Главная » Учебные материалы » Английский язык » Рефераты » МГУ им. Ломоносова » Аспирантура и докторантура » Реферат по английскому языку "Методы определения катехоламинов"
Для студентов МГУ им. Ломоносова по предмету Английский языкРеферат по английскому языку "Методы определения катехоламинов"Реферат по английскому языку "Методы определения катехоламинов"
2021-09-15СтудИзба

Реферат: Реферат по английскому языку "Методы определения катехоламинов"

Описание

Review: "Methods for the determination of catecholamines"

Contents:

1. Electrochemical methods …………………………………….…………………………..3
2. Spectroscopic methods ……………………………………………..…………………….4
2.1. The determination of catecholamines and their metabolites based on their own fluorescence……………………………………………….……………………..…...5
2.2. The determination of catecholamines and their metabolites on the basis of fluorescence of their derivatives...……………………………………………………………….7
2.3. Chemiluminescent determination of catecholamines and their metabolites…..……….8
3. Chromatographic methods…………………………………………………..……….9
4. Electrophoretic methods …………………………………………………..……….11
5. References…………………………………………………..……………………..13

The most common methods for determination of catecholamines are electrochemical, immunological, HPLC and capillary electrophoresis methods with different types of detection. The share of spectroscopic methods is significantly lower. In this paper we will pay attention to the most frequent methods for determination of catecholamines and their metabolites.

