Диссертация (1139970), страница 11
Текст из файла (страница 11)
Кожа2. Полость абсцесса3. Подкожно-жировая клетчатка4. Крестцово-копчиковая связкаРисунок 7 – Вид раны после вскрытия абсцесса, иссечения ЭКХ1. Кожа2. Подкожно-жировая клетчатка3. Крестцово-копчиковая связка4. Рана после иссечения ЭКХ62Рисунок 8 – Вид раны после вскрытия абсцесса с затеком на левую ягодицу,иссечения ЭКХ1. Кожа2. Подкожно-жировая клетчатка3.
Крестцово-копчиковая связка4. Рана после иссечения ЭКХ5. Гнойный затек с вторичным отверстием ЭКХРисунок 9 – Вид раны после вскрытия абсцесса, иссечения ЭКХ, вскрытиязатека1. Кожа2. Подкожно-жировая клетчатка3. Крестцово-копчиковая связка4. Рана после иссечения ЭКХ и вскрытия затекаПосле выполнения хирургического пособия всем пациентам назначалипостельный режим. Назначали ненаркотические анальгетики.63Вскрытие абсцесса, иссечение ЭКХ с ушиванием раныВскрытие абсцесса и иссечение ЭКХ принципиально не отличается оттехники, применяемой при открытой методике (рис. 4-9).Далее для более эффективного подшивания краев раны ко дну, с цельюуменьшения внутритканевого давления и избегания прорезывания нитей собеих сторон от раны лоскутами полуовальной формы с помощью скальпеляубирали подкожную жировую клетчатку (рис.
10).Рисунок 10 – Иссечение подкожной жировой клетчатки овальнымилоскутами1. Кожа2. Подкожно-жировая клетчатка3. Крестцово-копчиковая связка4. Удаляемые лоскуты полуовальной формыПодшивание кожных краев раны ко дну в шахматном порядкевыполняли по известной методике следующим образом: режущей иглойнеобходимого размера с шелком производили вкол, отступив на 1-1,5 см открая раны и проводим под ее дном. Выкол делали в 4-6 мм наружу отсредней линии на противоположной от края раны стороне ближе ко дну.Аналогичные швы накладывали по всей длине раны в «шахматном» порядкене чаще, чем в 1,5-2,0 см от близлежащего шва. Проведенные лигатурыпредварительно, после проведения брали на зажимы, после наложения всех,завязывали поочередно, сначала с одной стороны, затем с противоположной.64После затягивания швов, между ними оставляли открытой узкая полоска днараны между кожными краями, необходимая для выполнения дренажнойфункции (рис.
11).Рисунок 11 – Окончательный вид послеоперационной раны1. Лигатура №12. Лигатура №23. Дренажная дорожка4. КожаПостельный режим пациенты соблюдали в течение одних суток, сцелью профилактики кровотечений.Первую перевязку проводили на следующий день после операции, вотличие от открытой методики. При этом рану промывали растворамиантисептиков (раствором 3% перекиси водорода 1-3 сутки, растворомфурацилина 4-11 сутки, объемом 20 мл), окружающую кожу обрабатывалийодопироном и по всей длине незашитого участка раны укладывали повязкус мазью на водорастворимой основе (Левомеколь, Левосин).
Проводилиантибактериальную терапию, антибиотиками широкого спектра действия.При стандартном течении раны швы снимали на 10-11 день после операции.На амбулаторное долечивание больных выписывали на примерно на 11 деньпосле операции.652.3.2. Методика получения и применения ОТАВ группе III помимо операции использовали аутоплазму обогащеннуютромбоцитарнымифакторамироста.Плазмуполучалипутемцентрифугирования крови пациентов, из которой готовили пленку дляналожения на рану, 1/5 частей аутоплазмы вводили внутрь дна и стенок раны(рис.
