14809 (749660), страница 2

Просмтор этого файла доступен только зарегистрированным пользователям. Но у нас супер быстрая регистрация: достаточно только электронной почты!

Текст из файла (страница 2)

Ефективність вакцинації залежить від імуногенності вакцинного штаму, наявності пасивного імунітету, віку курчат, дози і методу введення вакцини, дотримання термінів між щепленнями, техніки вакцинації та ін. Тому схему і метод вакцинації повинні розроблятися для кожного господарства, виходячи з їх епізоотичної ситуації. При проведенні профілактичної вакцинації необхідно дотримуватися створення 100%-ного напруженого імунітету у птиці всіх вікових груп. Цього можна досягти в тому випадку, якщо в господарстві добре організована система контролю поствакцинального імунітету. Ефективність вакцинації проти МПВІ можна оцінювати двома способами: біопробою і визначенням титру антитіл в сироватці крові методом ІФА. Для цього через 12-15 днів після вакцинації беруть кров від 25 курчат з 5-6 точок кожного пташника. Напруженість імунітету перевіряють також за декілька днів перед наступною вакцинацією. У загрозливих і неблагополучних господарствах напруженість імунітету у дорослої птиці перевіряють через кожні 60 днів. Вакцинацію вважають ефективною, якщо у 80% досліджувальних зразків сироватки крові знаходять високі титри антитіл, а менші служать показником необхідної ревакцинації птиці [36].

Висновки

МПВІ є гострим інфекційним захворюванням курей, яке характеризується трахеальними хрипами, кашлем, чханням. Крім того, при цьому захворюванні вражаються яйцеводи і якість яєць погіршується.

МПВІ поширена по всьому світу. Виходячи з літературних даних, він на сьогодні актуальніший в промисловому птахівництві, чим ІЛТ, респіраторний мікоплазмоз, сальмонельоз, хвороба Марека.

МПВ може розмножуватися в тканинах дихальних шляхів, кишковому тракті і яйцеводі. Звичайні штами вірусу незалежно, від тропності, легко ушкоджують дихальні шляхи курей і викликають характерні ураження трахеї. Найчастіше птиця видужує, якщо за респіраторною фазою не слідує ускладнення бактерійною інфекцією.

Аналіз сироваткових антитіл використовується для контролю дії вакцини і польової інфекції. Серологічні дослідження зазвичай виконуються за допомогою тестів РН, РТГА або ІФА.

Для запобігання втратам від МПВІ необхідна вакцинація як живими, так і інактивованими вакцинами. Живі вакцини використовують для бройлерів і первинної імунізації племінних курей і промислових несучок. Інактивовані масляно-емульсійні вакцини застосовують на початку яйцекладки.

Список літератури

1. Naylor. C.J. Turkey rhinotracheitis virus: a review [Text] / C.J. Naylor, R.C. Jones // Veterinary Bulletin. – 1993.- Vol.. 63.- P. 439-449.

2. Avian pneumovirus infection of laying hens: experimental studies [Text] / J.K.A Cook. [et al] // Avian Pathology. – 2000. - Vol. 29.- P. 545-556.

3. Buys S.B. Swollen head syndrome in chickens: a preliminary report on the isolation of a possible aetiological agent [Text] / S.B.Buys, J.H. Du Preez, H.J. Els // Journal of the South African Veterinary Association. – 1989. - Vol. 60 P. 221-222.

4. Cavanagh D. Pneumovirus-like characteristics of the mRNA and proteins of turkey rhinotracheitis virus [Text] / D. Cavanagh, T Barrett // Virus Research II. – 1988. - P. 241-256.

5. Pringle. C.R. Virus taxonomy [ Text] / C.R. Pringle //. Archives of Virology. – 1998. Vol 143. - P. 1449-1459.

6. Pringle C.R Demonstration of a candidate virus for turkey rhinotracheitis in experimentally inoculated turkeys [Text] / C.R. Pringle // Veterinary Record. – 1986. Vol. 119. - P. 599-600.