References

1. Perry M., Li Q., Kennedy R. T. Review of recent advances in analytical techniques for the determination of neurotransmitters. // Anal. Chim. Acta. 2009. V. 653. P. 1–22.
2. Kachoosangi R. T., Compton R. G. A simple electroanalytical methodology for the simultaneous determination of dopamine, serotonin and ascorbic acid using an unmodified edge plane pyrolytic graphite electrode. // Anal. Bioanal. Chem. 2007. V. 387. P. 2793.
3. Rodriguez M. C., Rubianes M. D., Rivas G. A. Highly Selective Determination of Dopamine in the Presence of Ascorbic Acid and Serotonin at Glassy Carbon Electrodes Modified with Carbon Nanotubes Dispersed in Polyethylenimine. // J. Nanosci. Nanotechnol. 2008. V. 8. № 11. P. 6003–6009.
4. Selvaraju T., Ramaraj R. Electrochemically deposited nanostructured platinum on Nafion coated electrode for sensor applications. // J. Electroanal. Chem. 2005. V. 585. P. 290.
5. Li Y. X., Huang X., Chen Y. L., Wang L., Lin X. Q. Simultaneous determination of dopamine and serotonin by use of covalent modification of 5-hydroxytryptophan on glassy carbon electrode. // Microchim. Acta. 2009. V. 164. P. 107–112.
6. Yogeswaran U., Chen S. M. Multi-walled carbon nanotubes with poly(methylene blue) composite film for the enhancement and separation of electroanalytical responses of catecholamine and ascorbic acid. // Sens. Actuat. B.-Chem. 2008. V. 130. P. 739–749.
7. Hu W. N., Sun D. M., Ma W. Simultaneous Electrochemical Determination of Dopamine and Epinephrine with a Silver-Doped Poly(L-Glutamic Acid) Modified Electrode. // Chem. Anal. 2008. V. 53. P. 703.
8. Kang W. J., Niu L. M., Ma L. 2,3-Dimercaptosuccinic acid self-assembled gold electrode for the simultaneous determination of epinephrine and dopamine. // Chin. Chem. Lett. 2012. V. 20. P. 221.
9. Strand A. M., Venton B. J. Flame Etching Enhances the Sensitivity of Carbon-Fiber Microelectrodes. // Anal. Chem. 2008. V. 80. P. 3708.
10. Anastassiou C. A., Patel B. A., Arundell M., Yeoman M. S., Parker K. H., O’Hare D. Subsecond Voltammetric Separation between Dopamine and Serotonin in the Presence of Ascorbate. // Anal. Chem. 2006. V. 78. P. 6990.
11. Jiang G., Gu X., Jiang G., Chen T., Zhan W., Tian S. Application of a mercapto-terminated binuclear Cu(II) complexmodified Au electrode to improve the sensitivity and selectivity for dopamine detection. // Sens. Actuat. B. 2015. V. 209. P. 122–130.
12. Mazloum-Ardakani M., Khoshroo A. High performance electrochemical sensor based on fullerene-functionalized carbon nanotubes/ionic liquid: Determination of some catecholamines. // Electrochem. Comm. 2014. V. 42. P. 9–12.
13. Elhag S., Ibupoto Z. H., Nur O., Willander M. Incorporating β-Cyclodextrin with ZnO Nanorods: A Potentiometric Strategy for Selectivity and Detection of Dopamine. // Sensors. 2014. V. 14. P. 1654–1664.
14. Cakal C., Ferrance J. P., Landers J. P., Caglar P. Microchip extraction of catecholamines using a boronic acid functional affinity monolith. // Anal. Chim. Acta. 2011. V. 690. P. 94–100.
15. Altun M., Cakal C., Caglar P. The development of methacrylic acid based monolithic discs used inthe microfluidic chips for in the determination of catecholamines. // Sens. Actuat. B. 2015. V. 208. P. 164–172.
16. Zhang X., Sweedler J. Ultraviolet native fluorescence detection in capillary electrophoresis using a metal vapor NeCu laser. // An. Chem. 2001. V. 73. № 22. P. 5620–5624.
17. Hsieh M., Hsu C., Tseng W. Chang H. Amplification of small analytes in polymer solution by capillary electrophoresis. // Electrophoresis. 2002. V. 23. № 11. P. 1633–1641.
18. Hsieh M., Chang H. Discontinuous electrolyte systems for improved detection of biologically active amines and acids by capillary electrophoresis with laser-induced native fluorescence detection. // Electrophoresis. 2005. V. 26. № 1. P. 187–195.
19. Kuo I. T., Huang Y. F., Chang H. T. Silica nanoparticles for separation of biologically active amines by capillary electrophoresis with laser-induced native fluorescence detection. // Electrophoresis. 2005. V. 26. № 13. P. 2643–2651.