12). Всем пациентам на 4 и 8 сутки на чистую гранулирующую ранунакладывали пленку обогащенную ТФР.Рисунок 12 – Общий вид оборудования, используемого для полученияобогащенной тромбоцитами плазмыНа 4-е сутки после операции через специализированный внутривенныйкатетер (рис.13) (бабочка для экстракции крови PE, фирмы Vacuette), сминимальной травматизацией вены в области локтевого сгиба, производилизабор крови больного в количестве 36 мл (ТЕ9, цитратная трубка объемом 9мл (пластик) для хранения плазмы с противосвертывающим компонентом,фирмы Vacuette) в стерильные пробирки объемом 9 мл, с соблюдениемправил асептики (рис.
13).66Рисунок 13 – Пробирки для забора, хранения, центрифугирования,титрования и активации плазмыПробирки содержат антикоагулянт. Сразу после заполнения пробирки скровью, пробирку тщательно и плавно несколько раз переворачивали дляперемешивания антикоагулянта и крови. Немедленно после забора кровьподвергали центрифугированию на центрифуге (рис. 14) (модель PRGFсистема IV для получения плазмы обогащенной факторами роста, фирмы Bti)со скоростью 6500 оборотов в минуту на протяжении 8 минут при комнатнойтемпературе.Рисунок 14 – ЦентрифугаПробирки с кровью после разделения на фракции в центрифугеустанавливали на лабораторный держатель для пробирок (держатель длятрубки GT) – вплоть до момента активации.67Непосредственно перед применением плазмы врач лабораторнымипипетками в стерильных условиях отбирал ОТА следующим способом.Сначала удаляли и утилизировали верхний слой плазмы, который содержитнизкую концентрацию тромбоцитов (при помощи первой пипетки Pv1000(объемом 200-1000 мкл) (рис.
15).Рисунок 15 – Пипетки для титрования плазмыДалее этой же пипеткой собирали слой, богатый тромбоцитами. Затемпипеткой Pv200 забирали нижний слой, богатый тромбоцитами. Отдельнаяпипетка (20-100 мкл, 10 см2) необходима для более точного забора ОТА, чтобы не прикасаться к слою, состоящему преимущественно из эритроцитов илейкоцитов (рис. 16).Рисунок 16 – Пробирка после центрифугирования, фракции плазмы68Не забирали и самый верхний слой содержимого пробирки, так какконцентрация в нем тромбоцитов незначительна.В обогащенную ТФР аутоплазму (вязкая жидкость соломенно-желтогоцвета) добавляли 10% раствор хлористого кальция из расчета 50 мклхлористого кальция на 1 мл обогащенной плазмы с целью разрушениятромбоцитов и высвобождения ТФР (TF9; цитратная трубка объемом 9 мл(пластик) для активации плазмы с противосвертывающим компонентом,фирмы Vacuette).
Из исходного материала получается около 9 мл ОТА, изних 7 мл использовали для получения пленки (рис. 17). Необходимый объемплазмы переливали в стеклянные чаши с крышкой (RP150, стеклянная чашадля плазмы диаметром 50 мм, Испания (BTI) – 1 шт. и RP160, стекляннаячаша для плазмы диаметром 60 мм, Испания (BTI) – 1 шт.).Рисунок 17 – Термостат для приготовления пленкиПосле чего чаши на 15-20 минут помещали в термостат (Plasmaterm-H,Испания, BTI) (рис.
18) для нагревания плазменных стеклянных чашек, труб,и с поддержанием температуры от 37±1 оС для ускорения формированияфибриновой мембраны, при температуре 50 оС формировали пленку (рис.18). Использовали чаши диаметром 60 и 50 мм. Оставшиеся 2 мл ОТАвводили с помощью инсулинового шприца в стенки и дно раны.69Рисунок 18 – Готовая пленка обогащенная ТФРДля наложения ОТА пациента приглашали в перевязочный кабинет.После промывания раны раствором антисептиков, удаления последнихмарлевым тампоном, с помощью инсулинового шприца в стенки и дно раныпосле иссечении ЭКХ вводилась ОТА. Расстояние между вколами составляло3-5 мм, глубина – 1-3 мм.