7. Immunogold labelling of turkey rhinotracheitis virus [Text] / C.J.O'Loan [et al] // Zentralhlatt fur Veter-inarmedizin Peine B - 1992 Vol 39. - P. 459-466.

8. Antigenic differentiation of avian pneumovirus isolates using polyclonal antisera and mouse monoclonal antibodies [Text] / M.S.Collins [et al] // Avion Pathology. – 1993.. – Vol 22. - P. 469-479.

9. Antigenic differentiation of strains of turkey 541 rhinotracheitis virus using monoclonal antibodies [Text] / J.K. Cook [et al] // Avian Pathol – 1993 Vol 22 P. 257–273.

10. Isolation of a pneumovirus 629 from a Muscovy duck [Text] / D. Togvin [ et al] // Vet. Rec – 1999. - Vol. 145. - P. 680.

11. American subgroup C isolates of avian metapneumovirus belong to different genetic lineages [Text] / D. Togvin [et al] // Virus Genes. – 2006. - Vol. 637 32. - P. 97–103.

12. Juhasz. K. Extensive sequence variation in the attachment (G) protein gene of avian pneumovirus; evidence for two distinct subgroups [Тext] / K.Juhasz, A.J.Easton // Journal of General Virology. – 1994. - Vol. 75. - P. 2873-2880.

13. Antigenic differentiation of avian pneumovirus isolates using polyclonal antisera and mouse monoclonal antibodies [Text] / M.S. Collins [et al] // Avion Pathology. – 1993. - Vol. 22. - P. 469-479.

14. Nucleotide sequences of the F, L and G protein genes of two non-A/non-B avian pneumoviruses (APV) reveal a novel APV subgroup [Text] / M.H.Bayon-Auboyer [et al] // Journal of General Virology. – 2000. - Vol 81. - P. 1723-2733.

15. Бессарабов Б.Ф. Пневмовирусы птиц: учебное пособие / [Текст] Б.Ф. Бессарабов, Е.А. Лазуткина, И.И. Мельникова. – М.: МТА-Графикс. – 2008. - .32с

16. Лазуткина Е.А. Клинические признаки, патологоанатомические и гистоморфологические изменения при синдроме опухшей головы у цыплят-бройлеров [Текст] / Е.А. Лазуткина, Б.Ф. Бессарабов // Материалы III международного ветеринарного конгресса по птицеводству. – М.: НПП «АВИВАК». - 2007. – С. 111-116.

17. Лазуткина Е. Особенности проявления синдрома опухшей головы у цыплят-бройлеров [Текст] / Е.А. Лазуткина, Б.Ф. Бессарабов, И.И.Мельникова// Био. - 2007. - № 6 (81). – С. 31-34.

18. Droual R Swollen Head Syndrome Associated With E. Coli and Infectious Bronchitis Virus in the Central Valley of California [Text] / R.Droual , P. R.Woolcock // Avian Pathology. – 1994. - Vol. 23 (4). - P. 733-742.

19. Microwave Or Autoclave Treatments Destroy the Infectivity of Infectious Bronchitis Virus and Avian Pneumovirus But Allow Detection By Reverse Transcriptase Polymerase Chain Reaction. [Text] / G.Elhafi [ et al] // Avian Pathol. – 2004. – Vol. 33(3). – P. 303-306

20. Eterradossi N Evaluation of Different Turkey Rhinotracheitis Viruses Used As Antigens for Serological Testing Following Live Vaccination and Challenge. [Text] / N.Eterradossi, D.Toquin [et al] // Zentralbl Veterinarmed B. 42 № 3 1995 P.175-186.

21. Gould PS Coupled Translation of the Second Open Reading Frame of M2 Mrna Is Sequence Dependent and Differs Significantly Within the Subfamily Pneumovirinae. [Text] / P.S.Gould, A.J.Easton // Journal Of Virology. – Vol. 811 (16)/ - P/ 8488-8496

22. Interaction Between Live Avian Pneumovirus and Newcastle Disease Virus Vaccines in Specific Pathogen Free Chickens. [Text] / K. Ganapathy K., P. Cargill [et al] // Avian Pathology – 2005. - Vol.34 (4). - P. 397-399.

