карася прихроническом воздействии полициклических ароматических гидрокарбонов иионов алюминия наблюдается менее значительная частота скопления клетокнейроглии, по площади и интенсивности окрашивания соответствующаяумеренному астроглиозу (рис. 2.97, 2.98).КПАГРис. 2.97 Результаты иммуногистохимического исследования клеточных структурмозга взрослых половозрелых особей карася при хроническом воздействииполициклических ароматических гидрокарбонов (ПАГ) по сравнению с препаратамимозга контрольных особей (К); об.
20, ок.10219AlКРис. 2.98 Результаты иммуногистохимического исследования клеточных структурмозга взрослых половозрелых особей карася при хроническом воздействии алюминия (Al)по сравнению с препаратами мозга контрольных особей (К); об. 20, ок.10ИммуногистохимическийастроглиальнойреактивациианализособейвлияниякарасяПАГразногонаразвитиевозрастатакжеподтверждает, что участки интенсивного, умеренного и незначительногоглиоза на окрашенных фиксированных срезах головного мозга рыбполностью соответствуют уровню содержания ГФКБ (рис. 2.99).Необходимо отметить, что локальные очаги увеличения числа клетокастроцитов выявлены в мозге особей всех экспериментальных групп рыб,обитающих в условиях воздействия загрязнителей различной химическойприроды (как ионов металлов, так и органических ксенобиотиков).Характерной особенностью таких участковповышенного астроглиозаявляется присутствие гипертрофированных астроцитов с увеличенной сомойи площадью отростков.
Выявленные у разных биологических видов рыбтипичные для астроглиоза нервной ткани изменения позволяют утверждать,что действие ионов металлов и органических ксенобиотиков «запускает»универсальные защитные механизмы, которые реализуются благодаряширокомукругуастроцитовсинтезироватьфизиологическихиутилизироватьпродуктысигнальныемолекулыэнергетическими субстратами [545, 546].биохимическихвозможностейметаболизматоксикантов,иобеспечиватьнейроны220КПАГсрезы головного мозга особей карася в возрасте 0,5 годаКПАГсрезы головного мозга особей карася в возрасте 2-3 годаКПАГсрезы головного мозга особей карася в возрасте более 5 летРис. 2.99 Результаты иммуногистохимического исследования клеточных структурмозга карася при хроническом воздействии полициклических ароматическихгидрокарбонов (ПАГ) по сравнению с препаратами мозга контрольных особей (К); об. 20,ок.10Изображения тканей головного мозга особей карася экспериментальныхгрупп на рис.
90 имеют меньшее увеличение, позволяющее отчетливоувидеть расположение достаточно обширных по площади и интенсивности221зон астроглиоза. В то время как в контрольных образцах иммунохимическоеокрашивание ГФКБ распределено равномерно по всей площади среза.Представленные результаты полностью согласуются с данными,полученными ранее на экспериментальных моделях с использованиемназемных позвоночных при действии различных повреждающих факторов итоксикантов [547].Таким образом, интенсивность развития астроглиальной реактивации вответна действиеионовметалловиорганическихксенобиотиковподтверждается как на молекулярном (экспрессия ГФКБ), так и на клеточном(пролиферация астроцитов) уровнях.2.3.5 Эффекты иммуномодулятора при формировании зрелойиммунной системы поросят в условиях влияния промышленныхполлютантовВпоследниедесятилетияпрактикаведенияпродуктивногоживотноводства во многих странах показала, что, несмотря на интенсивноеприменение вакцинаций, биологических и химиотерапевтических средств,применяемых для терапии и профилактики различных заболеваний, весьмаактуальной остается проблема сохранения молодняка [548].
Результатымногочисленных исследований показывают, что экологическая ситуация вбольшинстве развитых стран остается напряженной. Действие огромногочисла ксенобиотиков и промышленных токсикантов отражается на состоянииорганизмов разных популяций животных, в том числе и продуктивных [549,550].Под действием ксенобиотиков у возбудителей заболеваний, а также употенциально патогенных микроорганизмов изменяются свойства, создаютсяусловия для активации жизнедеятельности новых патогенов и появленияинфекционных заболеваний.
Промышленное загрязнение внешней средыведет к дефициту экологически чистых кормов и условий содержанияпродуктивных животных [551]. Результаты микологических исследованийподтверждают присутствие в кормах токсинов биологической природы,222снижающих устойчивость организма и повышающих восприимчивость кинфекционным агентам [552].