Инъекции производили в виде сетки. Послевведения ОТА со стенок и дна раны удаляли сукровично-геморрагическоеотделяемое марлевым тампоном, далее пациенту накладывали пленку изОТА на дно раны (рис. 19). Пленку плотно прикрывали марлевой салфеткой,снаружи клали марлевую салфетку, для фиксации салфеток использоваливату и трусы типа плавок.Рисунок 19 – Вид раны после наложения пленки с обогащенными факторамироста70После наложения ОТА пациентов в течение 4-х дней не перевязывали,меняли вату и верхнюю марлевую салфетку. На 4-е сутки после наложенияОТА или на 8-е сутки после операции процедуру повторяли, последующие4 суток так же производили смену верхних слоев повязки.
В дальнейшемпациенты самостоятельно производили перевязки, с полуспитровымисалфетками либо с «Пантенол спреем».71ГЛАВА 3. РЕЗУЛЬТАТЫ КЛИНИЧЕКИХ, ЛАБОРАТОРНЫХ ИИНСТРУМЕНТАЛЬНЫХ МЕТОДОВ ИССЛЕДОВАНИЙ3.1. Распределение больных по наличию сросшихся над переносицейбровейПо данным литературы сросшиеся брови являются патогомоничнымпризнаком ЭКХ. Для верификации этиологии гнойных процессов в областикопчикапредставляетсяцелесообразнымоцениватьналичиефактасросшихся бровей. В таблице №13 представлено распределение пациентов взависимости от наличия сросшихся бровей.
У 53 (15,0%) пациентов,включенных в исследование выявлены сросшиеся над переносицей брови, у300 (85,0%) данный признак отсутствует (p<0,05).Таблица 13 – Наличие сросшихся бровей.Наличие сросшихся бровейНетЕстьИтого:Группа IГруппа IIГруппа IIIВсего91 (86,7%)113 (83,1%)96 (85,7%)300 (85,0%)14 (13,3%)23 (16,9%)16 (14,3%)53 (15,0%)105 (100,0%) 136 (100,0%) 112 (100,0%) 353 (100,0%)3.2. Распределение больных по уровню лихорадкиБольшинство пациентов с абсцессом ЭКХ 260 (73,7%) при поступлениибыли с температурой тела до 37,0 оС. У 59(16,7%) температура тела была вдиапазоне 37,1-38,0 оС. Меньшее количество пациентов 34 (9,6%) были стемпературой 38,1-39,0 оС (табл. 14).Таблица 14 – Данные о термометрии у больных с абсцессом ЭКХТемператураДо 37,0 оССубфебрильная37,1-38,0 оСФебрильная38,1-39,0 оСИтого:Группа I36,7±0,1Группа II36,6±0,1Группа III36,5±0,3p0,2237,7±0,237,5±0,337,5±0,20,1438,6±0,238,6±0,238,4±0,20,24112 (100,0%)136 (100,0%)105 (100,0%)353 (100,0%)723.3.
Распределение больных по размеру и локализации абсцессаВ таблице №15 показано, что большинство 163 (46,3%) пациентовпоступали с гнойником размером от 2 до 4 см, с диаметром гнойника от 4 до6 см были 124 (35,1%) пациента, с гнойником диаметром до 2 см – 46(13,0%), с гнойниками более 6 см – 20 (5,6%).Таблица 15 – Данные о размере абсцессаДиаметрaбсцессаДо 2 смДо 4 смДо 6 смБолее 6 смИтого:Группа IГруппа IIГруппа IIIВсегоp17 (16,2%)48 (45,7%)34 (32,4%)6 (5,7%)105 (100,0%)14 (10,3%)60 (44,1%)55 (40,4%)7 (5,2%)136 (100,0%)15 (13,4%)55 (49,1%)35 (31,2%)7 (6,3%)112 (100,0%)46 (13,0%)163 (46,3%)124 (35,1%)20 (5,6%)353 (100,0%)0,290,350,120,53В большинстве наблюдений (94,0%) абсцесс локализован строго посредней линии или с небольшим смещением влево или вправо и только в4,0% случаев гнойник был полностью смещен на одну сторону (табл.
![](https://s.studizba.com/z.php?f=/templates/si/i/noavatar.png&w=100&h=100&t=1"){kind=avatar}