20. Wood A. T., Hall M. R. Reversed-phase high-performance liquid chromatography of catecholamines and indoleamines using a simple gradient solvent system and native fluorescence detection. // J. Chromatog. B: Biomed. Sci. and Appl. 2000. V. 744. № 1. P. 221–225.
21. Wang H. Y., Sun Y., Tang B. Study on fluorescence property of dopamine and determination of dopamine by fluorimetry. // Talanta. 2002. V. 57. № 5. P. 899–907.
22. Pagel P., Blome J., Wolf H. U. High-performance liquid chromatographic separation and measurement of various biogenic compounds possibly involved in the pathomechanism of Parkinson's disease. // J. Chromatogr. B: Biomed. Sci. and Appl. 2000. V. 746. № 2, P. 297–304.
23. Balaji J., Reddy C.S, Kaushalya S.K., Maiti S. Microfluorometric detection of catecholamines with multiphoton-excited fluorescence. // Appl. Optics. 2004. V. 43. № 12. P. 2412–2417.
24. Aoyama N., Tsunoda M., Imai K. Improved assay for catechol-O-methyltransferase activity utilizing norepinephrine as an enzymatic substrate and reversed-phase high-performance liquid chromatography with fluorescence detection. // J. Chromatog. A 2005. V. 1074. № 1 – 2. P. 47–51.
25. Diao P., Yuan H., Huo F., Chen L., Xiao D., Paau M. C., Choi M. M. F. A simple and sensitive CE method for the simultaneous determination of catecholamines in urine with in-column optical fiber light-emitting diode-induced fluorescence detection. // Talanta. 2011. V. 85. P. 1279–1284.
26. De Benedetto G. E., Fico D., Pennetta A., Malitesta C., Nicolardi G., Lofrumento D. D., De Nuccio F., La Pesa V. A rapid and simple method for the determination of 3,4-dihydroxyphenylacetic acid, norepinephrine, dopamine, and serotonin in mouse brain homogenate by HPLC with fluorimetric detection. // J. Pharm. Biomed. Anal. 2014. V. 98. P. 266–270.
27. Muzzi, C. Bertocci E., Terzuoli L., Porcelli B., Ciari I., Pagani R., Guerranti R. Simultaneous determination of serum concentrations of levodopa, dopamine, 3-O-methyldopa and a-methyldopa by HPLC. // Biomed. Pharm. 2008. V. 62. P. 253–258.
28. Lin V. S. Y., Lai C. Y., Huang J. G., Song S.A., Xu S. Molecular recognition inside of multifunctionalized mesoporous silicas: Toward selective fluorescence detection of dopamine and glucosamine. // J. Am. Chem. Soc. 2001. V. 123. № 46. P. 11510–11511.
29. Tsunoda M. Recent advances in methods for the analysis of catecholamines and their metabolites. // Anal. Bioanal. Chem. 2006. V. 386. № 3. P. 506–514.
30. Nohta H., Watanabe T., Nagaoka H., Ohkura Y. Assay for Peroxidase Using 1,2-Diarylethylenediamines and Catechol Compounds as Fluorogenic Substrates. // Anal. Sci. 1991. V. 7. № 3. P. 437–441.
31. Siméon N., Myers R., Bayle C., Nertz M., Stewart J. K., Couderc F. Some applications of near-ultraviolet laser-induced fluorescence detection in nanomolar- and subnanomolar-range high-performance liquid chromatography or micro-high-performance liquid chromatography. // J. Chromatogr. A. 2001. V. 913. № 1 – 2. P. 253–259.
32. Kehr J., Yoshitake T., Wang F.H., Wynick D., Holmberg K., Lendahl U., Bartfai T., Yamaguchi M., Hokfelt T., Ogren S. O. Microdialysis in freely moving mice: determination of acetylcholine, serotonin and noradrenaline release in galanin transgenic mice. // J. Neurosci. Methods. 2001. V. 109. № 1. P. 71–80.
33. Seto D., Maki T., Soh N., Nakano K., Ishimatsu R., Imato T. A simple and selective fluorometric assay for dopamine using a calcein blue–Fe2+ complex fluorophore. // Talanta. 2012. V. 94. P. 36–43.
34. Kamruzzamana M., Alama AlM., Lee S. H., Kim Y. H., Kim S. H. A terbium-sensitized spectrofluorimetric method for determination of catecholamines in a serum sample with micelle medium. // Luminescence. 2012. V. 27. № 1. P. 84–90.
35. Huang H. M., Lin C. H. Methanol plug assisted sweeping-micellar electrokinetic chromatography for the determination of dopamine in urine by violet light emitting diode-induced fluorescence detection. // J. Chromatogr. B. 2005. V. 816. № 1 – 2. P. 113–119.