Повсеместное использование антисептическихсредств и антибиотиков в значительной мере ведет к угнетению большинствазвеньев иммунной системы. Особенно чувствительными являются клеткикостного мозга – предшественники В-лимфоцитов и тимические клеткипредшественники Т-лимфоцитов [553].Важнымкритериемжизнеспособностиживотныхявляетсяэффективность механизмов общей неспецифической резистентности ииммунобиологической реактивности [554, 555]. Именно эти процессыобеспечивают адаптационные возможности организма к воздействиюбиологических (микробы, вирусы и др.) и абиотических (ксенобиотики)факторов, которые особенно в последние годы интенсивно накапливаются вовнешней среде. В современном животноводстве большую актуальностьприобретаетоценкасостоянияиммуннойсистемыиподдержаниеэффективного функционирования защитных реакций [556].
Одним изнаиболее критичных стадий онтогенеза свиней является раннее неонатальноеразвитие, включающий отъем поросят. Этот период характеризуется высокойчувствительностьюкпатогенам,особенностямиматеринскогоколострального иммунитета и началом формирования зрелой иммуннойсистемы организма. Модуляция клеточных процессов иммунной защитывыступает важным условием повышения эффективности проводимыхпрофилактическихилечебныхмероприятий,способствующихинтенсификации производства и улучшения качества продукции [557].Исследования были проведены на свиноматках помеси пород крупнойбелой и ландрас и полученных от них поросятах породы 1/2 пьетрен, 1/4большая белая и 1/4 ландрас.
По принципу пар аналогов были сформированыконтрольная и экспериментальная группы свиноматок, по 10 голов в каждой.Животным экспериментальной группы на 60, 75 и 90 сутки супоросностивнутримышечно вводили ферментативный гидролизат клеточной стенкиLactobacillusDelbrueckii(препарат"Иммунолак")вдозе50мкг223действующего вещества на 1 кг массы животного.
Свиноматкам контрольнойгруппы инъекции препаратом "Иммунолак", заменяли на инъекции 0,9%раствором NaCl. Исследования проводили по стандартным методикам.Определяли содержание отдельных фракций IgA, IgM, IgG, бактерициднуюактивность (в молозиве свиноматок), лизоцимную активность (в сывороткекрови свиноматок), количество лейкоцитов, лейкоцитарную формулу,фагоцитарнуюактивностьлейкоцитов,фагоцитарноечисло,индексзавершенности фагоцитоза (в крови поросят).Установлено, что максимальное количество гуморальных факторовнеспецифическойзащитыприсутствуетвмолозиве свиноматоккакэкспериментальной, так и контрольной групп животных до опороса.
Послеопороса показатели активности лизоцима и бактерицидной активности имелиразличную динамику. В частности, резкое снижение активности лизоцима втечение первых 12 часов сопровождалось последующим экспоненциальнымзатуханием к 36 часам лактации. В то же время, медленное снижениебактерицидной активности молозива в первые часы после опороса,сменялось резким спадом этих показателей в период от 6 до 36 часовлактации. На фоне общего снижения концентрации иммуноглобулинов длямолозива свиноматок в первые 36 часов после опороса характернозначительное перераспределение относительного содержания отдельныхклассов Ig за счет постепенного увеличения IgG и уменьшения IgА.Так рост доли Ig G на 8,3% сопровождается реципрокным уменьшениемдоли Ig А на 17,1% при незначительной вариабельности доли IgМ. Такаядинамика содержания Ig наблюдается в молозиве свиноматок как опытной,так и контрольной групп.
Особенностью молозива супоросных свиноматок,получавшихинъекциипрепаратапоказателейнеспецифической"Иммунолак",защиты,очемявляетсяповышениесвидетельствуетростконцентрации всех трех классов иммуноглобулинов (особенно в первые 6часов секреции), а также показателей бактерицидной и лизоцимнойактивности.224Анализ показателей содержания основных классов иммуноглобулинов вмолозиве до опороса показал, что наибольшую группу антител составляютIgG – 39,69 мг/мл или 54% от общего количества (рис. 2.100). После опороса,в первые 36 часов секреции, концентрация IgG в молозиве свиноматокзначительно снижается (более чем в 10 раз). Постепенное снижениеконцентрации IgG на протяжении первых 6 часов (в 1,6 раза) сменяетсястремительным уменьшением количества иммуноглобулинов этого класса втечение последующих 18 часов (в 3,6 и в 8,7 раза на 12-й и 24-й чассоответственно).По содержанию в молозиве иммуноглобулины класса A уступаютиммуноглобулинам класса G.
![](https://s.studizba.com/z.php?f=/templates/si/i/noavatar.png&w=100&h=100&t=1"){kind=avatar}