23. .Govindarajan D Recovery of Avian Metapneumovirus Subgroup C From Cdna: Cross-Recognition of Avian and Human Metapneumovirus Support Proteins [Text] / D. Govindarajan, U.J Buchholz, SK. J Samal // Virol. – 2006 –Vol. 80 (12). - P. 5790-5797.

24. Sequence Analysis of the Large Polymerase (L) Protein of the Us Strain of Avian Metapneumovirus Indicates a Close Resemblance to That of the Human Metapneumovirus [Text] / D.Govindarajan, S.K.Samal // Virus Res. – 2004/ - 105 (1). - P. 66.

25. Govindarajan D. Complete Sequence of the G Glycoprotein Gene of Avian Metapneumovirus Subgroup C and Identification of a Divergent Domain in the Predicted Protein [Text] / D.Govindarajan , A.S.Yunus, S.K.Samal // J Gen Virol. – 2004. Vol. 85. - P.3671-3675.

26. Avian Metapneumovirus Excretion in Vaccinated and Non-Vaccinated Specified Pathogen Free Laying Chickens [Text] / M.Hess [ et al] // Avian Pathology. – 2004. – Vol. 33 (1). - Р. 35-40.

27. Evaluation of different turkey rhinotracheitis viruses used as antigens for serological testing following live vaccination and challenge [Text] / N. Eterradossi [et al] // J. Vet Med. – 1995. - P. 42-44

28. Mcfarlane Toms I.P. A comparison of three commercially available ELISA tests 588 for detecting antibodies to turkey rhinotracheitis virus (TRTV). Proceedings of the International Symposium589 on Infectious Bronchitis and Pneumovirus infections in Poultry [Text] / I.P.Mcfarlane Toms, R.J.H.Jackson // Rauischholzhausen. Vol. 15. – 1998. - P. 26–37.

29. A modified enzyme-linked immunosorbent assay for the detection of avian 527 pneumovirus antibodies [Text] / S.Cyiang [et al] // J. Vet. Diagn – 2000. - Vol. 12. - P. 381–384.

30. Giraud Р Utilisation de la méthode ELISA pour 550 le sérodiagnostic de l’infection par le virus de la rhinotrachéite infectieuse chez la dinde la poule et la pintade. [Text] / P.Giraud [et al] // Bull. Lab. Vet. – 1987. - P. 27–28

31. Avian pneumoviruses. In: Diseases of Poultry, eleventh edition [Text] / R.E.Gougn [et al] // Blackwell Publishing – 2003. - P. 92–99

32. Coor J.K. Detection and differentiation of avian pneumoviruses 535 (metapneumoviruses) [Text] / J.K.Coor, D.Cavanag // Avian Pathol. – 2002. Vol.31. - P. 117–132.

33. Sabara M.I. Evaluation of a Japanese quail fibrosarcoma cell line (QT-35) for use in the 610 propagation and detection of metapneumovirus [Text] / M.I.Sabara, J.E.Larence // J. Virol. Methods – 2002/ - Vol/ 102. - P. 73–81

34. Stuart I.C. Rhinotracheitis turkey rhinotracheitis (TRT) in Great Britain. Recent Advances in Turkey 625 Science [Text] / J.C.Stuart // Poultry Science Symposium – 1989. - P. 217–224.

35. Nucleotide Sequence of the Matrix Protein Gene of a Subgroup B Avian Pneumovirus [Text] / Jaspal S. Randhawa [et al] // Virus Genes. – 1996. Vol.12 (2). - P.179-183.

36. www.intervet.ru

37. Van De Zande S Duration of cross-protection between644 subtypes A and B avian pneumovirus in turkeys [Text] / S.Van De Zande [et al] // Vet. Rec. – 2000. Vol. 147. - P.132–134.

Характеристики

Список файлов доклада