36. Wang H., Li J., Liu X., Yang T. X., Zhang H. S. N-hydroxysuccinimidyl fluorescein-O-acetate as a fluorescent derivatizing reagent for catecholamines in liquid chromatography. // Anal. Biochem. 2000. V. 281. № 1. P. 15–20.
37. Wang H. Y., Hui Q. S., Xu L. X., Jiang J. G., Sun Y. Fluorimetric determination of dopamine in pharmaceutical products and urine using ethylenediamine as the fluorigenic reagent. // Anal. Chim. Acta. 2003. V. 497. № 1 – 2. P. 93–99.
38. Fujino K., Yoshitake T., Kehr J., Nohta H., Yamaguchi M. Simultaneous determination of 5-hydroxyindoles and catechols by high-performance liquid chromatography with fluorescence detection following derivatization with benzylamine and 1,2-diphenylethylenediamine. // J. Chromatogr. A. 2003. V. 1012. № 2. P. 169–177.
39. Yoshitake T., Yoshitake S., Fujino K., Nohta H., Yamaguchi M., Kehr J. High-sensitive liquid chromatographic method for determination of neuronal release of serotonin, noradrenaline and dopamine monitored by microdialysis in the rat prefrontal cortex. // J. Neurosci. Methods. 2004. V. 140. № 1 – 2.P. 163–168.
40. Yoshitake T., Kehr J., Yoshitake S., Fujino K., Nohta H., Yamaguchi M. Determination of serotonin, noradrenaline, dopamine and their metabolites in rat brain extracts and microdialysis samples by column liquid chromatography with fluorescence detection following derivatization with benzylamine and 1,2-diphenylethylenediamine. // J. Chromatogr. B. 2004. V. 807. № 2. P. 177–183.
41. Yoshitake T., Fujino K., Kehr J., Ishida J., Nohta H., Yamaguchi M. Simultaneous determination of norepinephrine, serotonin, and 5-hydroxyindole-3-acetic acid in microdialysis samples from rat brain by microbore column liquid chromatography with fluorescence detection following derivatization with benzylamine. // Anal. Biochem. 2003. V. 312. № 2. P. 125–133.
42. Kundu S., Ghosh S. K., Mandal M., Pal A., Pal T. Fluorimetric determination of dopamine via its derivatization with 1,2-phenylenediamine. // J. Indian. Chem. Soc. 2004. V. 81. № 10. P. 868–873.
43. Tsunoda M., Takezawa K., Masuda M., Imai K. Rat liver and kidney catechol-O-methyltransferase activity measured by high-performance liquid chromatography with fluorescence detection. // Biomed. Chromatogr. 2002. V. 16. № 8. P. 536–541.
44. Tsunoda M., Mitsuhashi K., Masuda M., Imai K. Simultaneous determination of 3,4-dihydroxyphenylacetic acid and homovanillic acid using high performance liquid chromatography-fluorescence detection and application to rat kidney microdialysate. // Anal. Biochem. 2002. V. 307. № 1. P. 153–158.
45. Hirano Y., Tsunoda M., Funatsu T., Imai K. Rapid assay for catechol-O-methyltransferase activity by high-performance liquid chromatography-fluorescence detection. // J. Chromatogr. B. 2005. V. 819. № 1. 41–46.
46. Tsunoda M., Imai K. An assay for determination of rat adrenal catechol-O-methyltransferase activity: Comparison of spontaneously hypertensive rats and Wistar-Kyoto rats. // Anal. Bioanal. Chem. 2004. V. 380. № 7 – 8. P. 887–890.
47. Masuda M., Tsunoda M., Imai K. High-performance liquid chromatography-fluorescent assay of catechol-O-methyltransferase activity in rat brain. // Anal. Bioanal. Chem. 2003. V. 376. № 7. P. 1069–1073.
48. Fotopoulou M. A., Ioannou P. C. Post-column terbium complexation and sensitized fluorescence detection for the determination of norepinephrine, epinephrine and dopamine using high-performance liquid chromatography. // Anal. Chim. Acta. 2002. V. 462. № 2. P. 179–185.
49. Веселова И. А., Шеховцова Т. Н., Родионов П. В. Заявка на патент РФ № 2012155430. Способ получения флуоресцирующих производных катехоламинов и их метаболитов методом дериватизации. Дата подачи: 20.12.2012.
50. Fiorentino D., Gallone A., Fiocco D., Palazzo G., Mallardi A. Mushroom tyrosinase in polyelectrolyte multilayers as an optical biosensor for o-diphenols. // Biosens. Bioelectron. 2010. V. 25. P. 2033–2037.
51. Nalewajko E., Wiszowata A., Kojło A. Determination of catecholamines by flow-injection analysis and high-performance liquid chromatography with chemiluminescence detection. // J. Pharm. Biomed. Anal. 2007. V. 43. P. 1673–1681.
52. Wang C. Q., Wang H., Liu Y. M. Capillary electrophoresis with direct chemiluminescence detection for the analysis of catecholamines in human urine. // Chin. Chem. Lett. 2007. V. 18. P. 452–454.
53. Xu X., Zhang H., Shi H., Ma C., Cong B., Kang W. Determination of three major catecholamines in human urine by capillary zone electrophoresis with chemiluminescence detection. // Anal. Biochem. 2012. V. 427. P. 10–17.
54. Wu H. W., Chen M. L., Shou D., Zhu Y. Determination of catecholamines by ion chromatography coupled to acidic potassium permanganate chemiluminescence detection. // Chinese Chemical Letters. 2012. V. 23. P. 839–842.
55. Knight A. W. A review of recent trends in analytical applications of electrogenerated chemiluminescence. // Trends Anal. Chem. 1999. V. 18. № 1. P. 47–62.
56. Fähnrich K. A., Pravda M., Guilbault G. G. Recent applications of electrogenerated chemiluminescence in chemical analysis. // Talanta. 2001. V. 54. № 4. P. 531–559.
57. Takezawa K., Tsunoda M., Watanabe N., Imai K. An Automatic Analyzer for Catecholamines and Their 3-O-Methyl Metabolites Using a Micro Coulometric Flow Cell as a Postcolumn Reactor for Fluorogenic Reaction. // Anal. Chem. 2000. V. 72. № 17. P. 4009–4014.
58. Tsunoda M., Takezawa K., Santa T., Imai K. Simultaneous Automatic Determination of Catecholamines and Their 3-O-Methyl Metabolites in Rat Plasma by High-Performance Liquid Chromatography Using Peroxyoxalate Chemiluminescence Reaction. // Anal. Biochem. 1999. V. 269. № 2. P. 386–392.
59. Tsunoda M., Takezawa K., Yanagisawa T., Kato M., Imai K. Determination of catecholamines and their 3-O-methyl metabolites in mouse plasma. // Biomed. Chromatogr. 2001. V. 15. № 1. P. 41–44.
60. Zheng X. W., Guo Z. H., Zhang Z. J. Flow-injection electrogenerated chemiluminescence determination of epinephrine using luminol. // Anal. Chim. Acta. 2001. V. 441. № 1. P. 81 – 86.
61. Su Y. Y., Wang J. A., Chen G. N. Determination of epinephrine based on its enhancement for electrochemiluminescence of lucigenin. // Talanta. 2005. V. 65. № 2. P. 531–536.
62. Zhu L. D., Li Y. X., Zhu G. Y. Flow injection determination of dopamine based on inhibited electrochemiluminescence of luminol. // Anal. Lett. 2002. V. 35. № 2. P. 2527–2537.
63. Li F., Pang Y. Q., Lin X. Q., Cui H. Determination of adrenaline by using inhibited Ru(bpy)32+ electrochemiluminescence. // Anal. Chim. Acta. 2002. V. 47. № 2. P. 187–194.
64. Li F., Pang Y. Q., Lin X. Q., Cui H. Determination of noradrenaline and dopamine in pharmaceutical injection samples by inhibition flow injection electrochemiluminescence of ruthenium complexes // Talanta. 2003. V. 59. № 3. P. 627–636.
65. Kang J. Z., Yin X. B., Yang X. R., Wang E. K. Electrochemiluminescence quenching as an indirect method for detection of dopamine and epinephrine with capillary electrophoresis. // Electrophoresis. 2005. V. 26. № 9. P. 1732–1736.
66. Nalewajko E., Ramirez R. B., Kojlo A. Determination of dopamine by flow-injection analysis coupled with luminol-hexacyanoferrate (III) chemiluminescence detection. // J. Pharm. Biomed. Anal. 2004. V. 36. № 1. P. 219–223.
67. Wang S. H., Du L. Y., Wang L. Y., Zhuang H. S. N-Bromosuccinimide-Fluorescein Based Sensitive Flow-Injection Chemiluminescence Determination of Phenformin. // Anal. Sci. 2004. V. 20. № 2. P. 315–317.
68. Hu Y., Li X., Pang Z. Indirect chemiluminescence detection for capillary zone electrophoresis of monoamines and catechol using luminol-K3[Fe(CN)6] system. // J. Chromatogr. A. 2005. V. 1091. № 1 – 2. P. 194–198.
69. Sun Y. Y., Tang Y. H., Zheng X. H., Yao H., Xu Z. Determination of Catecholamines by Flow Injection Chemiluminescence Method Based on Their Restraining Effects on the Luminol-Potassium Chlorate System. // Anal. Lett. 2004. V. 37. № 12. P. 2445–2458.
70. Li B., Zhang Z., Jin Y. Plant tissue-based chemiluminescence flow biosensor for determination of unbound dopamine in rabbit blood with on-line microdialysis sampling. // Biosens. Bioelectron. 2002. V. 17. № 6 – 7. P. 585–589.
71. Wang H., Feng X. G., Zhang M., Zhao H. Determination of Dopamine in Injections and Urine by an Enzyme-catalyzed Fluorescence Quenching Method.. // Anal. Sci. 2007. V. 23. № 11. P. 1297–1300.
72. Zhou G. J., Zhang G. F., Chen H. Y. Development of integrated chemiluminescence flow sensor for the determination of adrenaline and isoprenaline. // Anal. Chim. Acta. 2002. V. 463. № 2. P. 257–263.
73. Du J. X., Shen L. H., Lu J. R. Flow injection chemiluminescence determination of epinephrine using epinephrine-imprinted polymer as recognition material. // Anal. Chim. Acta. 2003. V. 489. № 2. P. 183–189.
74. Liu H., Zhang L., Zhou J., Hao Y., He P., Fang Y. Flow injection chemiluminescence determination of dobutamine hydrochloride injection using luminol–ferricyanide/ferrocyanide system. // Anal. Chim. Acta. 2005. V. 541. № 1 – 2. P. 125–129.
75. Yakabe T., Yoshida H., Nohta H., Yamaguchi M. HPLC determination of catecholamines based on precolumn derivatization with 6-aminomethylphthalhydrazide followed by chemiluminescence detection. // Anal. Sci. 2002. V. 18. № 12. P. 1375–1378.
76. Adcock J. L., Barnett N. W., Costin J. W., Francis P. S., Lewis S. W. Determination of selected neurotransmitter metabolites using monolithic column chromatography coupled with chemiluminescence detection. // Talanta. 2005. V. 67. № 3. 585–589.
77. Su R. G., Lin J. M., Qu F., Chen Z. F., Gao Y. H., Yamada M. Capillary electrophoresis microchip coupled with on-line chemiluminescence detection. // Anal. Chim. Acta. 2004. № 1. V. 508. P. 11–15.
78. Lee M., Oh S. Y., Pathak T. S., Paeng I. R., Cho B.-Y., Paeng K.-J. Selective solid-phase extraction of catecholamines by the chemically modified polymeric adsorbents with crown ether. // J. Chromatogr. A. 2007. V. 1160. P. 340–344.
79. Durstewitz D., Kelc M., Gunturkun O. A neurocomputational theory of the dopaminergic modulation of working memory functions. // J. Neurosci. 1999. V. 19. № 7. P. 2807.
80. Cannazza G., Di Stefano A., Mosciatti B., Braghiroli D., Baraldia M., Pinnen F., Sozio P., Benatti C., Parenti C. Detection of levodopa, dopamine and its metabolites in rat striatum dialysates following peripheral administration of l-DOPA prodrugs by mean of HPLC–EC. // J. Pharm. Biomed. Anal. 2005. V. 36. P. 1079–1084.
81. Dunand M., Gubian D., Stauffer M., Abid K., Grouzmann E. High-Throughput and Sensitive Quantitation of Plasma Catecholamines by Ultraperformance Liquid Chromatography−Tandem Mass Spectrometry Using a Solid Phase Microwell Extraction Plate. // Anal. Chem. 2013. V. 85. P. 3539−3544.
82. Gu Q., Shi X., Yin P., Gao P., Lu X., Xu G. Analysis of catecholamines and their metabolites in adrenal gland by liquid chromatography tandem mass spectrometry. // Anal. Chim. Acta. 2008. V. 609. P 192–200.
83. Nichkova M., Wynveen P. M., Marc D. T., Huisman H., Kellermann G. H. Validation of an ELISA for urinary dopamine: applications in monitoring treatment of dopamine-related disorders. // J. Neurochem. 2013. V. 125. P. 724–735.
84. Törnkvist A., Sjöberg P. J. R., Markides K. E., Bergquist J. Analysis of catecholamines and related substances using porous graphitic carbon as separation media in liquid chromatography–tandem mass spectrometry. // J. Chromatogr. B. 2004. V. 801. P. 323–329.
85. Peterson Z. D., Collins D. C., Bowerbank C. R., Lee M. L., Graves S. W. Determination of catecholamines and metanephrines in urine by capillary electrophoresis-electrospray ionization-time-of-flight mass spectrometry. // J. Chromatogr. B. Analyt. Technol. Biomed. Life Sci. 2002. V. 776. № 2. P. 221–229.
86. Zhang X., Xu S., Lim J. M., Lee Y. I. Molecularly imprinted solid phase microextraction fiber for trace analysis of catecholamines in urine and serum samples by capillary electrophoresis. // Talanta. 2012. V. 99. P. 270-276.


Характеристики реферата

Учебное заведение
Просмотров
13
Покупок
0
Качество
Идеальное компьютерное
Размер
43,77 Kb

Список файлов

  • англ.реф.masha4.docx 46,32 Kb

Комментарии

Поделитесь ссылкой:
Цена: 500 руб.
Расширенная гарантия +3 недели гарантии, +10% цены
Рейтинг-
0
0
0
0
0
Поделитесь ссылкой:
Сопутствующие материалы
Свежие статьи
Популярно сейчас
А знаете ли Вы, что из года в год задания практически не меняются? Математика, преподаваемая в учебных заведениях, никак не менялась минимум 30 лет. Найдите нужный учебный материал на СтудИзбе!
Ответы на популярные вопросы
Да! Наши авторы собирают и выкладывают те работы, которые сдаются в Вашем учебном заведении ежегодно и уже проверены преподавателями.
Да! У нас любой человек может выложить любую учебную работу и зарабатывать на её продажах! Но каждый учебный материал публикуется только после тщательной проверки администрацией.
Вернём деньги! А если быть более точными, то автору даётся немного времени на исправление, а если не исправит или выйдет время, то вернём деньги в полном объёме!
Да! На равне с готовыми студенческими работами у нас продаются услуги. Цены на услуги видны сразу, то есть Вам нужно только указать параметры и сразу можно оплачивать.
Отзывы студентов
Ставлю 10/10
Все нравится, очень удобный сайт, помогает в учебе. Кроме этого, можно заработать самому, выставляя готовые учебные материалы на продажу здесь. Рейтинги и отзывы на преподавателей очень помогают сориентироваться в начале нового семестра. Спасибо за такую функцию. Ставлю максимальную оценку.
Лучшая платформа для успешной сдачи сессии
Познакомился со СтудИзбой благодаря своему другу, очень нравится интерфейс, количество доступных файлов, цена, в общем, все прекрасно. Даже сам продаю какие-то свои работы.
Студизба ван лав ❤
Очень офигенный сайт для студентов. Много полезных учебных материалов. Пользуюсь студизбой с октября 2021 года. Серьёзных нареканий нет. Хотелось бы, что бы ввели подписочную модель и сделали материалы дешевле 300 рублей в рамках подписки бесплатными.
Отличный сайт
Лично меня всё устраивает - и покупка, и продажа; и цены, и возможность предпросмотра куска файла, и обилие бесплатных файлов (в подборках по авторам, читай, ВУЗам и факультетам). Есть определённые баги, но всё решаемо, да и администраторы реагируют в течение суток.
Маленький отзыв о большом помощнике!
Студизба спасает в те моменты, когда сроки горят, а работ накопилось достаточно. Довольно удобный сайт с простой навигацией и огромным количеством материалов.
Студ. Изба как крупнейший сборник работ для студентов
Тут дофига бывает всего полезного. Печально, что бывают предметы по которым даже одного бесплатного решения нет, но это скорее вопрос к студентам. В остальном всё здорово.
Спасательный островок
Если уже не успеваешь разобраться или застрял на каком-то задание поможет тебе быстро и недорого решить твою проблему.
Всё и так отлично
Всё очень удобно. Особенно круто, что есть система бонусов и можно выводить остатки денег. Очень много качественных бесплатных файлов.
Отзыв о системе "Студизба"
Отличная платформа для распространения работ, востребованных студентами. Хорошо налаженная и качественная работа сайта, огромная база заданий и аудитория.
Отличный помощник
Отличный сайт с кучей полезных файлов, позволяющий найти много методичек / учебников / отзывов о вузах и преподователях.
Отлично помогает студентам в любой момент для решения трудных и незамедлительных задач
Хотелось бы больше конкретной информации о преподавателях. А так в принципе хороший сайт, всегда им пользуюсь и ни разу не было желания прекратить. Хороший сайт для помощи студентам, удобный и приятный интерфейс. Из недостатков можно выделить только отсутствия небольшого количества файлов.
Спасибо за шикарный сайт
Великолепный сайт на котором студент за не большие деньги может найти помощь с дз, проектами курсовыми, лабораторными, а также узнать отзывы на преподавателей и бесплатно скачать пособия.
Популярные преподаватели
Добавляйте материалы
и зарабатывайте!
Продажи идут автоматически
5167
Авторов
на СтудИзбе
437
Средний доход
с одного платного файла
Обучение Подробнее